Summary

Un nouveau modèle ex vivo de plaies cutanées ovines à haut débit pour tester les antibiotiques émergents

Published: September 16, 2022
doi:

Summary

Le protocole décrit une méthode étape par étape pour mettre en place un modèle ex vivo de peau blessée ovine infectée par Staphylococcus aureus. Ce modèle à haut débit simule mieux les infections in vivo par rapport aux techniques de microbiologie conventionnelles et offre aux chercheurs une plateforme physiologiquement pertinente pour tester l’efficacité des antimicrobiens émergents.

Abstract

Le développement d’antimicrobiens est un processus coûteux avec des taux de réussite de plus en plus faibles, ce qui rend les investissements supplémentaires dans la recherche sur la découverte d’antimicrobiens moins attrayants. La découverte de médicaments antimicrobiens et leur commercialisation subséquente peuvent être rendues plus lucratives si une approche rapide et peu coûteuse peut être mise en œuvre au cours des étapes d’optimisation des pistes où les chercheurs ont un plus grand contrôle sur la conception et la formulation des médicaments. Dans cet article, la configuration d’un modèle ex vivo de peau blessée ovine infectée par Staphylococcus aureus est décrite, ce qui est simple, rentable, à haut débit et reproductible. La physiologie bactérienne dans le modèle imite que pendant l’infection, la prolifération bactérienne dépend de la capacité de l’agent pathogène à endommager le tissu. L’établissement de l’infection de la plaie est vérifié par une augmentation du nombre de bactéries viables par rapport à l’inoculum. Ce modèle peut être utilisé comme plateforme pour tester l’efficacité des antimicrobiens émergents à l’étape de l’optimisation des prospects. On peut soutenir que la disponibilité de ce modèle fournira aux chercheurs qui développent des antimicrobiens un modèle d’échec rapide et bon marché, ce qui contribuera à augmenter les taux de réussite dans les essais ultérieurs sur les animaux. Le modèle facilitera également la réduction et le perfectionnement de l’utilisation des animaux pour la recherche et, en fin de compte, permettra une application plus rapide et plus rentable de nouveaux antimicrobiens pour les infections de la peau et des tissus mous à la clinique.

Introduction

Les infections cutanées sont un problème mondial important, avec des coûts économiques importants pour les prestataires de soins de santé du monde entier. Le développement de la multirésistance aux médicaments et la formation de biofilms par des agents pathogènes jouent un rôle clé dans la prévalence des plaies non cicatrisantes 1,2,3,4. En conséquence, les infections de la peau et des tissus mous sont l’une des raisons les plus courantes d’hospitalisation prolongée et de réadmission ultérieure5. Les retards dans la cicatrisation des plaies sont coûteux pour le patient et les prestataires de soins de santé, certaines estimations suggérant qu’environ 6,5 millions de patients sont touchés chaque année aux États-Unis. Au Royaume-Uni, les infections cutanées et les complications associées entraînent environ 75 000 décès par an 2,4,6.

Staphylococcus aureus (S. aureus) est un pathogène redoutable des plaies fréquemment isolé des plaies des patients 2,7. Le taux d’émergence de la multirésistance a considérablement augmenté dans les années 2000. Pendant ce temps, environ 60% des infections bactériennes aiguës de la peau et de la structure de la peau étaient positives à la culture pour S. aureus1 résistant à la méthicilline. Le nombre croissant de souches multirésistantes parmi les staphylocoques, et même d’autres agents pathogènes, au cours des 2 dernières décennies indique un besoin urgent de développement rapide d’antibiotiques avec de nouveaux modes d’action capables de surmonter la résistance.

Cependant, depuis le début des années 2000, les programmes de découverte d’antibiotiques ont été dominés par des temps de développement plus longs et de faibles taux de réussite, avec seulement 17% des nouveaux antibiotiques entrant dans les essais cliniques aux États-Unis obtenant l’approbation de mise sur le marché8. Cela suggère une disparité entre les résultats des tests in vitro d’antibiotiques émergents et leurs résultats cliniques. On peut soutenir que cette disparité est en grande partie due aux différences de physiologie bactérienne au cours des infections in vivo et au cours des méthodes microbiologiques conventionnelles lors de l’essai de l’efficacité des antibiotiques aux stades précliniques in vitro . Par conséquent, de nouvelles méthodes de laboratoire plus représentatives de la physiologie bactérienne pendant l’infection sont nécessaires pour améliorer les taux de réussite des programmes de découverte d’antibiotiques.

Les méthodes actuelles d’étude des infections cutanées comprennent des études sur des animaux vivants (p. ex. souris), des modèles cutanés ex vivo (p. ex. porcins) et des modèles cutanés issus de l’ingénierie tissulaire 3D (p. ex. humains)9,10,11,12. Les études sur des animaux vivants sont strictement réglementées et ont un débit relativement faible. Dans les modèles animaux, les blessures et les infections causent une détresse importante aux animaux et soulèvent des préoccupations éthiques. Les modèles de peau humaine, ex vivo ou tissulaires, nécessitent une approbation éthique, le respect de la législation locale et mondiale (la loi sur les tissus humains, la déclaration d’Helsinki), et il est difficile d’acquérir des tissus, certaines demandes prenant des années à satisfaire13,14. Les deux types de modèles exigent beaucoup de main-d’œuvre et nécessitent une expertise importante pour assurer le succès expérimental. Certains modèles actuels d’infection cutanée ex vivo nécessitent des disques pré-inoculés et des additifs pour le lit de la plaie afin de permettre l’infection; Bien que ces modèles soient incroyablement utiles, il existe des limites dans le processus d’infection car les additifs limitent l’utilisation du lit de la plaie comme source de nutriments10,15,16,17. Le modèle décrit dans cette étude n’utilise aucun additif au lit de la plaie, ce qui garantit que la pathologie de l’infection et le nombre de cellules viables sont le résultat de l’utilisation directe du lit de la plaie comme seule source de nutriments.

Compte tenu de la nécessité de nouvelles méthodes de laboratoire, un nouveau modèle ovin ex vivo à haut débit d’infections cutanées a été mis au point pour évaluer l’efficacité des antibiotiques émergents. Les études sur les infections cutanées font face à de nombreux défis – coûts élevés, préoccupations éthiques et modèles qui ne donnent pas une image complète20,21. Les modèles ex vivo et les modèles 3D explant permettent une meilleure visualisation du processus de la maladie et de l’impact que les traitements peuvent avoir à partir d’un modèle plus pertinent sur le plan clinique. Ici, la configuration d’un nouveau modèle de peau ovine est décrite, qui est simple, reproductible et cliniquement pertinente et a un débit élevé. La peau d’ovins a été choisie car les moutons sont l’un des grands mammifères couramment utilisés pour modéliser les réponses aux infections in vivo. De plus, ils sont facilement disponibles dans les abattoirs, ce qui assure un approvisionnement régulier en peau pour la recherche, et leurs carcasses ne sont pas ébouillantées, ce qui garantit une bonne qualité des tissus. Cette étude a utilisé S. aureus comme agent pathogène exemplaire; Cependant, le modèle fonctionne bien avec d’autres micro-organismes.

Protocol

Les têtes d’agneau de l’abattoir R.B Elliott and Son ont été utilisées comme source d’échantillons de peau dans le cadre de ce projet. Tous les agneaux ont été abattus pour être consommés comme aliments. Au lieu de jeter les têtes, celles-ci ont été réutilisées pour la recherche. L’approbation éthique n’était pas requise puisque les tissus provenaient de déchets jetés dans les abattoirs. 1. Stérilisation Désinfecter les pinces avant la c…

Representative Results

L’identification d’une voie de stérilisation de la peau avant la mise en place du modèle d’infection de la plaie a été difficile. Le défi consistait à stériliser la peau sans endommager les différentes couches de la peau, ce qui peut avoir des conséquences imprévues sur l’issue de l’infection. Pour identifier un régime de stérilisation approprié, différents traitements ont été essayés pour des durées variables, comme indiqué dans le tableau 1. La contamination a été enregis…

Discussion

Le développement d’antimicrobiens est une entreprise importante mais coûteuse qui devrait coûter environ 1 milliard de dollars et prendre environ 15 ans. Plus de 90 % des découvertes de médicaments antimicrobiens et des études précliniques sur l’efficacité des médicaments antimicrobiens sont réalisées par des chercheurs universitaires et des petites et moyennes entreprises comptant généralement moins de 50 employés22. Ces équipes sont très contraintes financièrement, ce qui re…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier EPSRC (EP/R513313/1) pour son financement. Les auteurs aimeraient également remercier R.B Elliot and Son Abattoir à Calow, Chesterfield, pour avoir fourni des têtes d’agneau et pour avoir été si accommodantes dans les premières étapes du projet, Kasia Emery pour son soutien tout au long de l’élaboration de ce protocole, et Fiona Wright du Département des infections, de l’immunité et des maladies cardiovasculaires de l’Université de Sheffield pour le traitement des échantillons histologiques et leur aide incroyable tout au long de ce projet.

Materials

24 Well Companion Plate SLS  353504
4 mm Biopsy Punch Williams Medical D7484
50 ml centrifuge tubes Fisher Scientific  10788561
8 mm Biopsy Punch Williams Medical D7488
Amphotericin B solution, sterile Sigma  A2942
Colour Pro Style Cordless Hair Clipper Wahl 9639-2117X Hair Clippers
Dual Oven Incubator SLS OVe1020 Sterilising oven
Epidermal growth factor  SLS E5036-200UG
Ethanol Honeywell 458600-2.5L
F12 HAM Sigma N4888
Foetal bovine serum  Labtech International CA-115/500
Forceps Fisher Scientific 15307805
Hair Removal Cream Veet Not applicable
Heracell VIOS 160i Thermo Scientific 15373212  Tissue culture incubator
Heraeus Megafuge 16R VWR 521-2242 Centrifuge
Homogenizer 220, Handheld Fisher Scientific 15575809
Homogenizer 220, plastic blending cones Fisher Scientific  15585819
Insert Individual 24 well 0.4um membrane VWR International 353095
Insulin, recombinant Human SLS 91077C-1G
Medium 199 (MK media) Sigma M0393
Microplate, cell culture Costar 96 well Fisher Scientific 10687551
Multitron Infors Not applicable Bacterial incubator
PBS tablets Sigma  P4417-100TAB
Penicillin-Streptomycin SLS  P0781
Plate seals Fisher Scientific ESI-B-100
Safe 2020 Fisher Scientific 1284804 Class II microbiology safety cabinet
Scalpel blade number 15 Fisher Scientific O305
Scalpel Swann Morton Fisher Scientific 11849002
Sodium bicarbonate Sigma S5761-1KG
Toothed Allis Tissue Forceps Rocialle RSPU500-322
Tryptic Soy Agar Merck Life Science UK Limited 14432-500G-F
Tryptic Soy Broth Merck Life Science UK Limited 41298-500G-F
Vimoba Tablets Quip Labs VMTAB75BX

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Diesen Artikel zitieren
Regan, H. C., Taylor, A. F., Karunakaran, E. A Novel High-Throughput Ex Vivo Ovine Skin Wound Model for Testing Emerging Antibiotics. J. Vis. Exp. (187), e64041, doi:10.3791/64041 (2022).

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