髄鞘形成を視覚化することは、神経系を研究する多くの研究者にとって重要な目標です。CARSは、ミエリンなどの特殊な構造を照らす脳などの組織内の脂質をネイティブにイメージングできる免疫蛍光法に対応した技術です。
コヒーレント反ストークスラマン分光法(CARS)は、分子の特徴的な振動のコヒーレント信号を生成するために化学者や物理学者によって古典的に採用されている技術です。ただし、これらの振動特性は、脳などの解剖学的組織内の分子にも特徴的であり、神経科学アプリケーションにますます有用で適用可能になっています。たとえば、CARSは、これらの分子内の化学結合を特異的に励起することによって脂質を測定でき、神経伝達に関与するミエリンなど、組織のさまざまな側面を定量化できます。さらに、ミエリンの定量に通常使用される他の技術と比較して、CARSは免疫蛍光技術と互換性があるように設定することもでき、ナトリウムチャネルやシナプス伝達の他の成分などの他のマーカーとの共標識を可能にします。髄鞘形成の変化は、多発性硬化症などの脱髄疾患、または脆弱X症候群や自閉症スペクトラム障害などの他の神経学的状態において本質的に重要なメカニズムであり、新たな研究分野です。結論として、CARSは革新的な方法で神経科学の差し迫った質問に答え、多くの異なる神経学的状態に関連する根本的なメカニズムの証拠を提供することができます。
活動電位は脳内の情報の基本単位であり、軸索を介した活動電位の伝播は情報処理の1つの柱を形成します1,2,3。ニューロンは、典型的には、複数の他のニューロンから求心性入力を受け取り、所与の狭い時間窓内でこれらの入力を統合する4,5。したがって、軸索における潜在的な伝播のメカニズムは、研究者からかなりの注目を集めています。
軸索を伝播する場合、活動電位は軸索に沿って繰り返し再生され、信頼性の高い伝播が保証されます6。顎脊椎動物(グナトストーム)のほとんどのニューロンでは、軸索は、グリア細胞の一種である近くの希突起膠細胞またはシュワン細胞によって産生される脂質が豊富な物質であるミエリンの鞘に囲まれています(7,8でレビュー)。このミエリン鞘は軸索を電気的に絶縁し、その静電容量を低減し、活動電位の伝播を効率的、迅速、そしてより低いエネルギー消費で可能にする。ミエリンは軸索を均一に覆うわけではありませんが、Ranvierの節と呼ばれる、それらの間に短いギャップがあるセグメントで軸索を覆います(9,10でレビュー)。軸索の電気的絶縁レベルを制御する髄鞘形成の厚さと、軸索に沿って活動電位が再生される頻度を制御するランビエの節の間隔の両方が、活動電位伝播の速度に影響を与えます(11でレビュー)。
髄鞘形成の厚さが軸索12,13,14の活動電位伝播速度に影響を与えることを示唆する文献が多数ある。さらに、軸索髄鞘形成の変化は、多数のCNS欠損をもたらし得る15、16、17、18、19、20、21。したがって、多くの研究努力の焦点が軸索髄鞘形成の測定と特性評価を含むことは驚くべきことではありません。ミエリンの厚さの測定は、電子顕微鏡で最も一般的に行われてきましたが、これは大量の組織調製を必要とし、免疫組織化学と組み合わせて使用するのが難しい技術です。ただし、コヒーレントアンチストークスラマン分光法(CARS)に基づく軸索髄鞘形成を測定するためのより高速で簡単な技術もあります。CARSレーザは、様々な周波数に同調することができ、脂質を励起するのに適した周波数に同調すると、追加の標識22を必要とせずにミエリンを画像化することができる。脂質画像化は、脂質をいくつかの蛍光チャネル23と共に画像化することができるように、標準的な免疫組織化学と組み合わせることができる。CARSによる髄鞘形成のイメージングは、電子顕微鏡法よりも有意に高速であり、EMよりも低いものの、同じタイプの軸索における髄鞘形成のわずかな違いを検出するのに十分な分解能を有する。
ますます多くの文献が脳機能におけるミエリンの役割を強調しています13,16,21,28。さらに、髄鞘形成の厚さと髄鞘形成パターンは、多発性硬化症(29でレビュー)、老化(30でレビュー)、自閉症20,31などのいくつかの神経学的</…
The authors have nothing to disclose.
NIH R01 DC 17924、R01 DC 18401 (Klug)、NIH 1R15HD105231-01、T32DC012280、FRAXA (McCullagh) でサポートされています。CARSイメージングは、NIH P30 NS048154およびNIH P30 DK116073によって部分的にサポートされているコロラド大学アンシュッツメディカルキャンパスのニューロテクノロジーセンターの高度な光学顕微鏡コア部分で実行されました。
Anesthetic: | |||
1 mL disposable syringe with needle 27 GA x 0.5" | Exel int | 260040 | |
Fatal + | Vortech | ||
Surgery: | |||
Spring Scissors – 8mm Cutting Edge | Fine Science Tools | 15024-10 | |
Standard tweezers | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Perfusion: | |||
4% Paraformaldehyde | Fisher Chemical | SF994 (CS) | |
Fine Scissors – Sharp | Fine Science Tools | 14063-11 | |
Kelly hemostats | Fine Science Tools | 13019-14 | |
Millipore H2O | |||
Needle tip, 23 GA x 1" | BD precision glide | 305193 | |
Phosphate buffered saline (PBS): | |||
Potassium chloride | Sigma | P9333 | |
Potassium phosphate monobase | Sigma | P5655 | |
pump with variable flow or equivalent | |||
Sodium chloride | Fisher Chemical | s271-1 | |
Sodiumphosphate dibasic | Sigma | S7907 | |
Dissection: | |||
50 mL vial with 4% PFA | |||
Bochem Chemical Spoon 180mm | Bochem | 230331000 | |
Fine Scissors – Sharp | Fine Science Tools | 14063-11 | |
Noyes Spring Scissors | Fine Science Tools | 15011-12 | |
Pair of fine (Graefe) tweezers | Fine Science Tools | 11050-10 | |
Shallow glass or plastic tray, approximately 10" x 10" | |||
Standard tweezers | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Surgical Scissors – Blunt | Fine Science Tools | 14000-20 | |
Slicing: | |||
Agar, plant | RPI | 9002-18-0 | |
Vibratome | Leica | VT1000s | |
well plate | Alkali Sci. | TPN1048-NT | |
Staining: | |||
AB Media: | 1n 1,000 mL of Millipore H2O | ||
Phosphate buffered (PB): | |||
Potassium Phosphate Monobase | Sigma | P5655 | |
Sodium Phosohate Dibasic | Sigma | S7907 | |
BSA (Bovine serum albumin) | Sigma life science | A2153-100g | |
Sodium Chloride | Fisher Chemical | s271-1 | |
Triton X-100 | Sigma – Aldrich | x100-500ml | |
Nissl 435/455 | Invitrogen | N21479 | |
CARS: | |||
APE picoemerald laser | Angewandte Physik & Elektronik GmbH | ||
bandpass filter (420-520 nm) | Chroma Technology | HQ470/100m-2P | |
bandpass filter (500-530 nm) | Chroma Technology | HQ515/30m-2P | |
bandpass filters (640-680 nm) | Chroma Technology | HQ660/40m-2P | |
Confocal microscope | Olympus | FV1000 | |
Cut Transfer pipet | Fisher | 13-711-7M | |
dichroic longpass 565 nm | Chroma Technology | 565dcxr | |
dichroic longpass 585 nm | Chroma Technology | 585dcxr | |
dichroic shortpass 750 nm | Chroma Technology | T750spxrxt | |
glass bottom culture dish | MatTek | P35G-0-10-C | |
glass weight (10 mm x 10 mm boro rod) | Allen Scientific Glass Inc | ||
multiphoton shortpass emission filter 680 nm | Chroma Technology | ET680sp-2p8 | |
PBS |