原子間力顕微鏡を使用して、正常および病気の肝臓のコラーゲンが豊富な領域の弾性率を測定するためのプロトコルを提示します。偏光顕微鏡を同時に使用することで、肝臓切片のコラーゲンが豊富な領域を特定するための高い空間精度が得られます。
マトリックスの硬化は、肝線維症の進行の主要な推進力の1つとして認識されています。細胞機能、分化、運動性など、細胞の挙動のさまざまな側面に大きな影響を与えます。しかし、これらの過程は臓器全体で均一ではないため、組織の機械的性質の変化を細胞レベルで理解することがますます重要になっています。
肝葉内のコラーゲンが豊富な領域の硬化を監視できるようにするために、この論文は、原子間力顕微鏡(AFM)によって高い空間精度で肝臓組織の弾性率を測定するためのプロトコルを提示します。AFMは、ヤング率(弾性率とも呼ばれる)として計算される局所的な機械的特性を特徴付ける可能性のある高感度な方法です。偏光顕微鏡と組み合わせたAFMを使用して、組織内のコラーゲン線維の複屈折に基づいて線維症の発生領域を特異的に特定できます。提示されたプロトコルを使用して、線維性マウス肝臓からのコラーゲンリッチ領域と対照マウスの肝臓の対応する領域の剛性を特徴付けました。
コラーゲン陽性領域の剛性の顕著な増加は、線維症の発症とともに観察されました。提示されたプロトコルは、穏やかに固定された肝臓組織の使用により、再現性の高いAFM測定方法を可能にし、局所組織の機械的特性における疾患による変化と隣接細胞の運命への影響の理解を深めるために使用できます。
肝臓は、生物の恒常性を維持するための重要な器官です1,2。慢性肝疾患は、世界中で年間200万人~200万人の死亡を占めています3。それらは、ウイルス感染症、自己免疫疾患、メタボリックシンドローム、またはアルコール乱用関連疾患として最も一般的に発生し、進行性の肝線維症を伴います。肝障害は炎症反応を誘発し、創傷治癒応答において細胞外マトリックス(ECM)を沈着させる細胞の活性化をもたらす。しかし、慢性的な侮辱の存在下では、過剰なECMが肝臓内に未解決の瘢痕組織を形成し、肝線維症、肝硬変、肝癌、そして最終的には肝不全の発症につながります4。
肝細胞損傷は直ちに肝硬直の増加をもたらす5,6。これは肝細胞機能に直接影響を及ぼし、肝星細胞(HSC)と門脈線維芽細胞を活性化し、コラーゲン沈着筋線維芽細胞への分化形質転換をもたらします7,8。線維性ECMの沈着は肝臓の硬さをさらに高め、肝臓の硬化とマトリックス産生細胞の活性化の自己増幅フィードバックループを作り出します。
したがって、肝硬直は肝疾患の予後において重要なパラメータとなっています。生体力学的組織特性の変化は、組織学的分析によって線維症を診断できるよりも早く検出することができる。そのため、肝臓のこわばり測定のための様々な技術が、研究と臨床応用の両方において開発されてきた。臨床現場では、一過性エラストグラフィ(TE)9,10,11,12,13および磁気共鳴エラストグラフィ(MRE)14,15,16,17,18が、肉眼的肝硬直を調べることにより、肝障害の初期段階を非侵襲的に診断するために採用されています19。
TEでは、穏やかな振幅と低周波(50 Hz)の超音波が肝臓を伝播し、それらの速度を測定し、それを使用して組織弾性率を計算します13。しかしながら、この技術は、肝臓9の周囲の組織を通る超音波の不適切な伝達のために、腹水、肥満、または下部肋間腔を有する患者には有用ではない。
MREは磁気共鳴画像法に基づいており、20〜200Hzの機械的横波を使用して肝臓を標的にします。次に、特定の磁気共鳴画像シーケンスを使用して、組織内の波を追跡し、組織の剛性を計算します16。TEおよびMRE技術の両方で報告された剛性値は、組織学的METAVIRスコア20を使用してランク付けされたヒト肝臓サンプルの生検から得られた肝線維症の程度とよく相関しています(表1)。TEとMREは、研究目的でげっ歯類モデルの肝臓の硬さの測定にも適合しています21、22、23。ただし、どちらの方法でも、伝播する横波に対する組織の応答から剛性値が導出されるため、得られた値は組織の絶対的な機械的剛性を反映していない可能性があります。
げっ歯類の肝臓の直接的な機械的特徴付けのために、Barnesらは、ポリアクリルアミドゲル24への肝臓組織の埋め込みを含むモデルゲル組織アッセイ(MGTアッセイ)を開発しました。このゲルはパルス状の均一な力によって圧縮され、そこからヤング率を計算することができます。MGTアッセイは、正常および線維性肝臓の両方に適合したインデンテーションアッセイと良好な相関を示す24 (表1)。
表1:バルクレベルでの肝臓のこわばり値。 TE および MRE を、異なるソースからの肝臓のインデンテーションおよび MGT アッセイを使用した肝臓弾性率の直接的なex vivo機械的測定と比較しました。E と G の関係は E = 2G (1 + v) で与えられ、v はサンプルのポアソン比です。F0からF4はMETAVIRスコアリングシステムの線維症スコアを表し、F0は線維症が低いかまったくないか、F4肝硬変を示します。略語:TE =過渡エラストグラフィー;MRE =磁気共鳴エラストグラフィー;MGT =モデルゲル組織;E =弾性(ヤング)弾性率。G =せん断弾性率。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
一般的な肝臓のこわばり測定の主な欠点の1つは、肝臓の硬さの不均一性の細胞レベルの分解能を提供しないことです。線維症の進行中、コラーゲンが豊富な領域は周囲の実質と比較してより高い剛性を示す25,26。この剛性勾配は、常在細胞に局所的に影響を及ぼし、HSCの不均一性を駆動する上で重要な役割を果たします27。したがって、肝疾患の発症中の局所的な機械的特性の変化は、線維症の進行をよりよく理解するために顕微鏡レベルで特徴付ける必要があります。
AFMにより、組織の機械的特性を高解像度と高力感度で測定できます。AFMは、カンチレバーの先端を使用して、数ピコニュートンという低い力でサンプルの表面をくぼみ、使用する先端の形状とサイズに基づいて微視的またはナノスコピックレベルで変形を誘発します。加えられたひずみに対するサンプルの力応答は、次にカンチレバー28のたわみとして測定されます。力−変位曲線は、カンチレバーの接近および後退から収集され、これは、試料29の局所剛性を評価するために適切な接触力学モデルと適合させることができる。
AFMは、所与の領域の剛性を測定することに加えて、コラーゲン繊維の構造など、サンプル中の特定の特徴に関するトポグラフィー情報も提供することができる30、31、32。複数の研究により、患者およびマウスモデルサンプルの両方から、皮膚32、33、肺34、35、脳36、乳腺37、38、39、軟骨40、または心臓41、42、43、44などのさまざまな健康組織および疾患組織の硬さを測定するためのAFMの適用が記載されている。さらに、AFMは、細胞および細胞外タンパク質足場の剛性を決定するためにインビトロでも使用されている45、46、47。
AFMを使用した生物学的サンプルの機械的特性の測定は、その柔らかさと脆弱性のために自明ではありません。したがって、さまざまな研究がさまざまな条件と設定を標準化しており、ヤング率の値が大きく変動しています(Mckeeらによるレビュー48)。他の軟部組織と同様に、異なるグレードの肝線維症における肝ヤング率値も広範な変動を示す(表2)。ヤング率値の違いは、AFMの動作モード、カンチレバーチップ、サンプル調製方法、サンプルの厚さ、くぼみの深さと力、測定中の肝臓組織環境、および分析方法の違いから生じます(表2)。
表2:細胞レベルでの肝臓のこわばり値。 AFMを使用して得られた肝臓のこわばり値は、細胞レベルでの肝臓の機械的特性を表します。略語:AFM =原子間力顕微鏡;E =弾性(ヤング)弾性率。PFA = パラホルムアルデヒド;PBS =リン酸緩衝生理食塩水。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
この論文では、偏光顕微鏡を使用して提供される正確な局在化を使用して、AFMによる肝臓組織のコラーゲンに富む線維性領域のヤング率の再現可能な測定のためのプロトコルについて説明します。四塩化炭素(CCl4)を投与して、マウスモデルにおいて小葉中心様式でコラーゲン沈着を誘導し49、ヒト肝線維症の重要な側面を確実に模倣した50。偏光顕微鏡画像は、コラーゲン線維51の複屈折による肝臓におけるコラーゲンの可視化を可能にし、これにより、肝小葉52内の所望の関心領域上でカンチレバー先端を正確に位置決めすることができる。
提示されたプロトコルは、正常および線維性マウス肝臓組織のAFM測定のための段階的な再現可能な方法を提供する。結合偏光顕微鏡は、高い空間精度を提供し、複屈折によるコラーゲン線維の視覚化を可能にします。さらに、得られた力曲線の解析の詳細な説明が提供される。AFM剛性測定は細胞レベルで行うことができるため、線維性疾患の発症による肝臓組織の機械的特性の局所的な変化を監視できます。肝線維症は、臓器全体に影響を与える均質なプロセスではありません。それどころか、コラーゲンが豊富な線維性中隔の領域には、コラーゲン沈着が少ないかまったくない領域が点在しています。したがって、剛性の変化は局所的な微小環境に固有であり、損傷によって損傷を受けた領域に局所的に接触している細胞にのみ影響します。このマイクロスケールの剛性の不均一性は、AFM Youngの弾性率マップの詳細でも明らかであり、剛性の高い点はほぼ通常の剛性の領域に隣接しています。この変動は、コラーゲン瘢痕組織領域でさえ機械的に均一ではなく、細胞レベルでの特性評価にはAFM測定が必要であることを示しています(図4)。
提示されたプロトコルは、OCTに埋め込まれた肝葉全体を-80°Cで長期間保存できるため、肝臓収集とは無関係にAFMによる肝臓の硬さの測定を可能にします。 ただし、組織切片を切片したら、長期間保存した組織切片が徐々に軟化するのが観察されているため、~2週間以内にサンプルを測定することをお勧めします(図5)。
偏光顕微鏡を搭載したAFMは、肝小葉構造内の関心領域を正確に特定することができます。ただし、結果を解釈するときに考慮する必要があるいくつかの制限もあります。ここで得られた剛性値は、室温で測定した。軟組織の機械的特性に対する温度の影響は小さいと仮定します。しかし、これは、報告されている肝臓組織の機械的特性の in vivo 値とこの研究の値との間に違いがある理由の1つである可能性があります。
さらに、このプロトコルは、組織の軽度の固定を必要とする最大3時間の肝臓組織のAFM分析を可能にします。組織切片の軽度の固定、および凍結融解サイクルは、ヤング率の絶対値に影響を与える可能性が最も高いです。したがって、ヤング率の報告値は、 in vivo 値とは異なる可能性があります。肝臓切片からのヤング率の絶対値の測定のためのプロトコルを最適化するためにさらなる研究が必要であり、これは肝臓組織の固定のための異なる方法によって達成され得る64。
それにもかかわらず、CCl4 で3週間治療されたマウスの肝臓のコラーゲンが豊富な領域の硬さが6週間と比較して増加していることが観察されました。このような変化は、長期の損傷中の線維症の進行に対応し(図4)、提示されたプロトコルを使用して異なる治療間で相対的な違いを調査できることを示しています。これは、穏やかに固定された肝臓切片が、コラーゲンが豊富な領域とコラーゲンが不足している領域の間で、新鮮な組織と同様の剛性値の違いを示すことを示したCalòらの観察と一致しています25。
測定中の肝臓組織の機械的破壊を最小限に抑えるために、直径5.7μmの球状先端で変更されたSD-qp-BioT-TL-10カンチレバー(理論ばね定数~0.09 N/m)を使用しました。5.7 μmのビーズにより、サンプルの完全性を維持しながら剛性を調べるのに十分なくぼみが可能になりました。いくつかの最適化の後、剛性マップでより高い分解能を得るために、より小さな直径のビードを使用できますが、ヤング率値のさらなる過大評価につながる可能性があります(詳細については、Crichtonら65を参照)。指定されたカンチレバービーズアンサンブルを使用して、数十単位Paから~100kPaまでの広い範囲でサンプル剛性を特徴付けることができました。
スネドンのモデルは、コロイドプローブ62で深いくぼみの分析を可能にするため、力曲線からヤング率を導き出すために使用されました。スネドンのモデルは、ヘルツのモデルとは異なり、接触半径が球の半径よりもはるかに小さくなければならないという制約を受けません。さらに、試料厚さが押し込み深さ30、66の数倍であると仮定する。本研究では、コラーゲンが豊富な領域でのくぼみは~2 μmで、ビーズサイズは5.7 μm、サンプルの厚さは30 μmでした。したがって、スネドンのモデルは適切でした。先端と基板との間の接着力を考慮した他のモデル63 は、異なるタイプの組織に使用することができる。
AtomicJでの解析では、ヤング率62,67を導き出しながら基板の寄与を最小限に抑えるために、サンプルの有限の厚さの補正を実装します。得られた力曲線の解析では、軟部組織器官24に対して以前に推奨されていた0.45の単一のポアソン比を使用しました。ポアソン比の値を0.4から0.5に変更しても、スネドンの式に従って計算されたヤング率の値は0.893倍減少するだけなので、この近似はヤング率の計算値に大きな影響を与えません。CCl4治療の異なる期間間のヤング率の何倍もの差を考えると、ポアソン比を近似することによって生じる誤差はわずかです。
剛性値の計算には、くぼみ68に対する塑性応答ではなく、カンチレバーによって提供される荷重に対する組織の弾性応答に関心があったため、引き出し曲線を使用しました。軟組織の粘弾性応答により、フィッティング撤退曲線はヤング率を過大評価する可能性があり、これは留意する必要があります。さらに、アプローチ曲線を使用したデータ分析では、絶対値はそれに応じて低くなりますが、線維化領域と対照領域の間で剛性値の傾向が類似していることが観察されました(データは示されていません)。
プロトコルを最適化する際に、測定の再現性に不可欠ないくつかのステップを特定しました。まず、ビードがカンチレバーに取り付ける際に半透明の先端のほぼ中央にあることを確認することが重要です。これにより、くぼみ中の機械的不均衡を防ぐことができます。第二に、PFAによる肝臓固定中は、解凍と固定の制限時間を厳守する必要があります。このステップのタイミングを変更すると、組織切片の機械的特性に深刻な影響を与える可能性があります。第三に、カンチレバーは、温度変動による剛性値にアーティファクトが発生するのを避けるために、継続的な監視と同時温度値の入力で繰り返し校正する必要があります。最後に、重ね合わせたPBSは長期間にわたって蒸発する可能性があるため、単一の肝臓切片は準備から3時間以上測定しないでください。読者は、AFM測定中に発生した問題を解決するためにトラブルシューティング表(表3)を参照することができ、Norman et al.46でも詳しく説明されています。
表3:トラブルシューティングガイド。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
提示されたプロトコルは、肝臓組織の再現性のあるAFMプロービングを可能にする。線維性肝疾患の発症と退縮に関する情報を顕微鏡レベルで明らかにする可能性を秘めており、慢性肝疾患の進行時に形成される線維性瘢痕領域を標的とした治療法の開発に貢献する可能性があります。
The authors have nothing to disclose.
この研究は、チェコ共和国の無償資金協力機関(18-02699S)、チェコ科学アカデミーの制度的研究プロジェクト(RVO 68378050)、およびMEYS CRプロジェクトNICR EXCELES(LX22NPO05102)の支援を受けました。CIISB、インストラクト-CZインストラクト-ERIC EUコンソーシアムセンター、MEYS CRインフラストラクチャプロジェクトLM2018127および欧州地域開発基金-プロジェクト「UP CIISB」によって資金提供されました(No.CZ.02.1.01/0.0/0.0/18_046/0015974)は、CFナノバイオテクノロジー、CEITEC MUでの測定を財政的に支援しました。また、MEYS(LM2018129、CZ.02.1.01/0.0/0.0/18_046/0016045)およびRVO:68378050-KAV-NPUIが支援する、チェコ共和国プラハの光学顕微鏡コアファシリティであるIMG CASが、ここに提示する顕微鏡イメージングのサポートについても認めます。
AFM head | Bruker | JPK nanowizard 3 | |
Cameras | Andor | Zyla 5.5 USB (sCMOS, water cooled) | |
The Imagingsource | S/N:12310015 | ||
Cantilever | SD-qp-BioT-TL-10, Nanosensors | S/N:73750F05 | |
Cryotome | Leica | CM1950 | |
Epoxy resin glue (Long working time ) | Bison epoxy universal | ||
Melamine beads; diameter, 5.7 um | Microparticles, GmbH | MF-R-5.7 | |
Microscope | Olympus | IX81 | |
Hydrophobic slide marker | SuperHT | PAP PEN | |
Software | JPK nanowizard v6.1.151 | ||
AtomicJ v2.3.1 | |||
Superfrost slides | Thermoscientific | ref no. J1800AMNZ | |
System | Ubuntu 14.04.5 LTS | ||
Vibration isolation control unit | Tablestable | AVI-200-S |