Summary

Identifiering av hemolytisk och fosfolipasaktivitet i råa extrakt från havsanemoner genom enkla bioassays

Published: March 29, 2022
doi:

Summary

Här beskriver vi ett protokoll för att erhålla rågiftextrakt från havsanemon och detektera dess hemolytiska och fosfolipasaktivitet.

Abstract

Havsanemongiftkomposition innefattar polypeptid- och icke-proteinmolekyler. Cytolytiska komponenter har en hög bioteknisk och biomedicinsk potential för att designa nya molekylära verktyg. Havsanemongift lokaliseras i körtelceller från ektoderm och subcellulära strukturer som kallas nematocyster, som båda är fördelade över hela havsanemonkroppen. Denna egenskap innebär utmaningar eftersom cellerna och nematocysten måste lyseras för att frigöra giftkomponenterna med andra giftfria molekyler. Därför härrör giftet först från ett grovt extrakt (blandning av olika och olika molekyler och vävnadsskräp). Nästa steg är att detektera polypeptider med specifika bioaktiviteter. Här beskriver vi en effektiv strategi för att erhålla havsanemonråextraktet och bioassay för att identifiera närvaron av cytolysiner. Det första steget innebär billiga och enkla tekniker (omrörd och frys-tina cykel) för att frigöra cytolysiner. Vi erhöll den högsta cytolytiska aktiviteten och proteinet (~ 500 mg protein från 20 g torrvikt). Därefter analyserades polypeptidkomplexiteten hos extraktet av SDS-PAGE-gel som detekterade proteiner med molekylvikter mellan 10 kDa och 250 kDa. I den hemolytiska analysen använde vi fårröda blodkroppar och bestämde HU50 (11,1 ± 0,3 μg / ml). Däremot bestämdes närvaron av fosfolipaser i det råa extraktet med användning av äggula som substrat i ett fast medium med agaros. Sammantaget använder denna studie ett effektivt och billigt protokoll för att förbereda det råa extraktet och tillämpar replikerbara bioassays för att identifiera cytolysiner, molekyler med biotekniska och biomedicinska intressen.

Introduction

Marina djur är en rik källa till biologiskt aktiva föreningar. Under de senaste decennierna har sammansättningen av havsanemongift väckt vetenskaplig uppmärksamhet eftersom den omfattar en mångfald av polypeptider med hemolytisk, cytotoxisk, enzymatisk (fosfolipas, proteas, kitinas) och neurotoxisk aktivitet och hämmande effekter på proteolytisk aktivitet1. Dessutom är dessa polypeptider potentiella källor för utveckling av molekylära verktyg i bioteknisk och terapeutisk användning 2,3.

Det finns få rapporter om havsanemongift och dess molekylära komponenter på grund av komplexiteten att erhålla giftet, till och med isolering och karakterisering av toxiner. Extraktionsmetoderna som användes i rapporterna involverade lys och tömning av innehållet i celler som är relaterade och inte relaterade till giftproduktionen1.

En särskild egenskap hos alla cnidarians är frånvaron av ett system för produktion och frisättning av giftet centraliserat i en enda anatomisk region. Istället är nematocysterna strukturer som håller giftet 4,5. Andra typer av celler, som kallas epidermala körtelceller, utsöndrar också toxiner och fördelas också över hela kroppen av havsanemoner6.

Den första och mest avgörande utmaningen för att erhålla giftet är genereringen av ett extrakt med tillräcklig manipulation i efterföljande processer, utan inaktivering eller nedbrytning av labila proteiner. Därefter måste cellerna lyseras och komponenterna – i detta fall måste polypeptider extraheras effektivt och snabbt, vilket undviker proteolys och hydrolys samtidigt som andra cellulära komponenterelimineras 7.

Olika metoder används för att erhålla det råa extraktet av en havsanemon; vissa innebär att offra organismen medan andra tillåter den att hållas vid liv. Metoder som innebär användning av organismens hela kropp möjliggör frisättning av de flesta toxiner från giftet8, jämfört med metoder som håller organismer vid liv, som extraherar endast vissa komponenter i giftet9. Beredningen av ett extrakt kräver utvärdering av närvaron och styrkan hos ett ämne av intresse genom en specifik bioassay, som inkluderar strategier för att observera de farmakologiska effekterna med in vivo – eller in vitro-metoder 10.

Havsanemongift innehåller cytolytiska polypeptider, porbildande toxiner (PFT)11 och fosfolipaser12; dessa molekyler är modeller i studien av protein-lipidinteraktion, molekylära verktyg i cancerterapi och biosensorer baserade på nanopor3. Klassificeringen av havsanemon PFT utförs enligt deras storlek eller molekylvikt, från 5 kDa till 80 kDa. 20 kDa PFT, den mest studerade och kända som aktinoporiner11, är av särskilt intresse för sin biomedicinska potential i utvecklingen av molekylära verktyg för möjliga tillämpningar som anticancer, antimikrobiella och nanoporbaserade biosensorer. Ett annat cytolysin, inklusive fosfolipaser, specifikt fosfolipas A2 (PLA2)13, frigör en fettsyra på grund av och hydrolyserar fosfolipider, destabiliserar cellmembranet. På grund av denna verkningsmekanism lovar PLA2 att vara en viktig modell för studier och tillämpningar vid inflammatoriska sjukdomar. Det kan fungera som en modell för studier av lipidbeteende i cellmembranet14.

Här beskriver vi ett effektivt protokoll för att erhålla det råa extraktet från havsanemonen Anthopleura dowii Verrill, 1869, och detektera hemolysiner och fosfolipaser. Båda är relevanta toxiner som kan användas som mall för att designa nya molekylära verktyg.

Protocol

Havsanemonerna samlades in enligt riktlinjer från National Commission for Aquaculture, Fisheries and Food från Mexikos federala regering (tillståndsnummer PPF / DGOPTA 07332.250810.4060). Bioetikkommittén vid Institute of Biotechnology, National Autonomous University of Mexico godkände alla experiment med havsanemoner. Fårblodprovet köptes vid Center for Practical Teaching and Research in Animal Production and Health (CEPIPSA, National Autonomous University of Mexico). 1. Insamlin…

Representative Results

De representativa resultaten av protokollet som användes för att erhålla det råa extraktet av havsanemon visade att kombinationen av två tekniker (omrörning och cykler av frysning och upptining) gav en effektiv urladdning av nematocyster, och den totala mängden protein var 500 mg (8 mg / ml) (figur 3). Det råa extraktets proteinkomplexitet kunde observeras från 10 kDa och större än 250 kDa genom SDS-PAGE-elektrofores. Dessutom detekterades cytolysiner i…

Discussion

Den stora efterfrågan på nya föreningar med tillämpningar inom olika områden av vetenskap och industri har lett till studier av gift. Gift representerar en rik källa till molekyler som fungerar som en mall för att generera nya molekylära verktyg. Komplexiteten hos dessa gifter kräver emellertid implementering och kombination av olika metoder för att erhålla och studera dem.

Här visar vi en metod för att erhålla och analysera giftet från havsanemonen Anthopleura dowii, V…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica (PAPIIT), med bidragsnummer IT200819. Författarna erkänner Tom Musselman, Rock Paper Editing, LLC, för att ha kontrollerat den engelska grammatiken i detta manuskript; och tekniskt bistånd från Samanta Jiménez (CICESE, Ensenada) och Juan Manuel Barbosa Castillo (Instituto de Fisiología Celular, UNAM). Vi tackar också Dr Augusto César Lizarazo Chaparro (CEPIPSA) för att få fårblod. Vi tackar särskilt Dr José Saniger Blesa, ICAT-UNAM, för anläggningarna i hans laboratorium för videoinspelningen.

Materials

15 mL conical centrifuge tube Corning 430766
2-Bromophenol blue Sigma B75808
2-mercaptoetanol Sigma-Aldrich M6250-100ML
50 mL conical centrifuge tubes Corning 430828
Acetic Acid Glacial J.T. Baker 9515-03
Acrylamide Promega V3115
Agarose Promega V3125
Bisacrylamide Promega V3143
Bovine Serum Albumin Fraction V Sigma A3059-100G
Bradford Protein Assays Bio-Rad 5000006
Calcium chloride Sigma-Aldrich C3306
Cell culture plates 96 well, V-bottom Corning 3894
Centrifuge Eppendorf 5804R
Centrifuge tubes Corning CLS430829
ChemiDoc MP system Bio-Rad 1708280
Citric acid Sigma-Aldrich 251275
Clear flat.bottom 96-Well Plates Thermo Scientific 3855
Coomassie Brilliant Blue G-250 Bio-Rad #1610406
Coomassie brilliant blue R-250 Bio-Rad 1610400
Dextrose J.T. Baker 1916-01
Ductless Enclosure Labconco Vertical https://imagej.nih.gov/ij ImageJ 1.53c
Gel Doc EZ Bio Rad. Gel Documentation System
Glycerol Sigma-Aldrich G5516-4L
Hemocytometer Marienfeld 650030
ImageJ (Software) NIH, USA Version 1.53c
Incubator 211 Labnet I5211 DS
Methanol J.T. Baker 9049-03
Mini-PROTEAN tetra cell Bio-Rad 1658000EDU
Na2HPO4 J.T. Baker 3824-01
NaCl J.T. Baker 3624-01
NaH2PO4.H2O J.T. Baker 3818-05
Origin software version 9 To design the plot with sigmoidal adjustments
Petridish Falcon 351007
Pipetman kit Gilson F167380
Precast mini gel BioRad 1658004
Prestained Protein Ladder Thermo Scientific 26620
Protease Inhibitor Cocktail Roche 11836153001
Protein Assay Dye Reagent Concentrate Bio-Rad 5000006
Rhodamine 6G Sigma-Aldrich 252433
SDS Sigma-Aldrich L4509
Sodium citrate dihydrate JT Baker 3646-01
Spectrophotometer THERMO SCIENTIFIC G10S UV-VIS
Tris Base Sigma-Aldrich 77-86-1
Volt Power Supply Hoefer PS300B

Referenzen

  1. Frazão, B., Vasconcelos, V., Antunes, A. Sea anemone (Cnidaria, Anthozoa, Actiniaria) toxins: an overview. Marine Drugs. 10 (8), 1812-1851 (2012).
  2. Jayathilake, J. M. N. J., Gunathilake, K. V. K. Cnidarian toxins: recent evidences for potential therapeutic uses. The European Zoological Journal. 87 (1), 708-713 (2020).
  3. Ramírez-Carreto, S., Miranda-Zaragoza, B., Rodríguez-Almazán, C. Actinoporins: From the structure and function to the generation of biotechnological and therapeutic tools. Biomolecules. 10 (4), 539 (2020).
  4. Fautin, D. G. Structural diversity, systematics, and evolution of cnidae. Toxicon. Official Journal of the International Society on Toxinology. 54 (8), 1054-1064 (2009).
  5. Moran, Y., et al. Analysis of soluble protein contents from the nematocysts of a model sea anemone sheds light on venom evolution. Marine Biotechnology. 15 (3), 329-339 (2013).
  6. Moran, Y., et al. Neurotoxin localization to ectodermal gland cells uncovers an alternative mechanism of venom delivery in sea anemones. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 279 (1732), 1351-1358 (2012).
  7. Grabski, A. C. Advances in preparation of biological extracts for protein purification. Methods in Enzymology. 463, 285-303 (2009).
  8. Bulati, M., et al. Partially purified extracts of sea anemone Anemonia viridis affect the growth and viability of selected tumour cell lines. BioMed Research International. 2016, 3849897 (2016).
  9. Orts, D. J. B., et al. Biochemical and electrophysiological characterization of two sea anemone type 1 potassium toxins from a geographically distant population of Bunodosoma caissarum. Marine Drugs. 11 (3), 655-679 (2013).
  10. Hader, D., Erzinger, G. . Bioassays: Advanced Methods and Applications. , (2017).
  11. Anderluh, G., Macek, P. Cytolytic peptide and protein toxins from sea anemones (Anthozoa: Actiniaria). Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 40 (2), 111-124 (2002).
  12. Nevalainen, T. J., et al. Phospholipase A2 in cnidaria. Comparative Biochemistry and Physiology. Part B, Biochemistry & Molecular Biology. 139 (4), 731-735 (2004).
  13. Razpotnik, A., et al. A new phospholipase A2 isolated from the sea anemone Urticina crassicornis – its primary structure and phylogenetic classification. The FEBS Journal. 277 (12), 2641-2653 (2010).
  14. Dennis, E. A., Cao, J., Hsu, Y. -. H., Magrioti, V., Kokotos, G. Phospholipase A2 enzymes: Physical structure, biological function, disease implication, chemical inhibition, and therapeutic intervention. Chemical Reviews. 111 (10), 6130-6185 (2011).
  15. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72, 248-254 (1976).
  16. Kwon, Y. -. C., Jewett, M. C. High-throughput preparation methods of crude extract for robust cell-free protein synthesis. Scientific Reports. 5, 8663 (2015).
  17. Eno, A. E., Konya, R. S., Ibu, J. O. Biological properties of a venom extract from the sea anemone, Bunodosoma cavernata. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 36 (12), 2013-2020 (1998).
  18. Morales-Landa, J. L., et al. Antimicrobial, antiprotozoal, and toxic activities of Cnidarian extracts from the Mexican Caribbean Sea. Pharmaceutical Biology. 45 (1), 37-43 (2007).
  19. Sánchez-Rodríguez, J., Cruz-Vazquez, K. Isolation and biological characterization of neurotoxic compounds from the sea anemone Lebrunia danae (Duchassaing and Michelotti, 1860). Archives of Toxicology. 80 (7), 436-441 (2006).
  20. de Oliveira, J. S., et al. Caissarolysin I (Bcs I), a new hemolytic toxin from the Brazilian sea anemone Bunodosoma caissarum: purification and biological characterization. Biochimica Et Biophysica Acta. 1760 (3), 453-461 (2006).
  21. Norton, R. S., et al. Purification and characterisation of proteins with cardiac stimulatory and haemolytic activity from the anemone Actinia tenebrosa. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 28 (1), 29-41 (1990).
  22. Gondran, M., Eckeli, A. L., Migues, P. V., Gabilan, N. H., Rodrigues, A. L. S. The crude extract from the sea anemone, Bunodosoma caissarum elicits convulsions in mice: possible involvement of the glutamatergic system. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 40 (12), 1667-1674 (2002).
  23. Dion, A. S., Pomenti, A. A. Ammoniacal silver staining of proteins: mechanism of glutaraldehyde enhancement. Analytical Biochemistry. 129 (2), 490-496 (1983).
  24. Ramírez-Carreto, S., et al. Identification of a pore-forming protein from sea anemone Anthopleura dowii Verrill (1869) venom by mass spectrometry. The Journal of Venomous Animals and Toxins Including Tropical Diseases. 25, 147418 (2019).
  25. Nelson, G. J. Studies on the lipids of sheep red blood cells. I. Lipid composition in low and high potassium red cells. Lipids. 2 (1), 64-71 (1967).
  26. Ramírez-Carreto, S., et al. Transcriptomic and proteomic analysis of the tentacles and mucus of Anthopleura dowii Verrill, 1869. Marine Drugs. 17 (8), 436 (2019).
check_url/de/63630?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Ramírez-Carreto, S., Salazar-García, S. I., Macías Martínez, G., Rodríguez-Almazán, C. Identification of Hemolytic and Phospholipase Activity in Crude Extracts from Sea Anemones by Straightforward Bioassays. J. Vis. Exp. (181), e63630, doi:10.3791/63630 (2022).

View Video