Summary

Identifisering av hemolytisk og fosfolipaseaktivitet i råoljeekstrakter fra sjøemoner av enkle bioassays

Published: March 29, 2022
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokoll for å få rå giftekstrakt fra sjøemone og oppdage dens hemolytiske og fosfolipaseaktivitet.

Abstract

Havemone gift sammensetning inkluderer polypeptid og ikke-proteiner molekyler. Cytolytiske komponenter har et høyt bioteknologisk og biomedisinsk potensial for å designe nye molekylære verktøy. Sjøemone gift finner i kjertelceller fra ektoderm og sub-cellulære strukturer kalt nematocysts, som begge er fordelt over hele havets anemone kropp. Denne egenskapen innebærer utfordringer fordi cellene og nematocysten må lyses for å frigjøre giftkomponentene med andre ikke-giftige molekyler. Derfor er giften først avledet fra et råekstrakt (blanding av forskjellige og mangfoldige molekyler og vevsrester). Det neste trinnet er å oppdage polypeptider med spesifikke bioaktiviteter. Her beskriver vi en effektiv strategi for å få sjøemone råolje ekstrakt og bioassay for å identifisere tilstedeværelsen av cytolysiner. Det første trinnet innebærer billige og enkle teknikker (rørt og fryse-tine syklus) for å frigjøre cytolysiner. Vi fikk den høyeste cytolytiske aktiviteten og proteinet (~ 500 mg protein fra 20 g tørrvekt). Deretter ble polypeptidkompleksiteten til ekstraktet analysert av SDS-PAGE gel detekterende proteiner med molekylvekter mellom 10 kDa og 250 kDa. I den hemolytiske analysen brukte vi sauerøde blodlegemer og bestemte HU50 (11,1 ± 0,3 μg/ml). I motsetning ble tilstedeværelsen av fosfolipaser i råekstraktet bestemt ved hjelp av eggeplomme som substrat i et solid medium med agarose. Samlet sett bruker denne studien en effektiv og billig protokoll for å forberede råoljeekstraktet og bruker replikerbare bioassays for å identifisere cytolysiner, molekyler med bioteknologiske og biomedisinske interesser.

Introduction

Marine dyr er en rik kilde til biologisk aktive forbindelser. I de siste tiårene har sammensetningen av sjøemone gift tiltrukket seg vitenskapelig oppmerksomhet siden den består av et mangfold av polypeptider med hemolytisk, cytotoksisk, enzymatisk (fosfolipase, protease, chitinase) og nevrotoksisk aktivitet og hemmende effekter på proteolytisk aktivitet1. I tillegg er disse polypeptider potensielle kilder for utvikling av molekylære verktøy i bioteknologisk og terapeutisk bruk 2,3.

Det er få rapporter om sjøemongift og dens molekylære komponenter på grunn av kompleksiteten ved å skaffe giftet, til og med isolasjon og karakterisering av giftstoffer. Utvinningsmetodene som brukes i rapportene involverte lysis og tømming av innholdet i celler som er relatert og ikke relatert til giftproduksjonen1.

En spesiell egenskap i alle cnidarians er fraværet av et system for produksjon og frigjøring av giftet sentralisert i en enkelt anatomisk region. I stedet er nematocystene strukturer som holder giften 4,5. Andre typer celler, kalt epidermale kjertelceller, skiller også ut giftstoffer og fordeles også over hele kroppen av sjømoner6.

Den første og mest avgjørende utfordringen med å skaffe giftet er genereringen av et ekstrakt med tilstrekkelig manipulasjon i etterfølgende prosesser, uten inaktivering eller nedbrytning av labile proteiner. Deretter må cellene lyses, og komponentene – i dette tilfellet må polypeptider effektivt og raskt ekstraheres, unngå proteolyse og hydrolyse mens du eliminerer andre cellulære komponenter7.

Ulike metoder brukes for å oppnå rå ekstrakt av en sjøemone; noen innebærer å ofre organismen mens andre tillater det å bli holdt i live. Metoder som innebærer bruk av organismens hele kropp tillater frigjøring av de fleste giftstoffer fragiften 8, sammenlignet med metoder som holder organismer i live, som bare trekker ut noen komponenter i giftet9. Utarbeidelsen av et ekstrakt krever evaluering av tilstedeværelse og styrke av et stoff av interesse gjennom en bestemt bioassay, som inkluderer strategier for å observere de farmakologiske effektene ved in vivo eller in vitro metoder10.

Sjøemone gift inneholder cytolytiske polypeptider, poredannende toksiner (PFTs)11 og fosfolipaser12; Disse molekylene er modeller i studiet av protein-lipid interaksjon, molekylære verktøy i kreftterapi og biosensorer basert på nanopore3. Klassifiseringen av sjøemone PFTer utføres i henhold til deres størrelse eller molekylvekt, fra 5 kDa til 80 kDa. Den 20 kDa PFT, den mest studerte og kjent som actinoporins11, er av spesiell interesse for sitt biomedisinske potensial i utviklingen av molekylære verktøy for mulige applikasjoner som anticancer, antimikrobielle og nanoporebaserte biosensorer. En annen cytolysin, inkludert fosfolipaser, spesielt fosfolipase A2 (PLA2)13, frigjør en fettsyre på grunn og hydrolyserer fosfolipider, destabiliserer cellemembranen. På grunn av denne virkningsmekanismen lover PLA2 å være en viktig modell for studien og anvendelser i inflammatoriske sykdommer. Det kan tjene som modell for studier av lipidadferd i cellemembranen14.

Her beskriver vi en effektiv protokoll for å skaffe råoljeekstraktet fra sjøemone Anthopleura dowii Verrill, 1869, og oppdage hemolysiner og fosfolipaser. Begge er relevante giftstoffer som kan brukes som mal for å designe nye molekylære verktøy.

Protocol

Sjøemonene ble samlet inn i henhold til retningslinjene fra Den nasjonale kommisjonen for akvakultur, fiskeri og mat fra den føderale regjeringen i Mexico (tillatelsesnummer PPF / DGOPTA 07332.250810.4060). Bioetikkkomiteen ved Institutt for bioteknologi, National Autonomous University of Mexico godkjente alle forsøkene med sjøanemoner. Saueblodprøven ble kjøpt ved Center for Practical Teaching and Research in Animal Production and Health (CEPIPSA, National Autonomous University of Mexico). <p class="jove_title…

Representative Results

De representative resultatene av protokollen som ble brukt til å oppnå rå ekstrakt av sjøemone viste at å kombinere to teknikker (agitasjon og sykluser med frysing og tining) ga en effektiv utslipp av nematocyster, og den totale mengden protein var 500 mg (8 mg / ml) (figur 3). Råekstraktens proteinkompleksitet kunne observeres fra 10 kDa og større enn 250 kDa gjennom SDS-PAGE elektroforese. I tillegg ble cytolysiner påvist i molekylvektsonen på 15 kDa og…

Discussion

Den høye etterspørselen etter nye forbindelser med anvendelser innen ulike fagområder og industri har ført til studiet av gift. Gift representerer en rik kilde til molekyler som fungerer som en mal for å generere nye molekylære verktøy. Imidlertid krever kompleksiteten til disse giftene implementering og kombinasjon av ulike metoder for å skaffe og studere dem.

Her viser vi en metode for å skaffe og analysere giftet til sjøemonen Anthopleura dowii, Verrill 1869, som kan bruk…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica (PAPIIT), med et tilskuddsnummer IT200819. Forfatterne erkjenner til Tom Musselman, Rock Paper Editing, LLC, for å sjekke den engelske grammatikken i dette manuskriptet; og den tekniske hjelpen til Samanta Jiménez (CICESE, Ensenada) og Juan Manuel Barbosa Castillo (Instituto de Fisiología Celular, UNAM). Vi takker også dr. Augusto César Lizarazo Chaparro (CEPIPSA) for å ha skaffet saueblod. Vi takker spesielt Dr José Saniger Blesa, ICAT-UNAM, for fasilitetene i laboratoriet hans for videoopptaket.

Materials

15 mL conical centrifuge tube Corning 430766
2-Bromophenol blue Sigma B75808
2-mercaptoetanol Sigma-Aldrich M6250-100ML
50 mL conical centrifuge tubes Corning 430828
Acetic Acid Glacial J.T. Baker 9515-03
Acrylamide Promega V3115
Agarose Promega V3125
Bisacrylamide Promega V3143
Bovine Serum Albumin Fraction V Sigma A3059-100G
Bradford Protein Assays Bio-Rad 5000006
Calcium chloride Sigma-Aldrich C3306
Cell culture plates 96 well, V-bottom Corning 3894
Centrifuge Eppendorf 5804R
Centrifuge tubes Corning CLS430829
ChemiDoc MP system Bio-Rad 1708280
Citric acid Sigma-Aldrich 251275
Clear flat.bottom 96-Well Plates Thermo Scientific 3855
Coomassie Brilliant Blue G-250 Bio-Rad #1610406
Coomassie brilliant blue R-250 Bio-Rad 1610400
Dextrose J.T. Baker 1916-01
Ductless Enclosure Labconco Vertical https://imagej.nih.gov/ij ImageJ 1.53c
Gel Doc EZ Bio Rad. Gel Documentation System
Glycerol Sigma-Aldrich G5516-4L
Hemocytometer Marienfeld 650030
ImageJ (Software) NIH, USA Version 1.53c
Incubator 211 Labnet I5211 DS
Methanol J.T. Baker 9049-03
Mini-PROTEAN tetra cell Bio-Rad 1658000EDU
Na2HPO4 J.T. Baker 3824-01
NaCl J.T. Baker 3624-01
NaH2PO4.H2O J.T. Baker 3818-05
Origin software version 9 To design the plot with sigmoidal adjustments
Petridish Falcon 351007
Pipetman kit Gilson F167380
Precast mini gel BioRad 1658004
Prestained Protein Ladder Thermo Scientific 26620
Protease Inhibitor Cocktail Roche 11836153001
Protein Assay Dye Reagent Concentrate Bio-Rad 5000006
Rhodamine 6G Sigma-Aldrich 252433
SDS Sigma-Aldrich L4509
Sodium citrate dihydrate JT Baker 3646-01
Spectrophotometer THERMO SCIENTIFIC G10S UV-VIS
Tris Base Sigma-Aldrich 77-86-1
Volt Power Supply Hoefer PS300B

Referenzen

  1. Frazão, B., Vasconcelos, V., Antunes, A. Sea anemone (Cnidaria, Anthozoa, Actiniaria) toxins: an overview. Marine Drugs. 10 (8), 1812-1851 (2012).
  2. Jayathilake, J. M. N. J., Gunathilake, K. V. K. Cnidarian toxins: recent evidences for potential therapeutic uses. The European Zoological Journal. 87 (1), 708-713 (2020).
  3. Ramírez-Carreto, S., Miranda-Zaragoza, B., Rodríguez-Almazán, C. Actinoporins: From the structure and function to the generation of biotechnological and therapeutic tools. Biomolecules. 10 (4), 539 (2020).
  4. Fautin, D. G. Structural diversity, systematics, and evolution of cnidae. Toxicon. Official Journal of the International Society on Toxinology. 54 (8), 1054-1064 (2009).
  5. Moran, Y., et al. Analysis of soluble protein contents from the nematocysts of a model sea anemone sheds light on venom evolution. Marine Biotechnology. 15 (3), 329-339 (2013).
  6. Moran, Y., et al. Neurotoxin localization to ectodermal gland cells uncovers an alternative mechanism of venom delivery in sea anemones. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 279 (1732), 1351-1358 (2012).
  7. Grabski, A. C. Advances in preparation of biological extracts for protein purification. Methods in Enzymology. 463, 285-303 (2009).
  8. Bulati, M., et al. Partially purified extracts of sea anemone Anemonia viridis affect the growth and viability of selected tumour cell lines. BioMed Research International. 2016, 3849897 (2016).
  9. Orts, D. J. B., et al. Biochemical and electrophysiological characterization of two sea anemone type 1 potassium toxins from a geographically distant population of Bunodosoma caissarum. Marine Drugs. 11 (3), 655-679 (2013).
  10. Hader, D., Erzinger, G. . Bioassays: Advanced Methods and Applications. , (2017).
  11. Anderluh, G., Macek, P. Cytolytic peptide and protein toxins from sea anemones (Anthozoa: Actiniaria). Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 40 (2), 111-124 (2002).
  12. Nevalainen, T. J., et al. Phospholipase A2 in cnidaria. Comparative Biochemistry and Physiology. Part B, Biochemistry & Molecular Biology. 139 (4), 731-735 (2004).
  13. Razpotnik, A., et al. A new phospholipase A2 isolated from the sea anemone Urticina crassicornis – its primary structure and phylogenetic classification. The FEBS Journal. 277 (12), 2641-2653 (2010).
  14. Dennis, E. A., Cao, J., Hsu, Y. -. H., Magrioti, V., Kokotos, G. Phospholipase A2 enzymes: Physical structure, biological function, disease implication, chemical inhibition, and therapeutic intervention. Chemical Reviews. 111 (10), 6130-6185 (2011).
  15. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72, 248-254 (1976).
  16. Kwon, Y. -. C., Jewett, M. C. High-throughput preparation methods of crude extract for robust cell-free protein synthesis. Scientific Reports. 5, 8663 (2015).
  17. Eno, A. E., Konya, R. S., Ibu, J. O. Biological properties of a venom extract from the sea anemone, Bunodosoma cavernata. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 36 (12), 2013-2020 (1998).
  18. Morales-Landa, J. L., et al. Antimicrobial, antiprotozoal, and toxic activities of Cnidarian extracts from the Mexican Caribbean Sea. Pharmaceutical Biology. 45 (1), 37-43 (2007).
  19. Sánchez-Rodríguez, J., Cruz-Vazquez, K. Isolation and biological characterization of neurotoxic compounds from the sea anemone Lebrunia danae (Duchassaing and Michelotti, 1860). Archives of Toxicology. 80 (7), 436-441 (2006).
  20. de Oliveira, J. S., et al. Caissarolysin I (Bcs I), a new hemolytic toxin from the Brazilian sea anemone Bunodosoma caissarum: purification and biological characterization. Biochimica Et Biophysica Acta. 1760 (3), 453-461 (2006).
  21. Norton, R. S., et al. Purification and characterisation of proteins with cardiac stimulatory and haemolytic activity from the anemone Actinia tenebrosa. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 28 (1), 29-41 (1990).
  22. Gondran, M., Eckeli, A. L., Migues, P. V., Gabilan, N. H., Rodrigues, A. L. S. The crude extract from the sea anemone, Bunodosoma caissarum elicits convulsions in mice: possible involvement of the glutamatergic system. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 40 (12), 1667-1674 (2002).
  23. Dion, A. S., Pomenti, A. A. Ammoniacal silver staining of proteins: mechanism of glutaraldehyde enhancement. Analytical Biochemistry. 129 (2), 490-496 (1983).
  24. Ramírez-Carreto, S., et al. Identification of a pore-forming protein from sea anemone Anthopleura dowii Verrill (1869) venom by mass spectrometry. The Journal of Venomous Animals and Toxins Including Tropical Diseases. 25, 147418 (2019).
  25. Nelson, G. J. Studies on the lipids of sheep red blood cells. I. Lipid composition in low and high potassium red cells. Lipids. 2 (1), 64-71 (1967).
  26. Ramírez-Carreto, S., et al. Transcriptomic and proteomic analysis of the tentacles and mucus of Anthopleura dowii Verrill, 1869. Marine Drugs. 17 (8), 436 (2019).
check_url/de/63630?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Ramírez-Carreto, S., Salazar-García, S. I., Macías Martínez, G., Rodríguez-Almazán, C. Identification of Hemolytic and Phospholipase Activity in Crude Extracts from Sea Anemones by Straightforward Bioassays. J. Vis. Exp. (181), e63630, doi:10.3791/63630 (2022).

View Video