Summary

Identifikation af hæmolytisk og fosfolipaseaktivitet i råekstrakter fra søanemoner ved hjælp af enkle bioassays

Published: March 29, 2022
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokol til opnåelse af rågiftekstrakt fra havanemonen og detekterer dens hæmolytiske og phospholipaseaktivitet.

Abstract

Havanemongiftsammensætning indbefatter polypeptid- og ikke-proteinmolekyler. Cytolytiske komponenter har et højt bioteknologisk og biomedicinsk potentiale til at designe nye molekylære værktøjer. Havanemongift lokaliserer i kirtelceller fra ektoderm og subcellulære strukturer kaldet nematocysts, som begge er fordelt over hele havanemonens krop. Denne egenskab indebærer udfordringer, fordi cellerne og nematocystet skal lyseres for at frigive giftkomponenterne med andre ikke-toksiske molekyler. Derfor er giften for det første afledt af et råekstrakt (blanding af forskellige og forskellige molekyler og vævsaffald). Det næste skridt er at detektere polypeptider med specifikke bioaktiviteter. Her beskriver vi en effektiv strategi for at opnå havanemonens råekstrakt og bioassay for at identificere tilstedeværelsen af cytolysiner. Det første skridt involverer billige og ligetil teknikker (omrørt og fryse-optøningscyklus) til frigivelse af cytolysiner. Vi opnåede den højeste cytolytiske aktivitet og protein (~ 500 mg protein fra 20 g tørvægt). Dernæst blev ekstraktets polypeptidkompleksitet analyseret ved SDS-PAGE gel, der detekterede proteiner med molekylvægte mellem 10 kDa og 250 kDa. I det hæmolytiske assay brugte vi fårerøde blodlegemer og bestemte HU50 (11,1 ± 0,3 μg / ml). I modsætning hertil blev tilstedeværelsen af phospholipaser i råekstraktet bestemt under anvendelse af æggeblomme som substrat i et fast medium med agarose. Samlet set bruger denne undersøgelse en effektiv og billig protokol til at forberede råekstraktet og anvender replikerbare bioassays til at identificere cytolysiner, molekyler med bioteknologiske og biomedicinske interesser.

Introduction

Havdyr er en rig kilde til biologisk aktive forbindelser. I de seneste årtier har sammensætningen af havanemongift tiltrukket sig videnskabelig opmærksomhed, da den omfatter en mangfoldighed af polypeptider med hæmolytisk, cytotoksisk, enzymatisk (phospholipase, protease, chitinase) og neurotoksisk aktivitet og hæmmende virkninger på proteolytisk aktivitet1. Derudover er disse polypeptider potentielle kilder til udvikling af molekylære værktøjer i bioteknologisk og terapeutisk anvendelse 2,3.

Der er få rapporter om havanemonegift og dets molekylære komponenter på grund af kompleksiteten ved at opnå giften, endda isolering og karakterisering af toksiner. De ekstraktionsmetoder, der blev anvendt i rapporterne, involverede lysis og tømning af indholdet af celler, der er relateret til og ikke relateret til giftproduktionen1.

Et særligt kendetegn hos alle cnidarians er fraværet af et system til produktion og frigivelse af giften centraliseret i en enkelt anatomisk region. I stedet er nematocysterne strukturer, der holder giften 4,5. Andre typer celler, kaldet epidermale kirtelceller, udskiller også toksiner og fordeles også i hele kroppen af havanemoner6.

Den første og mest afgørende udfordring ved at opnå giften er dannelsen af et ekstrakt med tilstrækkelig manipulation i efterfølgende processer uden inaktivering eller nedbrydning af labile proteiner. Dernæst skal cellerne lyseres, og komponenterne – i dette tilfælde polypeptider skal ekstraheres effektivt og hurtigt, idet proteolyse og hydrolyse undgås, samtidig med at andre cellulære komponenter elimineres7.

Forskellige metoder anvendes til at opnå det rå ekstrakt af en søanemone; nogle involverer at ofre organismen, mens andre tillader den at blive holdt i live. Metoder, der indebærer anvendelse af organismens hele krop, giver mulighed for frigivelse af de fleste toksiner fra giften8 sammenlignet med metoder, der holder organismer i live, som kun ekstraherer nogle komponenter i giften9. Fremstillingen af et ekstrakt kræver evaluering af tilstedeværelsen og styrken af et stof af interesse gennem et specifikt bioassay, som omfatter strategier til at observere de farmakologiske virkninger ved in vivo- eller in vitro-metoder 10.

Havanemongift indeholder cytolytiske polypeptider, poredannende toksiner (PFT’er)11 og phospholipaser12; disse molekyler er modeller i studiet af protein-lipidinteraktion, molekylære værktøjer i kræftterapi og biosensorer baseret på nanopore3. Klassificeringen af havanemon pft’er udføres i henhold til deres størrelse eller molekylvægt, fra 5 kDa til 80 kDa. 20 kDa PFT, den mest undersøgte og kendt som actinoporiner11, er af særlig interesse for sit biomedicinske potentiale i udviklingen af molekylære værktøjer til mulige anvendelser som anticancer-, antimikrobielle og nanoporebaserede biosensorer. Et andet cytolysin, herunder phospholipaser, specifikt phospholipase A2 (PLA2)13, frigiver en fedtsyre på grund af og hydrolyserer phospholipider, destabiliserer cellemembranen. På grund af denne virkningsmekanisme lover PLA2 at være en væsentlig model for undersøgelse og anvendelser i inflammatoriske sygdomme. Det kunne tjene som en model for undersøgelser af lipidadfærd i cellemembranen14.

Her beskriver vi en effektiv protokol til opnåelse af råekstraktet fra havanemonen Anthopleura dowii Verrill, 1869, og påvisning af hæmolysiner og phospholipaser. Begge er relevante toksiner, der kan bruges som skabelon til at designe nye molekylære værktøjer.

Protocol

Søanemonerne blev indsamlet i henhold til retningslinjer fra National Commission for Aquaculture, Fisheries and Food fra Mexicos føderale regering (tilladelsesnummer PPF / DGOPTA 07332.250810.4060). Bioetikudvalget ved Institut for Bioteknologi, National Autonomous University of Mexico godkendte alle eksperimenter med havanemoner. Fåreblodprøven blev købt på Center for Praktisk Undervisning og Forskning i Animalsk Produktion og Sundhed (CEPIPSA, National Autonomous University of Mexico). <…

Representative Results

De repræsentative resultater af den protokol, der blev anvendt til at opnå det rå ekstrakt af søanemon, viste, at kombinationen af to teknikker (omrøring og cyklusser med frysning og optøning) frembragte en effektiv udledning af nematocyster, og den samlede mængde protein var 500 mg (8 mg/ml) (figur 3). Råekstraktets proteinkompleksitet kunne observeres fra 10 kDa og større end 250 kDa gennem SDS-PAGE elektroforese. Derudover blev cytolysiner påvist i mo…

Discussion

Den store efterspørgsel efter nye forbindelser med anvendelser inden for forskellige områder af videnskab og industri har ført til undersøgelsen af gift. Gift repræsenterer en rig kilde til molekyler, der tjener som en skabelon til generering af nye molekylære værktøjer. Kompleksiteten af disse gifte kræver imidlertid implementering og kombination af forskellige metoder til at opnå og studere dem.

Her viser vi en metode til at opnå og analysere giften fra havanemonen Anthopleura…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica (PAPIIT) med et tilskudsnummer IT200819. Forfatterne anerkender Tom Musselman, Rock Paper Editing, LLC, for at kontrollere den engelske grammatik i dette manuskript; og teknisk bistand fra Samanta Jiménez (CICESE, Ensenada) og Juan Manuel Barbosa Castillo (Instituto de Fisiología Celular, UNAM). Vi takker også Dr. Augusto César Lizarazo Chaparro (CEPIPSA) for at have fået fåreblod. Vi takker især Dr. José Saniger Blesa, ICAT-UNAM, for faciliteterne i hans laboratorium til videooptagelsen.

Materials

15 mL conical centrifuge tube Corning 430766
2-Bromophenol blue Sigma B75808
2-mercaptoetanol Sigma-Aldrich M6250-100ML
50 mL conical centrifuge tubes Corning 430828
Acetic Acid Glacial J.T. Baker 9515-03
Acrylamide Promega V3115
Agarose Promega V3125
Bisacrylamide Promega V3143
Bovine Serum Albumin Fraction V Sigma A3059-100G
Bradford Protein Assays Bio-Rad 5000006
Calcium chloride Sigma-Aldrich C3306
Cell culture plates 96 well, V-bottom Corning 3894
Centrifuge Eppendorf 5804R
Centrifuge tubes Corning CLS430829
ChemiDoc MP system Bio-Rad 1708280
Citric acid Sigma-Aldrich 251275
Clear flat.bottom 96-Well Plates Thermo Scientific 3855
Coomassie Brilliant Blue G-250 Bio-Rad #1610406
Coomassie brilliant blue R-250 Bio-Rad 1610400
Dextrose J.T. Baker 1916-01
Ductless Enclosure Labconco Vertical https://imagej.nih.gov/ij ImageJ 1.53c
Gel Doc EZ Bio Rad. Gel Documentation System
Glycerol Sigma-Aldrich G5516-4L
Hemocytometer Marienfeld 650030
ImageJ (Software) NIH, USA Version 1.53c
Incubator 211 Labnet I5211 DS
Methanol J.T. Baker 9049-03
Mini-PROTEAN tetra cell Bio-Rad 1658000EDU
Na2HPO4 J.T. Baker 3824-01
NaCl J.T. Baker 3624-01
NaH2PO4.H2O J.T. Baker 3818-05
Origin software version 9 To design the plot with sigmoidal adjustments
Petridish Falcon 351007
Pipetman kit Gilson F167380
Precast mini gel BioRad 1658004
Prestained Protein Ladder Thermo Scientific 26620
Protease Inhibitor Cocktail Roche 11836153001
Protein Assay Dye Reagent Concentrate Bio-Rad 5000006
Rhodamine 6G Sigma-Aldrich 252433
SDS Sigma-Aldrich L4509
Sodium citrate dihydrate JT Baker 3646-01
Spectrophotometer THERMO SCIENTIFIC G10S UV-VIS
Tris Base Sigma-Aldrich 77-86-1
Volt Power Supply Hoefer PS300B

Referenzen

  1. Frazão, B., Vasconcelos, V., Antunes, A. Sea anemone (Cnidaria, Anthozoa, Actiniaria) toxins: an overview. Marine Drugs. 10 (8), 1812-1851 (2012).
  2. Jayathilake, J. M. N. J., Gunathilake, K. V. K. Cnidarian toxins: recent evidences for potential therapeutic uses. The European Zoological Journal. 87 (1), 708-713 (2020).
  3. Ramírez-Carreto, S., Miranda-Zaragoza, B., Rodríguez-Almazán, C. Actinoporins: From the structure and function to the generation of biotechnological and therapeutic tools. Biomolecules. 10 (4), 539 (2020).
  4. Fautin, D. G. Structural diversity, systematics, and evolution of cnidae. Toxicon. Official Journal of the International Society on Toxinology. 54 (8), 1054-1064 (2009).
  5. Moran, Y., et al. Analysis of soluble protein contents from the nematocysts of a model sea anemone sheds light on venom evolution. Marine Biotechnology. 15 (3), 329-339 (2013).
  6. Moran, Y., et al. Neurotoxin localization to ectodermal gland cells uncovers an alternative mechanism of venom delivery in sea anemones. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 279 (1732), 1351-1358 (2012).
  7. Grabski, A. C. Advances in preparation of biological extracts for protein purification. Methods in Enzymology. 463, 285-303 (2009).
  8. Bulati, M., et al. Partially purified extracts of sea anemone Anemonia viridis affect the growth and viability of selected tumour cell lines. BioMed Research International. 2016, 3849897 (2016).
  9. Orts, D. J. B., et al. Biochemical and electrophysiological characterization of two sea anemone type 1 potassium toxins from a geographically distant population of Bunodosoma caissarum. Marine Drugs. 11 (3), 655-679 (2013).
  10. Hader, D., Erzinger, G. . Bioassays: Advanced Methods and Applications. , (2017).
  11. Anderluh, G., Macek, P. Cytolytic peptide and protein toxins from sea anemones (Anthozoa: Actiniaria). Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 40 (2), 111-124 (2002).
  12. Nevalainen, T. J., et al. Phospholipase A2 in cnidaria. Comparative Biochemistry and Physiology. Part B, Biochemistry & Molecular Biology. 139 (4), 731-735 (2004).
  13. Razpotnik, A., et al. A new phospholipase A2 isolated from the sea anemone Urticina crassicornis – its primary structure and phylogenetic classification. The FEBS Journal. 277 (12), 2641-2653 (2010).
  14. Dennis, E. A., Cao, J., Hsu, Y. -. H., Magrioti, V., Kokotos, G. Phospholipase A2 enzymes: Physical structure, biological function, disease implication, chemical inhibition, and therapeutic intervention. Chemical Reviews. 111 (10), 6130-6185 (2011).
  15. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72, 248-254 (1976).
  16. Kwon, Y. -. C., Jewett, M. C. High-throughput preparation methods of crude extract for robust cell-free protein synthesis. Scientific Reports. 5, 8663 (2015).
  17. Eno, A. E., Konya, R. S., Ibu, J. O. Biological properties of a venom extract from the sea anemone, Bunodosoma cavernata. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 36 (12), 2013-2020 (1998).
  18. Morales-Landa, J. L., et al. Antimicrobial, antiprotozoal, and toxic activities of Cnidarian extracts from the Mexican Caribbean Sea. Pharmaceutical Biology. 45 (1), 37-43 (2007).
  19. Sánchez-Rodríguez, J., Cruz-Vazquez, K. Isolation and biological characterization of neurotoxic compounds from the sea anemone Lebrunia danae (Duchassaing and Michelotti, 1860). Archives of Toxicology. 80 (7), 436-441 (2006).
  20. de Oliveira, J. S., et al. Caissarolysin I (Bcs I), a new hemolytic toxin from the Brazilian sea anemone Bunodosoma caissarum: purification and biological characterization. Biochimica Et Biophysica Acta. 1760 (3), 453-461 (2006).
  21. Norton, R. S., et al. Purification and characterisation of proteins with cardiac stimulatory and haemolytic activity from the anemone Actinia tenebrosa. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 28 (1), 29-41 (1990).
  22. Gondran, M., Eckeli, A. L., Migues, P. V., Gabilan, N. H., Rodrigues, A. L. S. The crude extract from the sea anemone, Bunodosoma caissarum elicits convulsions in mice: possible involvement of the glutamatergic system. Toxicon: Official Journal of the International Society on Toxinology. 40 (12), 1667-1674 (2002).
  23. Dion, A. S., Pomenti, A. A. Ammoniacal silver staining of proteins: mechanism of glutaraldehyde enhancement. Analytical Biochemistry. 129 (2), 490-496 (1983).
  24. Ramírez-Carreto, S., et al. Identification of a pore-forming protein from sea anemone Anthopleura dowii Verrill (1869) venom by mass spectrometry. The Journal of Venomous Animals and Toxins Including Tropical Diseases. 25, 147418 (2019).
  25. Nelson, G. J. Studies on the lipids of sheep red blood cells. I. Lipid composition in low and high potassium red cells. Lipids. 2 (1), 64-71 (1967).
  26. Ramírez-Carreto, S., et al. Transcriptomic and proteomic analysis of the tentacles and mucus of Anthopleura dowii Verrill, 1869. Marine Drugs. 17 (8), 436 (2019).
check_url/de/63630?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Ramírez-Carreto, S., Salazar-García, S. I., Macías Martínez, G., Rodríguez-Almazán, C. Identification of Hemolytic and Phospholipase Activity in Crude Extracts from Sea Anemones by Straightforward Bioassays. J. Vis. Exp. (181), e63630, doi:10.3791/63630 (2022).

View Video