Summary

DNA 커튼 기법에 의한 히스톤 조립의 분자 메커니즘 해독

Published: March 09, 2022
doi:

Summary

고처리량 단일 분자 이미징 기술인 DNA 커튼은 다양한 단백질-DNA 상호 작용의 실시간 시각화를 위한 플랫폼을 제공합니다. 본 프로토콜은 DNA 커튼 기술을 활용하여 Schizosaccharomyces pombe bromodomain-containing AAA+ ATPase인 Abo1의 생물학적 역할과 분자 메커니즘을 조사합니다.

Abstract

크로마틴은 진핵생물 DNA를 포장하는 고차원 구조입니다. 크로마틴은 세포 주기 단계와 환경 자극에 대한 반응에 따라 동적 변화를 겪습니다. 이러한 변화는 게놈 무결성, 후성유전학적 조절 및 복제, 전사 및 복구와 같은 DNA 대사 반응에 필수적입니다. 염색질 조립은 염색질 역학에 매우 중요하며 히스톤 샤페론에 의해 촉매됩니다. 광범위한 연구에도 불구하고 히스톤 샤페론이 염색질 조립을 가능하게 하는 메커니즘은 여전히 파악하기 어렵습니다. 더욱이, 히스톤 샤페론(histone chaperone)에 의해 조직된 뉴클레오솜(nucleosome)의 전반적인 특징은 잘 이해되지 않고 있다. 이 문제를 다루기 위하여는, 이 일은 히스톤 chaperones에 의하여 뉴클레오솜 집합의 분자 세부사항의 수사를 촉진하는 DNA 커튼이라고 지명된 유일한 단 하나 분자 화상 진찰 기술을 기술합니다. DNA 커튼은 지질 유동성, 미세유체역학 및 전반사 형광 현미경(TIRFM)을 결합하여 다양한 단백질-DNA 상호 작용의 실시간 이미징을 위한 범용 플랫폼을 제공하는 하이브리드 기술입니다. DNA 커튼을 사용하여 Abo1의 히스톤 샤페론 기능, Schizosaccharomyces pombe bromodomain-containing AAA+ ATPase를 조사하고 Abo1의 히스톤 조립의 기저에 있는 분자 메커니즘을 밝힙니다. DNA 커튼은 염색질 역학을 연구하기 위한 독특한 접근 방식을 제공합니다.

Introduction

진핵생물 DNA는 염색질 1,2로 알려진 고차원 구조로 포장되어 있습니다. 뉴클레오솜은 크로마틴의 기본 단위로, 팔각형 코어 히스톤 3,4를 감싸고 있는 약 147bp DNA로 구성됩니다. 염색질은 진핵 세포에서 중요한 역할을합니다. 예를 들어, 조밀한 구조는 내인성 요인과 외인성 위협으로부터 DNA를 보호한다5. 염색질 구조는 세포주기 단계와 환경 자극에 따라 동적으로 변화하며, 이러한 변화는 복제, 전사 및 복구와 같은 DNA 거래 중에 단백질 접근을 제어한다6. 염색질 역학은 게놈 안정성과 후성유전학적 정보에도 중요합니다.

염색질은 히스톤 꼬리 변형 및 염색질 리모델러, 폴리콤 그룹 단백질 및 히스톤 샤페론과 같은 염색질 조직자를 포함한 다양한 요인에 의해 동적으로 조절됩니다7. 히스톤 샤페론은 코어 히스톤의 증착 또는 분리를 통해 뉴클레오솜의 조립 및 분해를 조정합니다 8,9. 히스톤 샤페론의 결함은 게놈 불안정성을 유발하고 발달 장애와 암을 유발한다 9,10. 다양한 히스톤 샤페론은 뉴클레오솜 9,11,12,13을 조립하거나 분해하기 위해 ATP 가수 분해와 같은 화학적 에너지 소비가 필요하지 않습니다. 최근 연구자들은 브로모도메인 함유 AAA+(다양한 세포 활동과 관련된 ATPase) ATPase가 히스톤 샤페론 14,15,16,17로 염색질 역학에서 역할을 한다고 보고했습니다. 인간 ATAD2(ATPase 계열 AAA 도메인 함유 단백질 2)는 염색질 접근성을 촉진하여 유전자 발현을 향상시킵니다18. 전사 공동-조절자로서, ATAD2는 발암성 전사인자(oncogenic transcriptional factor)의 염색질을 조절하며(14), ATAD2의 과발현은 많은 유형의 암에서 나쁜 예후와 관련이 있다19. ATAD2의 맥주효모균(S. cerevisiae) 상동체인 Yta7은 염색질15의 뉴클레오솜 밀도를 감소시킵니다. 대조적으로, ATAD2의 Schizosaccharomyces pombe (S. pombe) 상동체인 Abo1은 뉴클레오솜 밀도16을 증가시킨다. 독특한 단일 분자 이미징 기술인 DNA 커튼을 사용하여 Abo1이 뉴클레오솜 조립 또는 분해에 기여하는지 여부를 다룹니다17,20.

전통적으로 생체 분자의 생화학적 특성은 많은 수의 분자를 조사하는 EMSA(electrophoretic mobility shift assay) 또는 co-immunoprecipitation(co-IP)과 같은 벌크 실험에 의해 조사되어 왔으며 평균 특성은21,22를 특성화합니다. 대량 실험에서 분자 하위 상태는 앙상블 평균 효과에 의해 가려지며 생체 분자 상호 작용 조사가 제한됩니다. 대조적으로, 단일 분자 기술은 대량 실험의 한계를 우회하고 생체 분자 상호 작용의 상세한 특성 분석을 가능하게 합니다. 특히, 단일 분자 이미징 기술은 DNA-단백질 및 단백질-단백질 상호 작용을 연구하는 데 널리 사용되었습니다23. 그러한 기술 중 하나는 DNA 커튼, 미세 유체 역학 및 전체 내부 반사 형광 현미경 (TIRFM) 24,25을 기반으로 한 독특한 단일 분자 이미징 기술입니다. DNA 커튼에서는 수백 개의 개별 DNA 분자가 지질 이중층에 고정되어 지질 유동성으로 인해 DNA 분자의 2차원 운동을 허용합니다. 유체역학적 흐름이 적용되면 DNA 분자는 이중층의 흐름을 따라 이동하고 확산 장벽에 갇혀 정렬되고 늘어납니다. DNA가 삽입제로 염색되는 동안 형광 표지된 단백질이 주입되고 TIRFM을 사용하여 단일 분자 수준23에서 실시간으로 단백질-DNA 상호 작용을 시각화합니다. DNA 커튼 플랫폼은 확산, 전위 및 충돌과 같은 단백질 이동의 관찰을 용이하게 합니다 26,27,28. 또한, DNA 커튼은 정의된 위치, 방향 및 토폴로지를 가진 DNA에 대한 단백질 매핑에 사용되거나 단백질과 핵산의 상 분리 연구에 적용될 수 있습니다 29,30,31.

이 연구에서 DNA 커튼 기술은 특정 단백질의 직접적인 시각화를 통해 샤페론의 기능에 대한 증거를 제공하는 데 사용됩니다. 또한, DNA 커튼은 처리량이 많은 플랫폼이기 때문에 통계적 신뢰성에 충분한 데이터 수집을 용이하게 합니다. 여기에서는 S. pombe bromodomain-containing AAA+ ATPase Abo1의 분자 역할을 조사하기 위해 DNA 커튼 분석을 수행하는 방법을 자세히 설명합니다.

Protocol

1. 플로우 셀(flow cell)의 준비 이전에 발표된 보고서25에 따라 나노 트렌치 패턴을 포함하는 세척된 용융 실리카 슬라이드를 준비합니다.다이아몬드 코팅된 드릴 비트를 사용하여 세척된 용융 실리카 슬라이드(그림 1A)에 직경 1mm의 구멍 두 개를 뚫습니다( 재료 표 참조). 250mTorr의 아르곤 가스와 함께 DC<sup class="x…

Representative Results

이 작업은 DNA 커튼 분석을 위한 플로우 셀 준비 절차를 설명합니다(그림 1A). DNA 커튼 분석은 Abo1에 의한 DNA에 대한 히스톤 H3-H4 이량체 조립의 연구를 촉진했습니다. 먼저, 삽입 염료인 YOYO-1로 DNA 분자를 염색하여 DNA 커튼 형성을 확인했습니다. 녹색 선은 병렬 배열로 표시되었는데, 이는 YOYO-1이 DNA 분자에 삽입되어 유체역학적 흐름 하에서 확산 장벽에서 잘 정렬되고 늘어났?…

Discussion

단일 분자 이미징 기술로서, DNA 커튼은 DNA 대사 반응을 조사하기 위해 광범위하게 사용되어 왔다43. DNA 커튼은 지질 유동성, 미세유체역학 및 TIRFM을 연결하는 하이브리드 시스템입니다. 다른 단일 분자 기술과 달리 DNA 커튼은 단백질-DNA 상호 작용의 고처리량 실시간 시각화를 가능하게 합니다. 따라서 DNA 커튼 기술은 염기서열 특이적 연관성, DNA와 함께 단백질 이동, DNA 17,20,26에 ?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자들은 한국과학기술원(KAIST)의 송지준 교수, Carol Cho 박사, 장주원 교수의 Abo1 및 Cy5-H3-H4에 대한 친절한 지원에 감사드립니다. 본 연구는 국립연구재단 지원금(NRF-2020R1A2B5B01001792), 울산과학기술원 교내 연구비(1.210115.01), 기초과학연구원(IBS-R022-D1)의 지원을 받고 있다.

Materials

1 mL luer-lock syringe BecktonDickinson 301321
1' x 3' fused-silca slide glass G. Finkenbeiner 1 inch x 3 inch rectangular and 1 mm thickness
10 mL luer-lock syringe BecktonDickinson 302149
18:1 (Δ9-Cis) PC (DOPC) Avanti 850375 This is a component of biotinylated lipid stock
18:1 Biotinyl cap PE Avanti 870273 This is a component of biotinylated lipid stock
18:1 PEG2000 PE Avanti 880130 This is a component of biotinylated lipid stock
3 mL luer-lock syringe BecktonDickinson 302832
6-way sample injection valve IDEX MX series II
950K PMMA All-resist 671.04
Acetone SAMCHUN A1759
Adenosine 5'-triphosphate disodium salt hydrate (ATP) Sigma A2383
Aluminum (Al) TASCO, South Korea LT50AI414 Diameter 4 inch, thickness 1/4 inch
Amicon Ultra centrifugal filter, MWCO 10 kDa Millipore Z648027
Ampicillin Mbcell MB-A4128 Antibiotics
AZ 300 MIF developer Merck 10454110521 Used for removing aluminum
Blade DORCO DN52 12 mm x 6 m
Boron trichloride (BCl3) UNIONGAS Purity: >99.99%
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A7030
Catalase Sigma C40-1g This is a component of 100x gloxy stock
Chlorine (Cl2) UNIONGAS Purity: >99.99%
Clear double-sided tape 3M 313770
D-(+)-glucose Sigma G7528
DC sputter Sorona SRM-120 Used for deposition aluminum on a slide
Diamond-coated drill bit Eurotool DIB-211.00 Used for making holes in a fusced silica slide
DL-Dithiothreitol (DTT) Sigma D0632
Dove-prism Korea Electro-Optics Co. Ltd. 1906-106 Custom-made fused-silica dove prism with anti-reflection coating
Drill Dremel Dremel 3000 Used for making holes in a fusced silica slide
Electron Bean Lithography Nanobeam Ltd. NB3
Ethylene-diamine-tetraacetic acid (EDTA) Sigma EDS-1KG
Fingertight fittings IDEX F-300 It is connected with "PFA Tubing Natural" to form luer-lock tubing
Flangeless male nut IDEX P-235 It is connected with "PFA Tubing Natural" to form luer-lock tubing
Freeze Dryer, HyperCOOL Labogene HC3110 Used for lyophilizing liquid proteins
Glucose oxidase Sigma G2133-50KU This is a component of 100x gloxy stock
Guanidinium hydrochloride Acros Organics 364790025
Hamilton syringe Hamilton Company 80065 This syringe is used for sample injection
Hellmanex III Sigma Z805939
HiLoad 26/600 SuperdexTM 200 pg Cytiva 28-9893-36 Used for FPLC (size exclusion)
Hot plate stirrer Corning PC-420D
Hydrochloric acid Sigma H1759 Used for Tris-HCl
Index matching oil ZEISS 444970-9000-000
Inductively coupled plasma-reactive ion etching Top Technology Ltd. FabStar
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) Glentham Life Sciences GC6586-100g Used for induction of β-galactosidase activity
Lambda phage DNA NEB N0311
LB broth BD difco 244610 Media for E.coli cell growth
Luer adapter 10-32 IDEX P-659 This connects luer-lock syringe and tubing
Magnesium chloride hexahydrate fisher bioreagents BP214
Methyl isobutyl ketone (MIBK) KAYAKU ADVANCED MATERIALS Used for developing solution
Microscope (Eclipse Ti2) Nikon Eclipse Ti2 Inverted fluorescence microscope
Microscope glass coverslip MARIENFELD 101142 22 x 50 mm (No. 1)
Microscope slide DURAN GROUP DU.2355013 Slide glass ground edge 45°, plain 26 x 76 mm
Nanoport IDEX N-333-01
Objective lens Nikon CFI Plan Apochromat VC 60XC WI Immersion type: water, magnification: 60x, correction: 18, working distance: 0.29 (0.31-0.28)
One Shot BL21 (DE3)pLysS Chemically Competent E. coli Thermo Fisher Scientific C6060-03 Competent cell for overexpressing proteins
Oxygen (O2) NOBLEGAS, South Korea Purity: >99.99%
PFA tubing natural IDEX 1512L It is connected with "Fingertight Fittings" to form luer-lock tubing
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) Roche 11359061001 Protease inhibitor
Sephacryl S-200 High Resolution Cytiva 17-0584-01 Used for FPLC (size exclusion)
Shut-off valve IDEX P-732
Sodium acetate Sigma 791741
Sodium chloride (NaCl) Sigma S3014
Sodium hydroxide (NaOH) Sigma s5881
Spectra/Por molecularporous membrane tubing, MWCO 6-8 kDa Spectrum laboratories 132660
Streptavidin Thermo Fisher Scientific S888
Sulfur tetralfluoride (SF4) NOBLEGAS, South Korea Purity: >99.99%
Syringe pump KD Scientific 78-8210
Tetrafluoromethane (CF4) NOBLEGAS, South Korea Purity: >99.99%
TritonX-100 Sigma T9284
Trizma base Sigma T1503 Used for Tris-HCl
TSKgel SP-5PW TOSOH 14715 Used for FPLC (ion exchange)
Union assembly IDEX P-760 This connects tubings
Urea Sigma U5378
Vacuum oven Jeio Tech OV-11
YOYO-1 Thermo Fisher Scientific Y3601 This intercalation dye is diluted in DMSO
β-mercaptoethanol (BME) Sigma M6250

Referenzen

  1. Woodcock, C. L., Ghosh, R. P. Chromatin higher-order structure and dynamics. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2 (5), 000596 (2010).
  2. Kim, K., Eom, J., Jung, I. Characterization of structural variations in the context of 3D chromatin structure. Molecules and Cells. 42 (7), 512-522 (2019).
  3. Kornberg, R. D. Chromatin structure: a repeating unit of histones and DNA. Science. 184 (4139), 868-871 (1974).
  4. McGhee, J. D., Felsenfeld, G. Nucleosome structure. Annual Review of Biochemistry. 49, 1115-1156 (1980).
  5. Takata, H., et al. Chromatin compaction protects genomic DNA from radiation damage. PLOS One. 8 (10), 75622 (2013).
  6. Ehrenhofer-Murray, A. E. Chromatin dynamics at DNA replication, transcription and repair. European Journal of Biochemistry. 271 (12), 2335-2349 (2004).
  7. Peterson, C. L., Almouzni, G. Nucleosome dynamics as modular systems that integrate DNA damage and repair. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5 (9), 012658 (2013).
  8. Torigoe, S. E., Urwin, D. L., Ishii, H., Smith, D. E., Kadonaga, J. T. Identification of a rapidly formed nonnucleosomal histone-DNA intermediate that is converted into chromatin by ACF. Molecules and Cells. 43 (4), 638-648 (2011).
  9. Gurard-Levin, Z. A., Quivy, J. P., Almouzni, G. Histone chaperones: assisting histone traffic and nucleosome dynamics. Annual Review of Biochemistry. 83, 487-517 (2014).
  10. Burgess, R. J., Zhang, Z. Histone chaperones in nucleosome assembly and human disease. Nature Structural & Molecular Biology. 20 (1), 14-22 (2013).
  11. Das, C., Tyler, J. K., Churchill, M. E. The histone shuffle: histone chaperones in an energetic dance. Trends in Biochemical Sciences. 35 (9), 476-489 (2010).
  12. Hammond, C. M., Stromme, C. B., Huang, H., Patel, D. J., Groth, A. Histone chaperone networks shaping chromatin function. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 18 (3), 141-158 (2017).
  13. De Koning, L., Corpet, A., Haber, J. E., Almouzni, G. Histone chaperones: an escort network regulating histone traffic. Nature Structural & Molecular Biology. 14 (11), 997-1007 (2007).
  14. Zou, J. X., Revenko, A. S., Li, L. B., Gemo, A. T., Chen, H. W. ANCCA, an estrogen-regulated AAA+ ATPase coactivator for ERalpha, is required for co-regulator occupancy and chromatin modification. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (46), 18067-18072 (2007).
  15. Lombardi, L. M., Davis, M. D., Rine, J. Maintenance of nucleosomal balance in cis by conserved AAA-ATPase Yta7. Genetik. 199 (1), 105-116 (2015).
  16. Gal, C., et al. Abo1, a conserved bromodomain AAA-ATPase, maintains global nucleosome occupancy and organisation. EMBO Reports. 17 (1), 79-93 (2016).
  17. Cho, C., et al. Structural basis of nucleosome assembly by the Abo1 AAA+ ATPase histone chaperone. Nature Communications. 10 (1), 5764 (2019).
  18. Morozumi, Y., et al. Atad2 is a generalist facilitator of chromatin dynamics in embryonic stem cells. Journal of Molecular Cell Biology. 8 (4), 349-362 (2016).
  19. Zhang, M., Zhang, C., Du, W., Yang, X., Chen, Z. ATAD2 is overexpressed in gastric cancer and serves as an independent poor prognostic biomarker. Clinical and Translational Oncology. 18 (8), 776-781 (2016).
  20. Kang, Y., Cho, C., Lee, K. S., Song, J. J., Lee, J. Y. Single-molecule imaging reveals the mechanism underlying histone loading of schizosaccharomyces pombe AAA+ ATPase Abo1. Molecules and Cells. 44 (2), 79-87 (2021).
  21. Fried, M. G. Measurement of protein-DNA interaction parameters by electrophoresis mobility shift assay. Electrophoresis. 10 (5-6), 366-376 (1989).
  22. Kessler, S. W. Rapid isolation of antigens from cells with a staphylococcal protein A-antibody adsorbent: parameters of the interaction of antibody-antigen complexes with protein A. Journal of Immunology. 115 (6), 1617-1624 (1975).
  23. Lu, H. P. Single-molecule study of protein-protein and protein-DNA interaction dynamics. Methods in Molecular Biology. 305, 385-414 (2005).
  24. Fazio, T., Visnapuu, M. L., Wind, S., Greene, E. C. DNA curtains and nanoscale curtain rods: high-throughput tools for single molecule imaging. Langmuir. 24 (18), 10524-10531 (2008).
  25. Kang, Y., et al. High-throughput single-molecule imaging system using nanofabricated trenches and fluorescent DNA-binding proteins. Biotechnology and Bioengineering. 117 (6), 1640-1648 (2020).
  26. Cheon, N. Y., Kim, H. S., Yeo, J. E., Scharer, O. D., Lee, J. Y. Single-molecule visualization reveals the damage search mechanism for the human NER protein XPC-RAD23B. Nucleic Acids Research. 47 (16), 8337-8347 (2019).
  27. Lee, J. Y., Finkelstein, I. J., Arciszewska, L. K., Sherratt, D. J., Greene, E. C. Single-molecule imaging of FtsK translocation reveals mechanistic features of protein-protein collisions on DNA. Molecules and Cells. 54 (5), 832-843 (2014).
  28. Kang, H. J., et al. TonEBP recognizes R-loops and initiates m6A RNA methylation for R-loop resolution. Nucleic Acids Research. 49 (1), 269-284 (2021).
  29. Zhou, H., et al. Mechanism of DNA-induced phase separation for transcriptional repressor VRN1. Angewandte Chemie International Edition. 58 (15), 4858-4862 (2019).
  30. Visnapuu, M. L., Greene, E. C. Single-molecule imaging of DNA curtains reveals intrinsic energy landscapes for nucleosome deposition. Nature Structural & Molecular Biology. 16 (10), 1056-1062 (2009).
  31. Stigler, J., Camdere, G. O., Koshland, D. E., Greene, E. C. Single-molecule imaging reveals a collapsed conformational state for DNA-bound cohesin. Cell Reports. 15 (5), 988-998 (2016).
  32. Thornton, J. A. Sputter Coating- Its Principles and Potential. SAE Transactions. 82, 1787-1805 (1973).
  33. Grigorescu, A. E., Hagen, C. W. Resists for sub-20-nm electron beam lithography with a focus on HSQ: state of the art. Nanotechnology. 20 (29), 292001 (2009).
  34. Meir, A., Kong, M., Xue, C., Greene, E. C. DNA curtains shed light on complex molecular systems during homologous recombination. Journal of Visualized Experiments. (160), e61320 (2020).
  35. Cold Spring Harbor Protocols. Gloxy. Vol. 2. Cold Spring Harbor Protocols. , (2007).
  36. Gracey, L. E., et al. An in vitro-identified high-affinity nucleosome-positioning signal is capable of transiently positioning a nucleosome in vivo. Epigenetics Chromatin. 3 (1), 13 (2010).
  37. Subtil-Rodriguez, A., Reyes, J. C. BRG1 helps RNA polymerase II to overcome a nucleosomal barrier during elongation, in vivo. EMBO Reports. 11 (10), 751-757 (2010).
  38. Lancrey, A., et al. Nucleosome positioning on large tandem DNA repeats of the ‘601’ sequence engineered in Saccharomyces cerevisiae. bioRxiv. , (2021).
  39. Perales, R., Zhang, L., Bentley, D. Histone occupancy in vivo at the 601 nucleosome binding element is determined by transcriptional history. Molecular and Cellular Biology. 31 (16), 3485-3496 (2011).
  40. Lowary, P. T., Widom, J. New DNA sequence rules for high affinity binding to histone octamer and sequence-directed nucleosome positioning. Journal of Molecular Biology. 276 (1), 19-42 (1998).
  41. Rossmann, K. Point spread-function, line spread-function, and modulation transfer function. Tools for the study of imaging systems. Radiology. 93 (2), 257-272 (1969).
  42. Blainey, P. C., et al. Nonspecifically bound proteins spin while diffusing along DNA. Nature Structural & Molecular Biology. 16 (12), 1224-1229 (2009).
  43. Collins, B. E., Ye, L. F., Duzdevich, D., Greene, E. C. DNA curtains: novel tools for imaging protein-nucleic acid interactions at the single-molecule level. Methods in Cell Biology. 123, 217-234 (2014).
  44. Shi, X., Lim, J., Ha, T. Acidification of the oxygen scavenging system in single-molecule fluorescence studies: in situ sensing with a ratiometric dual-emission probe. Analytical Chemistry. 82 (14), 6132-6138 (2010).
  45. Rasnik, I., McKinney, S. A., Ha, T. Nonblinking and long-lasting single-molecule fluorescence imaging. Nature Methods. 3 (11), 891-893 (2006).
  46. Aitken, C. E., Marshall, R. A., Puglisi, J. D. An oxygen scavenging system for improvement of dye stability in single-molecule fluorescence experiments. Biophysical Journal. 94 (5), 1826-1835 (2008).
  47. Teif, V. B., Rippe, K. Nucleosome mediated crosstalk between transcription factors at eukaryotic enhancers. Physical Biology. 8 (4), 044001 (2011).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Kang, Y., Bae, S., An, S., Lee, J. Y. Deciphering Molecular Mechanism of Histone Assembly by DNA Curtain Technique. J. Vis. Exp. (181), e63501, doi:10.3791/63501 (2022).

View Video