يصف هذا البروتوكول الحقن داخل البطين (ICV) لأسماك الزرد البالغة مع السمية العصبية 6-hydroxydopamine (6-OHDA) في الدماغ البطني (Dn) وتقييم الضعف والتعافي اللاحق لآفة سلوك السباحة باستخدام اختبار الخزان المفتوح ، الذي يصاحبه تحليل باستخدام برنامج تتبع الفيديو.
القيود المفروضة على العلاجات الحالية في تأخير فقدان الخلايا العصبية الدوبامين في مرض باركنسون (PD) تثير الحاجة إلى العلاجات البديلة التي يمكن أن تستعيد هذه الخلايا العصبية. يتم توجيه الكثير من الجهد حاليا نحو فهم أفضل للتجديد العصبي باستخدام نماذج ما قبل السريرية في الجسم الحي . ومع ذلك ، فإن هذه القدرة التجديدية للإصلاح الذاتي غير فعالة في الثدييات. وهكذا برزت الحيوانات غير الثديية مثل الزرد كنموذج ممتاز للتجديد العصبي بسبب قدرتها على التجديد الذاتي المستمر ولديها تماثل دماغي وثيق مع البشر. كجزء من الجهد المبذول في توضيح الأحداث الخلوية المشاركة في التجديد العصبي في الجسم الحي ، أنشأنا نموذج PD القائم على 6-hydroxydopamine (6-OHDA) القائم على أسماك الزرد البالغة. وقد تحقق ذلك من خلال الحقن المجهري المحسن داخل البطين (ICV) من 99.96 mM 6-OHDA للقضاء على الخلايا العصبية الدوبامينية (DpN) على وجه التحديد في الدماغ البطني (Dn) من دماغ الزرد. أشار التألق المناعي إلى أكثر من 85٪ من استئصال DpN في اليوم الثالث من الآفة والاستعادة الكاملة ل DpN في الموقع المصاب بعد 30 يوما من الآفة. حددت هذه الدراسة ضعف سلوك سباحة الزرد بعد الآفة وتعافيه لاحقا باستخدام اختبار المجال المفتوح الذي تم من خلاله تحديد معلمتين ، المسافة المقطوعة (cm) ومتوسط السرعة (cm/s). تم تقييم الحركة من خلال تحليل تسجيلات الأسماك الفردية لكل مجموعة (n = 6) باستخدام برنامج تتبع الفيديو. أظهرت النتائج انخفاضا معنويا (p < 0.0001) في السرعة (سم / ثانية) والمسافة المقطوعة (سم) لسمك الزرد المصاب 3 أيام بعد الآفة بالمقارنة مع الشام. أظهر الزرد المسبب للآفة تعافيا تاما من سلوك السباحة بعد 30 يوما من الآفة. تشير النتائج الحالية إلى أن أسماك الزرد البالغة المصابة ب 6-OHDA هي نموذج ممتاز بجودة قابلة للتكرار لتسهيل دراسة التجديد العصبي في PD. الدراسات المستقبلية حول الآليات الكامنة وراء التجديد العصبي وكذلك العوامل الداخلية والخارجية التي تعدل العملية قد توفر نظرة ثاقبة مهمة في استراتيجيات علاج استبدال الخلايا الجديدة ضد PD.
مرض باركنسون (PD) ، وهو مرض يتميز بشكل مميز بصلابة العضلات ، ورعاش الراحة ، وبطء الحركة ، هو المرض العصبي الأسرع نموا في العالم1,2. يزداد خطر وانتشار مرض باركنسون بسرعة مع تقدم العمر خاصة لدى الأفراد الذين تتراوح أعمارهم بين 50 عاما وما فوق3. لا تزال مسببات مرض باركنسون وإمراضه غير مفهومة بشكل جيد. وقد ترك هذا في كثير من الأحيان بداية مبكرة من PD دون تشخيص. في الوقت الحاضر ، يرتبط نقص الدوبامين وفقدان الخلايا العصبية الدوبامينية (DpN) في مرضى PD ارتباطا وثيقا بمظهر من مظاهر الأعراض الحركية4. بالاستفادة من هذه العلاقة ، تم تصميم العديد من العلاجات إما للعمل مباشرة كبديل للدوبامين (أي ليفودوبا) أو للتعويض عن فقدان DpN (أي التحفيز العميق للدماغ). على الرغم من أن هذه العلاجات تجلب فوائد أعراض، إلا أنها لا تعدل المسار المتدهور للمرض5. في ضوء هذا الضعف الكبير ، تم اقتراح العلاج باستبدال الخلايا. ومع ذلك ، فإن فعالية هذا النهج غير متسقة بالنظر إلى تحديات إعداد الكسب غير المشروع ، والتحكم في نمو الخلايا ، وعدم استقرار النمط الظاهري. كما أن العلاج باستبدال الخلايا، الذي أثار مخاوف أخلاقية، يشكل أيضا خطر تحفيز أورام الدماغ وردود الفعل المناعية غير المرغوب فيها6,7.
أدت القيود المفروضة على الاستراتيجيات العلاجية الحالية إلى زيادة التركيز على تجديد DpN كنهج محتمل في علاج PD. وقد برز تجديد DpN أو التجديد العصبي كواحد من الاختراقات الواعدة في إدارة PD ، ليس فقط بسبب إمكاناته كطريقة علاجية جديدة ولكن أيضا كوسيلة لفهم آلية المرض 8 ، 9. يركز هذا النهج على استعادة وظيفة الخلايا العصبية من خلال التمايز والهجرة ودمج الخلايا السلفية الموجودة في الدوائر المصابة10. من أجل مواصلة استكشاف التجديد العصبي ، تم إجراء دراسات مختلفة في الجسم الحي. وجد أن الفقاريات مثل الثدييات والبرمائيات والزواحف تولد خلايا دماغية جديدة بعد الإصابة11،12. من بين الفقاريات ، يتم البحث عن الثدييات بشكل أكبر نظرا لتشابهها الجيني مع البشر. ومع ذلك، تظهر الثدييات قدرة إصلاحية محدودة وضعيفة في الجهاز العصبي المركزي (CNS) يمكن أن تستمر حتى مرحلة البلوغ بعد آفة الدماغ13. بشكل عام ، الثدييات غير مناسبة كنماذج حيوانية لفهم التجديد العصبي بالنظر إلى أن العدد المنخفض من الخلايا العصبية المنتجة لن يكون كافيا لاستعادة الدوائر العصبية التالفة التي لوحظت في PD. على هذا النحو ، فإن النموذج القائم على teleost ، وتحديدا في أسماك الزرد ، مفضل بشكل كبير لمعدل تكاثره العالي ، وقدرته على التجديد الذاتي المستمر ، وإغلاق تماثل الدماغ مع البشر14,15.
يستخدم سمك الزرد بشكل شائع لدراسة الحركة المضطربة في PD16. عادة ما يتم تحفيز نموذج PD القائم على أسماك الزرد بواسطة السموم العصبية ، والتي تشمل 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine (MPTP) و 6-hydroxydopamine (6-OHDA)17. على الرغم من فعاليتها في إحداث فقدان محدد ل DpN وانخفاض مستويات الدوبامين ، إلا أن النماذج القائمة على MPTP لا تحاكي عن كثب ظروف PD لأن فقدان DpN لا يقتصر فقط على CNS18. عدم قدرة 6-OHDA على عبور الحاجز الدموي الدماغي حد من آثاره على التغيرات الخلوية والوظيفية داخل الدماغ عندما يتم إعطاؤه داخل الجمجمة بدلا من العضل 19. تسبب الإعطاء المحيطي ل 6-OHDA في انخفاض عالمي في مستويات الدوبامين في جميع أنحاء الجهاز العصبي20. في حين أن إعطاء 6-OHDA في السائل الدماغي الشوكي تسبب في استئصال DpN في جميع أنحاء CNS21 ، والذي لا يحاكي الحالة كما هو موضح في PD حيث يحدث فقدان DpN على وجه التحديد في المادة السوداء من الدماغ البشري. على العكس من ذلك ، فإن إعطاء ICV ل 6-OHDA ، على وجه التحديد ، تسبب على وجه التحديد في استئصال كبير ل DpN في منطقة Dn البطنية في دماغ الزرد ، والذي يشبه إلى حد كبير المادة nigra22. ومن المثير للاهتمام ، تم الإبلاغ عن استعادة DpN بعد 30 يوما من الآفة التي يسببها 6-OHDA ونجت هذه الخلايا العصبية على مدار الحياة23,24. وقد ثبت التعافي الوظيفي ل DpN من خلال تقييم حركي للمسافة المقطوعة (cm) ومتوسط السرعة (cm/s) باستخدام نموذج PD القائم على أسماك الزرد البالغة 6-OHDA22.
وقد أثبت هذا العمل بنجاح التقييم الحركي للنموذج القائم على 6-OHDA والقائم على أسماك الزرد البالغة. تضمنت التجربة بأكملها ثلاث خطوات رئيسية: المستحضرات المجهرية قبل ICV ، والحقن المجهري ICV لأسماك الزرد ، والتقييم الحركي. لضمان الانتعاش الصحي لأسماك الزرد البالغة بعد إجراء الحقن المجهري للقيمة…
The authors have nothing to disclose.
تم دعم هذا العمل من قبل وزارة التعليم العالي الماليزية في إطار خطة منح البحوث الأساسية [600-IRMI/FRGS 5/3 (033/2019)].
Materials | |||
6-Hydroxydopamine (6-OHDA) | Sigma-Aldrich, Missouri, USA | 162957 | |
Ascorbic acid | Thermo Fisher Scientific, California, USA | FKC#A/8882/53 | |
Disposable pasteur pipette, 3 mL | Thermo Fisher Scientific, California, USA | FB55348 | |
Microcentrifuge tube, 0.2 mL | Eppendorf, Hamburg, Germany | 30124332 | |
Nice conical flask, 100 mL | Evergreen Engineering & Resources, Semenyih, Malaysia | SumYau0200 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | Sigma-Aldrich, Missouri, USA | P4417 | |
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich, Missouri, USA | S5761 | |
Sodium chloride | Merck, Darmstadt, Germany | 106404 | |
Stereomicroscope | Nikon, Tokyo, Japan | SMZ745 | |
Tricaine methanesulfonate (MS-222) | Sigma-Aldrich, Missouri, USA | E10521 | |
Equipment | |||
ANY-maze software | Stoelting Co., Illinois, USA | – | version 7.0; video tracking software |
Cubis II Micro Lab Balance | Sartorius, Göttingen, Germany | SE 2 | |
FemtoJet IV microinjector | Eppendorf, Hamburg, Germany | 5192000035 | |
Femtotip II, sterile injection capillary | Eppendorf, Hamburg, Germany | 5242957000 | |
InjectMan 4 micromanipulator | Eppendorf, Hamburg, Germany | 5192000027 | |
LED Portable Lamp | MR. DIY, Selangor, Malaysia | 9023251 | 20 mAh |
PELCO Pro Superalloy, offset, fine tips | Ted Pella, California, USA | 5367-12NM | |
Shanda aquarium heater | Yek Fong Aquarium, Selangor, Malaysia | SDH-228 | |
Thermometer | Sera Precision, Heinsberg, Germany | 52525 | |
Video camera | Nikon, Tokyo, Japan | D3100 |