Summary

פרוטוקול מבוסס מיקרודיסקציה בלייזר לניתוח LC-MS/MS של הפרופיל הפרוטאומי של גרגירי נוירומלנין

Published: December 16, 2021
doi:

Summary

פרוטוקול חזק מוצג כאן לבידוד גרגירי נוירומלנין מרקמות אנושיות שלאחר המוות nigra pars compacta באמצעות מיקרודיסקציה בלייזר. פרוטוקול מתוקן וממוטב זה ממזער באופן מסיבי את הזמן הנדרש לאיסוף הדגימה, מפחית את כמות הדגימה הנדרשת ומשפר את הזיהוי והכימות של חלבונים על ידי ניתוח LC-MS/MS.

Abstract

נוירומלנין הוא פיגמנט שחור-חום, הנמצא במה שמכונה גרגירי נוירומלנין (NMGs) בנוירונים דופמינרגיים של substantia nigra pars compacta. מלבד נוירומלנין, NMGs מכילים מגוון חלבונים, שומנים ומתכות. למרות שתאי עצב דופמינרגיים המכילים NMGs הולכים לאיבוד באופן מועדף במחלות נוירודגנרטיביות כמו מחלת פרקינסון ודמנציה עם גופי לוי, רק מעט ידוע על מנגנון היווצרות NMG ותפקידם של NMGs בבריאות ובמחלות. לפיכך, מחקר נוסף על האפיון המולקולרי של NMGs הוא חיוני. למרבה הצער, פרוטוקולים סטנדרטיים לבידוד חלבונים מבוססים על אולטרה-צנטריפוגציה של שיפוע צפיפות ולכן דורשים כמויות גבוהות של רקמה אנושית. לפיכך, מוקם כאן פרוטוקול אוטומטי מבוסס מיקרו-דיסקציה בלייזר (LMD) המאפשר איסוף של NMGs ורקמות סובסטנטיה ניגרה (SN) הסובבות אותה באמצעות כמויות מינימליות של רקמה באופן בלתי משוחד ואוטומטי. דגימות שנכרתו מנותחות לאחר מכן על ידי ספקטרומטריית מסות כדי לפענח את הרכבן הפרוטאומי. בתהליך עבודה זה זוהו 2,079 חלבונים, מתוכם 514 חלבונים זוהו באופן בלעדי ב-NMGs ו-181 ב-SN. התוצאות הנוכחיות הושוו עם מחקר קודם שהשתמש בגישה דומה מבוססת LMD שהגיעה לחפיפה של 87.6% עבור שני הפרוטאומים, מה שמאמת את הישימות של הפרוטוקול המתוקן והממוטב המוצג כאן. כדי לאמת את הממצאים הנוכחיים, חלבונים בעלי עניין נותחו על ידי ספקטרומטריית מסה ממוקדת, למשל, ניסויי ניטור תגובה מקבילים (PRM).

Introduction

כל רקמה מורכבת מתערובת הטרוגנית של סוגי תאים שונים, אך הבידוד הספציפי של סוג תא אחד הוא לעתים קרובות הכרחי לאפיון מדויק יותר. מיקרודיסקציית לייזר (LMD), צימוד מיקרוסקופ עם יישום לייזר, היא כלי רב עוצמה לבידוד ספציפי של אזורי רקמות, תאים בודדים או תת-מבנים תאיים מתוך קומפלקס מורכב. היישום של LMD בשילוב עם ספקטרומטריית מסה (LMD-MS) כבר יושם בהצלחה עבור מספר שאלות מחקר, כולל בידוד של DNA1, RNA2 וחלבונים 3,4,5. בפרוטוקול זה מתואר פרוטוקול LMD-MS מתוקן וממוטב לניתוח פרוטאומי של רקמת מוח אנושית לאחר המוות ורכיבים תת-תאיים לפענוח פתומכניזמים חדשים של מחלת פרקינסון.

נוירומלנין הוא פיגמנט שחור, כמעט בלתי מסיס, המצוי בתאי העצב הקטכולמינרגיים, המייצרים דופמין, של ה-substantia nigra pars compacta6. יחד עם חלבונים ושומנים, הוא מצטבר בגרגירים דמויי אברונים המוקפים בקרום כפול, הנקרא גרגירי נוירומלנין (NMGs)7,8,9. NMGs ניתן לראות מגיל שלוש שנים בבני אדם עולה בכמות ובצפיפות במהלך תהליך ההזדקנות10,11. נכון להיום, אין השערה ברורה על היווצרות נוירומלנין, אבל הנחה אחת היא כי neuromelanin נוצר באמצעות חמצון של דופמין12. השערות אחרות מבוססות על ייצור אנזימטי של נוירומלנין (למשל, טירוזינאז)13. נוירומלנין עצמו נמצא כבעל זיקה גבוהה לשומנים, רעלנים, יוני מתכת וחומרי הדברה. בהתבסס על ממצאים אלה, ההנחה היא כי היווצרות NMGs מגינה על התא מפני הצטברות של חומרים רעילים וחמצוניים ומפני רעלנים סביבתיים14,15. מלבד פונקציה זו של הגנה על מערכת העצבים, קיימות עדויות לכך שנוירומלנין עשוי לגרום להשפעות ניווניות של מערכת העצבים, למשל על ידי רוויית ברזל ובעקבות זאת קטליזה של רדיקלים חופשיים16,17. יתר על כן, נוירומלנין המשתחרר במהלך תהליכים נוירודגנרטיביים יכול להתפרק על ידי מי חמצן, אשר יכול להאיץ נמק על ידי מתכות תגובתיות ותרכובות רעילות אחרות שנקשרו בעבר לנוירומלנין ועשוי לתרום לדלקת עצבית ולנזק תאי18. עם זאת, עד כה את התפקיד המדויק של NMGs בתהליכים נוירודגנרטיביים כמו במהלך מחלת פרקינסון אינו מובן בבירור. ובכל זאת, נראה כי NMGs מעורבים בפתוגנזה של מחלת פרקינסון והניתוח הספציפי שלהם הוא בעל חשיבות עליונה כדי לפענח את תפקידם בניוון עצבי. למרבה הצער, חיות מעבדה נפוצות (למשל, עכברים וחולדות) וקווי תאים חסרים NMGs19. לכן, חוקרים מסתמכים במיוחד על רקמת מוח לאחר המוות לצורך הניתוח שלהם. בעבר, בידוד NMG על ידי צנטריפוגה הדרגתית בצפיפות הסתמך על הזמינות של כמויות גבוהות של רקמת סובסטנטיה ניגרה 20,21. כיום, LMD מציג כלי רב-תכליתי לבידוד ספציפי של NMGs מדגימות מוח אנושיות כדי לנתח אותם על ידי LC-MS/MS.

בפרוטוקול זה מוצגת גרסה משופרת ואוטומטית של פרוטוקול22 הקודם לבידוד NMGs והרקמות הסובבות אותם (SN), מה שמאפשר יצירת דגימה מהירה יותר, מספר גבוה יותר של חלבונים מזוהים ומכמתים, והפחתה חמורה של כמויות הרקמות הנדרשות.

Protocol

השימוש ברקמת המוח האנושית אושר על ידי ועדת האתיקה של אוניברסיטת רוהר בוכום, גרמניה (תיק מספר 4760-13), על פי התקנות וההנחיות הגרמניות. פרוטוקול זה יושם על פרוסות רקמה של substantia nigra pars compacta שהושגו באופן מסחרי. סקירה גרפית של הפרוטוקול המוצג מוצגת באיור 1. 1. ח…

Representative Results

הבידוד הספציפי של NMGs ורקמת SN הוא הצעד החשוב ביותר ליישום מוצלח של פרוטוקול זה. באמצעות הפונקציה Field of View Analysis בתוכנה המסופקת על-ידי הספק של LMD, ניתן לבחור NMGs באופן אוטומטי באופן תלוי צבע. לכן, יש לזהות אזורי רקמה המכילים NMGs (איור 2A) ולבצע ניתוח שדה ראייה עם ספי צבע מות?…

Discussion

LMD היא טכניקה ישימה באופן נרחב לבידוד של אזורי רקמה ספציפיים, תאים בודדים או מבנים תת-תאיים. בפרוטוקול המתוקן והאוטומטי המוצג כאן, טכניקה זו מיושמת לבידוד ספציפי של גרגירי נוירומלנין (NMGs) ורקמות סביב NMG (SN). עד כה פורסמו שתי גישות שונות לבידוד NMGs מתוך רקמת המוח האנושית שלאחר המוות ונעשה ?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי דה. NBI, פרויקט של משרד החינוך והמחקר הפדרלי הגרמני (BMBF) (מענק מספר FKZ 031 A 534A) ומענקי P.U.R.E. (יחידת מחקר חלבונים רוהר בתוך אירופה) והמרכז לאבחון חלבונים (ProDi), שניהם ממשרד החדשנות, המדע והמחקר של נורדריין וסטפאליה, גרמניה.

Materials

1,4-dithiothreitol AppliChem A1101
Acetonitrile Merck 1.00029.2500
Ammonium bicarbonate Sigma-Aldrich A6141
Formic acid Sigma-Aldrich 56302
Iodoacetamide AppliChem A1666,0100
Micro Tube 500 Carl Zeiss 415190-9221-000
Orbitrap Fusion Lumos Tribrid mass spectrometer Thermo Fisher Scientific IQLAAEGAAPFADBMBHQ
PALM MicroBeam Zeiss 494800-0014-000
PEN Membrane slide Carl Zeiss 415190-9041-000
substantia nigra pars compacta tissue slices Navarrabiomed Biobank (Pamplona, Spain)
Trifluoroacetic acid Merck 91707
Trypsin sequencing grade Serva 37283.01
Ultimate 3000 RSLC nano LC system Thermo Fisher Scientific ULTIM3000RSLCNANO
Name of Software Weblink/Company Version
FreeStyle Thermo Fisher Scientific 1.6
MaxQuant https://www.maxquant.org/ 1.6.17.0
PALMRobo Zeiss 4.6 pro
Perseus https://www.maxquant.org/perseus/ 1.6.15.0
Skyline https://skyline.ms/project/home/software/Skyline/begin.view 20.2.0.343
XCalibur Thermo Fisher Scientific 4.3

Referenzen

  1. Li, C., et al. DNA profiling of spermatozoa by laser capture microdissection and low volume-PCR. PloS One. 6 (8), 22316 (2011).
  2. Butler, A. E., et al. Recovery of high-quality RNA from laser capture microdissected human and rodent pancreas. Journal of Histotechnology. 39 (2), 59-65 (2016).
  3. Eggers, B., et al. Advanced fiber type-specific protein profiles derived from adult murine skeletal muscle. Proteomes. 9 (2), 28 (2021).
  4. Kley, R. A., et al. A combined laser microdissection and mass spectrometry approach reveals new disease relevant proteins accumulating in aggregates of filaminopathy patients. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 12 (1), 215-227 (2013).
  5. Güttsches, A. -. K., et al. Proteomics of rimmed vacuoles define new risk allele in inclusion body myositis. Annals of Neurology. 81 (2), 227-239 (2017).
  6. Bogerts, B. A brainstem atlas of catecholaminergic neurons in man, using melanin as a natural marker. The Journal of Comparative Neurology. 197 (1), 63-80 (1981).
  7. Engelen, M., et al. Neuromelanins of human brain have soluble and insoluble components with dolichols attached to the melanic structure. PloS One. 7 (11), 48490 (2012).
  8. Duffy, P. E., Tennyson, V. M. Phase and electron microscopic observations of lewy bodies and melanin granules in the substantia nigra and locus caeruleus in parkinsonʼs disease. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 24 (3), 398-414 (1965).
  9. Zecca, L., et al. Interaction of human substantia nigra neuromelanin with lipids and peptides. Journal of Neurochemistry. 74 (4), 1758-1765 (2000).
  10. Fenichel, G. M., Bazelon, M. Studies on neuromelanin. II. Melanin in the brainstems of infants and children. Neurology. 18 (8), 817-820 (1968).
  11. Halliday, G. M., et al. Evidence for specific phases in the development of human neuromelanin. Journal of Neural Transmission. 113 (6), 721-728 (2006).
  12. Zucca, F. A., et al. Interactions of iron, dopamine and neuromelanin pathways in brain aging and Parkinson’s disease. Progress in Neurobiology. 155, 96-119 (2017).
  13. Carballo-Carbajal, I., et al. Brain tyrosinase overexpression implicates age-dependent neuromelanin production in Parkinson’s disease pathogenesis. Nature Communications. 10 (1), 973 (2019).
  14. Zecca, L., Zucca, F. A., Wilms, H., Sulzer, D. Neuromelanin of the substantia nigra: a neuronal black hole with protective and toxic characteristics. Trends in Neurosciences. 26 (11), 578-580 (2003).
  15. Paris, I., Lozano, J., Perez-Pastene, C., Muñoz, P., Segura-Aguilar, J. Molecular and neurochemical mechanisms in PD pathogenesis. Neurotoxicity Research. 16 (3), 271-279 (2009).
  16. Zecca, L., et al. Neuromelanin can protect against iron-mediated oxidative damage in system modeling iron overload of brain aging and Parkinson’s disease. Journal of Neurochemistry. 106 (4), 1866-1875 (2008).
  17. Zarȩba, M., Bober, A., Korytowski, W., Zecca, L., Sarna, T. The effect of a synthetic neuromelanin on yield of free hydroxyl radicals generated in model systems. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular Basis of Disease. 1271 (2-3), 343-348 (1995).
  18. Karlsson, O., Lindquist, N. G. Melanin affinity and its possible role in neurodegeneration. Journal of neural transmission. 120 (12), 1623-1630 (2013).
  19. Marsden, C. D. Pigmentation in the nucleus substantiae nigrae of mammals. Journal of Anatomy. 95, 256-261 (1961).
  20. Tribl, F., et al. 34;Subcellular proteomics" of neuromelanin granules isolated from the human brain. Molecular & Cellular Proteomics: MCP. 4 (7), 945-957 (2005).
  21. Zucca, F. A., et al. Neuromelanin organelles are specialized autolysosomes that accumulate undegraded proteins and lipids in aging human brain and are likely involved in Parkinson’s disease. NPJ Parkinson’s Disease. 4, 17 (2018).
  22. Plum, S., et al. Proteomic characterization of neuromelanin granules isolated from human substantia nigra by laser-microdissection. Scientific Reports. 6, 37139 (2016).
  23. Tyanova, S., Temu, T., Cox, J. The MaxQuant computational platform for mass spectrometry-based shotgun proteomics. Nature Protocols. 11 (12), 2301-2319 (2016).
  24. Krey, J. F., et al. Mass spectrometry quantitation of proteins from small pools of developing auditory and vestibular cells. Scientific Data. 5, 180128 (2018).
  25. . Venny: An interactive tool for comparing lists with Venn’s diagrams Available from: https://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny/index.html (2007)
  26. Plum, S., et al. Combined enrichment of neuromelanin granules and synaptosomes from human substantia nigra pars compacta tissue for proteomic analysis. Journal of Proteomics. 94, 202-206 (2013).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Wulf, M., Barkovits-Boeddinghaus, K., Sommer, P., Schork, K., Eisenacher, M., Riederer, P., Gerlach, M., Kösters, S., Eggers, B., Marcus, K. Laser Microdissection-Based Protocol for the LC-MS/MS Analysis of the Proteomic Profile of Neuromelanin Granules. J. Vis. Exp. (178), e63289, doi:10.3791/63289 (2021).

View Video