Summary

アカゲザル脳脊髄液中のAβおよびタウレベルの反復経頭蓋磁気刺激に関するパイロット研究

Published: September 03, 2021
doi:

Summary

ここでは、アカゲザル脳脊髄液中のAβおよびタウ代謝に対する異なる周波数(1Hz/20Hz/40Hz)の反復経頭蓋磁気刺激の影響を探るためのパイロット研究の手順を説明する。

Abstract

以前の研究では、非侵襲的な光のちらつきレジームと聴覚音の刺激が脳内のAβとタウの代謝に影響を与える可能性があることが実証されています。非侵襲的技術として、神経変性疾患の治療に反復経頭蓋磁気刺激(rTMS)が適用されている。この研究は、アカゲザル脳脊髄液(CSF)中のAβおよびタウレベルに対するrTMSの効果を調査した。これは、単一盲検の自己制御研究です。rTMSの3つの異なる周波数(低周波、1Hz;高周波、20Hzおよび40Hz)を用いて、アカゲザルの両側背外側前頭前野(DLPFC)を刺激した。CSFを採取するためにカテーテル法を用いた。全てのサンプルを液体チップ検出に供し、CSFバイオマーカー(Aβ42、Aβ42/Aβ40、tTau、pTau)を分析した。CSFバイオマーカーレベルは、rTMSによる刺激後の時間とともに変化した。刺激後、CSFのAβ42レベルは、すべての周波数(1Hz、20Hz、および40Hz)で上昇傾向を示し、高周波(p<0.05)では低周波よりも有意差が大きかった。

高周波rTMSの後、CSFの総タウ(tTau)レベルは、rTMS後の時点(p<0.05)で直ちに増加し、24時間ずつ徐々に減少した。さらに、結果は、リン酸化タウ(pTau)のレベルが40Hz rTMSの直後に増加したことを示した(p<0.05)。Aβ42/Aβ40比は、1Hzおよび20Hzで上昇傾向を示した(p<0.05)。低周波(1Hz)刺激によるタウレベルに有意差はなかった。したがって、rTMSの高周波(20Hzおよび40Hz)はアカゲザルCSFのAβおよびタウレベルにプラスの効果をもたらす可能性があるが、低周波(1Hz)rTMSはAβレベルにのみ影響する可能性がある。

Introduction

アミロイドβ(Aβ)およびタウは重要なCSFバイオマーカーである。Aβは42個のアミノ酸(Aβ1-42)からなり、膜貫通アミロイド前駆体タンパク質(APP)がβセクレターゼおよびγセクレターゼ1によって加水分解された産物です。Aβ1-42は、その溶解特性のために脳内の細胞外アミロイドプラークに凝集する可能性がある1,2。タウは微小管関連タンパク質で、主に軸索に存在し、順行性軸索輸送に関与しています3。異常なタウの過剰リン酸化は、主にキナーゼとホスファターゼとの間の不均衡によって誘発され、微小管からのタウの剥離および神経原線維のもつれ(NFT)の形成をもたらす1。タウおよびリン酸化タウタンパク質(pTau)が神経変性プロセス中に細胞外空間に放出されるため、CSF中のタウの濃度が増加する。これまでの研究では、CSFバイオマーカーがアルツハイマー病(AD)脳の3つの主要な病理学的変化(細胞外アミロイドプラーク、細胞内NFT形成、およびニューロン喪失)に関連していることが示されています4。ADの初期段階に存在するAβおよびタウの異常な濃度は、したがって早期AD診断を可能にする5,6

2016年、ツァイらは、非侵襲的な光のちらつき(40Hz)が、沈着前マウスの視覚野におけるAβ1-40およびAβ1-42のレベルを低下させることを見出した7最近、彼らはさらに、聴覚緊張刺激(40Hz)が認識と空間記憶を改善し、5XFADマウスの海馬および聴覚野(AC)におけるアミロイドタンパク質レベルを低下させ、P301SタウオパチーモデルにおけるpTau濃度を低下させることを報告した8。これらの結果は、非侵襲的技術がAβおよびタウ代謝に影響を及ぼす可能性があることを示している。

非侵襲的なツールとして、経頭蓋磁気刺激(TMS)は、脊髄、末梢神経、および大脳皮質を含む神経組織を電気的に刺激することができる9。さらに、それは刺激部位および機能的接続における大脳皮質の興奮性を改変することができる。したがって、TMSは、神経変性障害の治療および予後および診断検査に使用されている。TMSにおける臨床介入の最も一般的な形態であるrTMSは、皮質の活性化を誘導し、皮質の興奮性を改変し、認知/運動機能を調節することができる。

20Hz rTMSは、グルタミン酸およびAβを含む酸化ストレッサーに対してインビトロ神経保護効果を有し、マウスにおけるモノクローナル海馬HT22細胞の全体的な生存率を改善したことが報告された10。1HzのrTMS刺激後、海馬におけるβ部位APP切断酵素1、APP、およびそのC末端断片がかなり減少した。特に、海馬CA1における長期増強、空間学習、および記憶の障害は逆転した11,12。Baiらは、ワーキングメモリ試験中のAβ誘発ガンマ振動機能不全に対するrTMSの影響を調査した。彼らは、rTMSがAβ誘発性機能障害を逆転させ、作業記憶に潜在的な利益をもたらす可能性があると結論付けた13。しかし、rTMSがタウ代謝に及ぼす影響や、rTMSの前後のCSFにおけるAβとタウの動的変化に関する報告はほとんどない。このプロトコルは、アカゲザルCSFのAβおよびタウレベルに対する異なる周波数(低周波、1Hz、高周波、20Hz、および40Hz)におけるrTMSの影響を調査する手順を説明しています。

Protocol

すべての実験は、中華人民共和国科学技術部が策定した実験動物の世話と使用のためのガイダンスとバーゼル宣言の原則の下で行われました。四川大学西中国病院(中国・成都)の動物愛護委員会が承認しました。 図1は 、ここで使用した単一盲検の自己対照試験デザインを示しています。 1. rTMS デバイス 8形状の磁界刺激器コイルを使用してr…

Representative Results

結果は、rTMSがアカゲザルCSFのAβおよびタウレベルに影響を及ぼす可能性があることを示した。CSFバイオマーカーレベルは、異なる周波数(1Hz、20Hz、および40Hz)でのrTMS刺激後の時間とともに変化した。 Aβ42 および Aβ42/ Aβ40図4Aに示すように、1Hzの…

Discussion

ADの十分に確立されたバイオマーカーであるAβ1-42は、脳内のAβ代謝およびアミロイドプラーク形成に関連するCSFコアバイオマーカーであり、臨床試験および臨床で広く使用されている26。最近の研究では、CSF Aβ42/Aβ40比はAD型病理のより良い指標であるため、Aβ42単独よりもADの優れた診断バイオマーカーであることが示されています<sup class="…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、猿の椅子やその他の関連機器を提供してくれた四川省グリーンハウスバイオテック株式会社に感謝したいと思います。この研究は、公共、商業、または非営利セクターの資金提供機関から特定の助成金を受けていません。

Materials

Anesthesia Puncture Kit for Single Use Weigao, Shandong, China
CCY-I magnetic field stimulator YIRUIDE MEDICAL, Wuhan, China
GraphPad Prism version 7.0 GraphPad Software, Inc., San Diego, CA, USA
Human Amyloid Beta and Tau Magnetic Bead Panel EMD Millipore Corporation, Billerica, MA 01821 USA liquid chip detection
MILLIPLEX Analyst 5.1 EMD Millipore Corporation, Billerica, MA 01821 USA
Monkey Chair HH-E-1 Brainsight, Cambridge, MA 02140 USA
Zoletil 50 Virbac, France zolazepam–tiletamine

Referenzen

  1. Niemantsverdriet, E., Valckx, S., Bjerke, M., Engelborghs, S. Alzheimer’s disease CSF biomarkers: clinical indications and rational use. Acta Neurologica Belgica. 117 (3), 591-602 (2017).
  2. Ohnishi, S., Takano, K. Amyloid fibrils from the viewpoint of protein folding. Cellular and Molecular Life Sciences. 61 (5), 511-524 (2004).
  3. Hernandez, F., Avila, J. Tauopathies. Cellular and Molecular Life Sciences. 64 (17), 2219-2233 (2007).
  4. Ballard, C., et al. Alzheimer’s disease. Lancet. 377 (9770), 1019-1031 (2011).
  5. De Meyer, G., et al. Diagnosis-independent Alzheimer disease biomarker signature in cognitively normal elderly people. Archives of Neurology. 67 (8), 949-956 (2010).
  6. Jansen, W. J., et al. Prevalence of cerebral amyloid pathology in persons without dementia: a meta-analysis. JAMA. 313 (19), 1924-1938 (2015).
  7. Iaccarino, H. F., et al. Gamma frequency entrainment attenuates amyloid load and modifies microglia. Nature. 540 (7632), 230-235 (2016).
  8. Martorell, A. J., et al. Multi-sensory gamma stimulation ameliorates Alzheimer’s-associated pathology and improves cognition. Cell. 177 (2), 256-271 (2019).
  9. Kobayashi, M., Pascual-Leone, A. Transcranial magnetic stimulation in neurology. Lancet Neurology. 2 (3), 145-156 (2003).
  10. Post, A., Muller, M. B., Engelmann, M., Keck, M. E. Repetitive transcranial magnetic stimulation in rats: evidence for a neuroprotective effect in vitro and in vivo. European Journal of Neuroscience. 11 (9), 3247-3254 (1999).
  11. Huang, Z., et al. Low-frequency repetitive transcranial magnetic stimulation ameliorates cognitive function and synaptic plasticity in APP23/PS45 mouse model of Alzheimer’s disease. Frontiers in Aging Neuroscience. 9, 292 (2017).
  12. Tan, T., et al. Low-frequency (1 Hz) repetitive transcranial magnetic stimulation (rTMS) reverses Abeta(1-42)-mediated memory deficits in rats. Experimental Gerontology. 48 (8), 786-794 (2013).
  13. Bai, W., et al. Repetitive transcranial magnetic stimulation reverses Abeta1-42-induced dysfunction in gamma oscillation during working memory. Currrent Alzheimer Research. 15 (6), 570-577 (2018).
  14. Heo, J. H., et al. Spatial distribution of glucose hypometabolism induced by intracerebroventricular streptozotocin in monkeys. Journal of Alzheimers Disease. 25 (3), 517-523 (2011).
  15. Lee, Y., et al. Insulin/IGF signaling-related gene expression in the brain of a sporadic Alzheimer’s disease monkey model induced by intracerebroventricular injection of streptozotocin. Journal of Alzheimers Disease. 38 (2), 251-267 (2014).
  16. Zhang, Y., et al. Temporal analysis of blood-brain barrier disruption and cerebrospinal fluid matrix metalloproteinases in rhesus monkeys subjected to transient ischemic stroke. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 37 (8), 2963-2974 (2017).
  17. Liao, X., et al. Repetitive transcranial magnetic stimulation as an alternative therapy for cognitive impairment in Alzheimer’s disease: a meta-analysis. Journal of Alzheimers Disease. 48 (2), 463-472 (2015).
  18. Hwang, J. M., Kim, Y. H., Yoon, K. J., Uhm, K. E., Chang, W. H. Different responses to facilitatory rTMS according to BDNF genotype. Clinical Neurophysiology. 126 (7), 1348-1353 (2015).
  19. Uhm, K. E., Kim, Y. H., Yoon, K. J., Hwang, J. M., Chang, W. H. BDNF genotype influence the efficacy of rTMS in stroke patients. Neuroscience Letters. 594, 117-121 (2015).
  20. Ahmed, M. A., Darwish, E. S., Khedr, E. M., El Serogy, Y. M., Ali, A. M. Effects of low versus high frequencies of repetitive transcranial magnetic stimulation on cognitive function and cortical excitability in Alzheimer’s dementia. Journal of Neurology. 259 (1), 83-92 (2012).
  21. Tan, T., et al. Low-frequency (1 Hz) repetitive transcranial magnetic stimulation (rTMS) reverses Aβ(1-42)-mediated memory deficits in rats. Experimental Gerontology. 48 (8), 786-794 (2013).
  22. Cotelli, M., et al. Improved language performance in Alzheimer disease following brain stimulation. Journal of Neurology Neurosurgery and Psychiatry. 82 (7), 794-797 (2011).
  23. Dobrowolska, J. A., et al. CNS amyloid-beta, soluble APP-alpha and -beta kinetics during BACE inhibition. Journal of Neuroscience. 34 (24), 8336-8346 (2014).
  24. Sankaranarayanan, S., et al. First demonstration of cerebrospinal fluid and plasma A beta lowering with oral administration of a beta-site amyloid precursor protein-cleaving enzyme 1 inhibitor in nonhuman primates. Journal of Pharmacology Experimental Therapeutics. 328 (1), 131-140 (2009).
  25. Schoenfeld, H. A., et al. The effect of angiotensin receptor neprilysin inhibitor, sacubitril/valsartan, on central nervous system amyloid-beta concentrations and clearance in the cynomolgus monkey. Toxicology and Applied Pharmacology. 323, 53-65 (2017).
  26. Blennow, K., Mattsson, N., Scholl, M., Hansson, O., Zetterberg, H. Amyloid biomarkers in Alzheimer’s disease. Trends in Pharmacological Sciences. 36 (5), 297-309 (2015).
  27. Janelidze, S., et al. CSF Abeta42/Abeta40 and Abeta42/Abeta38 ratios: better diagnostic markers of Alzheimer disease. Annals of Clinical and Translational Neurology. 3 (3), 154-165 (2016).
  28. Vogelgsang, J., Wedekind, D., Bouter, C., Klafki, H. W., Wiltfang, J. Reproducibility of Alzheimer’s disease cerebrospinal fluid-biomarker measurements under clinical routine conditions. Journal of Alzheimers Disease. 62 (1), 203-212 (2018).
  29. Dubois, B., et al. Advancing research diagnostic criteria for Alzheimer’s disease: the IWG-2 criteria. Lancet Neurology. 13 (6), 614-629 (2014).
  30. Schuff, N., et al. MRI of hippocampal volume loss in early Alzheimer’s disease in relation to ApoE genotype and biomarkers. Brain. 132, 1067-1077 (2009).
  31. Stricker, N. H., et al. CSF biomarker associations with change in hippocampal volume and precuneus thickness: implications for the Alzheimer’s pathological cascade. Brain Imaging and Behavior. 6 (4), 599-609 (2012).
  32. Cirrito, J. R., et al. Synaptic activity regulates interstitial fluid amyloid-beta levels in vivo. Neuron. 48 (6), 913-922 (2005).
  33. Duits, F. H., et al. Performance and complications of lumbar puncture in memory clinics: Results of the multicenter lumbar puncture feasibility study. Alzheimers & Dementia. 12 (2), 154-163 (2016).
  34. Engelborghs, S., et al. Consensus guidelines for lumbar puncture in patients with neurological diseases. Alzheimers Dement. 8, 111-126 (2017).
  35. Costerus, J. M., Brouwer, M. C., van de Beek, D. Technological advances and changing indications for lumbar puncture in neurological disorders. Lancet Neurology. 17 (3), 268-278 (2018).
  36. Wang, Y. F., et al. Cerebrospinal fluid leakage and headache after lumbar puncture: a prospective non-invasive imaging study. Brain. 138, 1492-1498 (2015).
  37. Schmidt, F., et al. Detection and quantification of beta-amyloid, pyroglutamyl Abeta, and tau in aged canines. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 74 (9), 912-923 (2015).
check_url/de/63005?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Liao, L., Zhang, Y., Lau, B. W., Wu, Q., Fan, Z., Gao, Q., Zhong, Z. A Pilot Study on the Repetitive Transcranial Magnetic Stimulation of Aβ and Tau Levels in Rhesus Monkey Cerebrospinal Fluid. J. Vis. Exp. (175), e63005, doi:10.3791/63005 (2021).

View Video