Bu protokol, formalin sabit parafin gömülü doku örneklerinin yüzde tümör içeriğini artırmak için bir yöntem sunar.
Formalin-sabit parafin-gömülü (FFPE) dokularda kontamine edici tümör dışı dokuların varlığı, genomik çalışmaları büyük ölçüde baltalayabilir. Burada, aşağı akış nükleik asit ekstraksiyonları gerçekleştirmeden önce istenmeyen dokuyu çıkarıp ortadan kaldırarak bir doku örneğinin yüzde tümör içeriğini arttırmak için tasarlanmış bir yöntem olan makrodiseksiyonu açıklamaktayız. FFPE doku blokları, 4-5 μm kaydırağa monte doku kesitleri üretmek için kesitlendi. Hematoksilin ve eozin (H&E) boyama için temsili bir bölüm sunuldu ve daha sonra kurul sertifikalı bir patolog tarafından gözden geçirildi. İnceleme sırasında, patolog H & E’deki tümör dokusunun bölgelerini tanımladı ve işaretledi. Tamamlandığında, işaretlenmiş H&E, aynı doku bloğundan seri lekesiz bölümlerin rezeksiyonuna rehberlik etmek için kullanıldı. Makrodiseksiyonun etkilerini göstermek için, eşleşen makrodisseke edilmiş ve disseke edilmemiş Diffüz Büyük B Hücreli Lenfomalardan (DLBCL) ekstrakte edilen RNA, DLBCL alt tipini ve BCL2 translokasyon durumunu belirleyebilen bir dijital gen ekspresyon testi üzerinde çalıştırıldı. Sonuçlar, makrodiseksiyonun incelenen örneklerin% 60’ında alt tip veya BCL2 translokasyon durum çağrılarını değiştirdiğini göstermiştir. Sonuç olarak, makrodiseksiyon, nükleik asit ekstraksiyonlarından önce tümör zenginleştirmeyi gerçekleştirmek için basit ve etkili bir yöntemdir ve ürünü daha sonra aşağı akış genomik çalışmalarında güvenle kullanılabilir.
Normal klinik tanı sürecinin bir parçası olarak toplanan ve klinik doku depolarında tutulan formalin-sabit parafine gömülü (FFPE) dokular, kanser araştırması da dahil olmak üzere insan araştırmaları için geniş bir kaynağı temsil eder1. İnsan hastalığı hakkındaki anlayışımız derinleştikçe, daha önce morfolojik ve immünofenotipik özelliklere dayanan tek varlıklar olduğu düşünülen hastalıkların, aslında moleküler altyazı testleri gerektiren farklı moleküler alt tiplerden oluştuğu giderek daha açık hale gelmektedir. Sonuç olarak, bu alt tipleri ayırt edebilen yüksek duyarlılıklı genomik testler giderek daha önemli hale gelmiştir2. FFPE dokuları, fiksasyonla ilgili sorunlar nedeniyle genomik tekniklerle zayıf bir şekilde uyumlu olmalarıyla ünlü olsa da, teknoloji ve protokoller geliştikçe, bu teknikler klinik olarak her yerde bulunan bu doku formatı 3,4,5 ile giderek daha uyumlu hale gelmektedir. Bununla birlikte, FFPE dokuları genellikle tümör ve tümör dışı doku materyallerinin katkılarıdır, burada tümör dışı materyalin varlığı sıklıkla istenmeyen ve yüksek oranda mevcutsa, genomik analizlerin sonuçlarını önemli ölçüde zayıflatabilir ve etkileyebilir6. Gerçekten de, bu tür analizler için minimum% 60’lık bir tümör içeriği sıklıkla kullanılır; burada bu eşiğin altında kalan dokular, çalışma kriterlerini7’yi yerine getirmesine rağmen dışlanabilir. Bu, hasta dokularının değerli olduğu ve yüksek sayılarda toplanmasının zor olduğu nadir hastalık ortamlarında özellikle sorunlu olabilir.
Makrodiseksiyon, normal doku miktarını azaltarak düşük tümör içeriğinin etkilerini en aza indiren bir yöntemdir3. Nükleik asit ekstraksiyonundan önce bu tür kafa karıştırıcı tümör dışı materyalin uzaklaştırılması, tümör yüzdesi içeriğini ve dolayısıyla ekstrakte edilen nükleik asitlerin tümör saflığını önemli ölçüde artırabilir. Doku rezeksiyonu kritik olarak, tümör bölgesinin kurul sertifikalı bir patolog tarafından yeni üretilen hematoksilin ve eozin (H & E) boyalı doku kesiti üzerinde tanımlandığı ve daire içine alındığı uzman patolojik incelemesine dayanır8. Dairesel H&E daha sonra sırasıyla istenmeyen ve hedef dokuların çıkarılmasına ve toplanmasına rehberlik etmek için kullanılır. Bu protokol, Mayo Clinic’teki AIDS ve Kanser Örnek Kaynağı (ACSR) Teknik Çekirdek Laboratuvarı’nda gerçekleştirilen patolojik incelemeden doku hasadına kadar makrodiseksiyon adımlarını açıklamaktadır.
FFPE dokuları sıklıkla tümörlü ve tümör dışı dokuların heterojen katkılarıdır. Yüksek duyarlılıklı genomik testler hem klinik hem de araştırma ortamlarında giderek daha yaygın hale gelmektedir, ancak tümör dışı dokuyu kirleten varlığıyla karıştırılabilir. Gerçekten de, genomik çalışmalar için minimum% 60’lık bir tümör içeriği sıklıkla önerilmektedir. Tümör yüzdesi, tümör materyalinin kapladığı doku alanına veya doku içindeki tümör hücrelerinin oranına göre belirlenebilir. Bölgeye göre tümör, tümör saflığı için yaygın olarak kullanılan bir metrik olmasına rağmen, her zaman dokunun doğru bir tanımını göstermez. Her ikisi de 1000 hücreli iki doku düşünün, bunların 500’ü tümör hücreleridir. Doku A’da, tümör olmayan 500 hücre, tümör hücresininkine benzer hacimlere sahip stromal hücrelerdir. Bu dokuda, tümör yüzdesi hem hücresellik hem de alan açısından% 50 olarak kabul edilebilir. B dokusunda, tümör olmayan 500 hücre, tümör hücresinin 4 katı hacimli yağ hücreleridir. Bu dokuda, tümör yüzdesi hala hücreselliğe göre% 50, ancak alana% 20’dir. Üçüncü bir doku olan C dokusu, 500 tümör hücresi artı 400 yağ hücresi ve 800 stromal hücreden oluşur ve hacimleri sırasıyla tümör hücrelerinin 4x ve 0.5x olanıdır. 100 yağ hücresinin 800 stromal hücrenin hacmine eşit olduğu göz önüne alındığında, C dokusunun tümör yüzdesi hücreselliğe göre% 29’dur (500/1700), ancak yine de alana% 20’dir. D dokusu ayrıca 1x, 4x ve 0.1x hacim oranlarına sahip tümör, yağ ve stromal hücrelerden oluşur. Ancak, hücre sayısı sırasıyla 400, 10 ve 720’dir. Böylece, D dokusunun tümör yüzdesi hücreselliğe göre %35 (400/1130) ancak alana göre %78’dir. Bu örnekler aşırı derecede basittir ve gerçek dünyadaki doku bileşimlerini yansıtmaz, ancak doku kompozisyonunun önemini ve tümör içeriği arasındaki farkı alana ve hücreselliğe göre açıkça ifade eder. Önemli olarak, aşağı akış nükleik asit ekstraksiyonu için tümör içeriğinin zenginleştirilmesi söz konusu olduğunda, tümör hücreselliği, tümör hücrelerinden daha fazla tümör dışı hücreden genomik materyal çıkarmanın artan kafa karıştırıcı potansiyeli nedeniyle daha önemli bir özelliktir. Bu sadece dokuların tümör içeriğini yüzde hücresellik açısından değerlendirme ihtiyacını değil, aynı zamanda tümör dışı dokunun olası olumsuz etkilerini en aza indirmek için istenmeyen dokuyu eksize etme ihtiyacını da vurgulamaktadır. Doku zenginleştirme için çeşitli yöntemler vardır, bunlardan başlıcaları makrodiseksiyon ve mikrodiseksiyondur.
Bu protokolde açıklanan yöntem olan makrodiseksiyon nispeten hızlı, basittir ve pahalı veya özel ekipman gerektirmez. Makrodiseksiyon tümör içeriğini büyük ölçüde iyileştirebilse de, tümör dışı materyali tamamen ortadan kaldırmadığını anlamak önemlidir. Makrodiseksiyonun amacı, istenmeyen dokudan kaynaklanan “gürültüyü” azaltmak için istenmeyen dokunun dışlanması yoluyla ilgilenilen dokuyu yeterince zenginleştirmektir, bu da ilgilenilen dokudan gelen ilgi sinyalini artırabilir. Bu nedenle, makrodiseksiyon aracılı tümör zenginleştirme, ilgilenilen belirteçleri, özellikle de düşük bolluğa veya zayıf ekspresyona sahip tümöre özgü moleküler belirteçleri daha iyi tespit etmek için sinyal-gürültü oranını arttırmanın bir yoludur. Bununla birlikte, makrodiseksiyon, tıraş bıçağı gibi kaba aletlerin sunduğu hassasiyet eksikliği nedeniyle sınırlamalara sahiptir ve patologun işaretleyicisinin çizgi kalınlığından kaynaklanan hassasiyet sorunlarına ve patologların H & E sınırlarını izlerken potansiyel hatalara karşı hassastır. Yukarıda belirtildiği gibi, tümörün içine gömülü doğal ve tümöre neden olan stromal elementlerin (yani bağ dokusu, stromal fibroblastlar, kan damarları, benign reaktif lenfositler, makrofajlar) varlığı nedeniyle% 100 tümör saflığı elde etmek mümkün değildir. Gerçekten de, birçok invaziv veya diffüz infiltratif malignite, stromal fibroblastlar ve diğer neoplastik olmayan hücre tipleri ile yakından karışmış tümör hücresi kümeleri ile sonuçlanan sağlam bir desmoplastik stromal yanıta neden olur; pankreas kanseri dokuları21 gibi bu stromal reaksiyon paterniyle ilişkili tümörlerin, manuel makrodiseksiyondan ziyade dijital olarak yönlendirilmiş mikrodiseksiyondan daha fazla fayda sağlayabileceği yerlerde.
Manuel mikrodiseksiyon, bir iğne veya neşter kullanarak dokulara özgü hücrelerin veya popülasyonların tanımlanmasına, diseksiyonuna ve izolasyonuna yardımcı olmak için mikroskop altında gerçekleştirilir ve makrodiseksiyon22’ye göre artan hassasiyet avantajına sahiptir. Bununla birlikte, manuel mikrodiseksiyon, düşük tümör içeriğine veya manuel diseksiyonla uyumlu olmayan karmaşık özelliklere sahip karmaşık dokular için gereken incelikten yoksun zahmetli bir işlemdir. Bu tür dokular, lazer yakalama mikrodiseksiyonu gibi yüksek hassasiyetli otomatik yöntemler kullanılarak diseke edilebilir. Gerçekten de, dijital olarak yönlendirilen mikrodiseksiyonun, pankreas kanseri dokularında manuel makrodiseksiyona kıyasla daha yüksek oranda tümör içeriği sağladığı gösterilmiştir23. Bununla birlikte, uzmanlaşmış, pahalı ekipmanlara ve yüksek eğitimli bireylere duyulan ihtiyaç gibi bu yüksek hassasiyetli otomatik yöntemlerin dezavantajları, iş akışlarına dahil edilmesini engellemiştir. Makrodiseksiyon ve lazer yakalama mikrodiseksiyonunun (LCM) gen ekspresyon profillemesi üzerindeki etkilerini karşılaştıran de Bruin ve ark. tarafından yapılan bir çalışmada, LCM örneklerinin düşük toplam RNA verimine (30 ng ortalama) sahip olduğu ve cDNA kütüphanesi hazırlık giriş eşiğini karşılamak için iki tur mRNA amplifikasyonu gerektirdiği bulunmuştur24. Yazarlar, ortaya çıkan LCM gen ekspresyon profillerinin, makrodisseke edilmiş profillerin tümör dışı stromal katkılardan etkilendiğinden daha fazla mRNA amplifikasyon turlarından etkilendiğini bulmuş ve makrodiseksiyonun güvenilir gen ekspresyon verileri üretmek için yeterince kullanılabileceği sonucuna varmışlardır24.
NanoString dijital gen ekspresyon profillemesinin önemli bir avantajı, özellikle yüksek oranda bozulmuş FFPE türevi RNA ile çalışırken, RNA amplifikasyonu veya cDNA kütüphanelerinin hazırlanması gibi enzimatik bağımlı süreçler gerektirmemesidir. Bununla birlikte, tahliller tipik olarak toplam RNA 25,26’nın 50-300 ng arasındaki girdiler için optimize edilmiştir, bu da de Bruin ve ark.24’ün bulgularına dayanarak, doku girişini arttırmadan mikrodisseke dokularla uyumlu olmayabilir; doku örneklerinin cerrahi rezeksiyonlardan ziyade küçük biyopsiler olarak giderek daha fazla toplandığı bir çağda olumsuz bir talep. DLBCL90 testi için kullanılan RNA girişleri, hem makrodisseke edilmiş hem de disseke edilmemiş dokular için 68.5-300 ng arasında değişmiştir. Sonuçlar, makrodiseksiyonun incelenen örneklerin% 60’ında çağrı değişikliklerine neden olduğunu ve bu değişikliklerin makrodisseke edilen örneklerin RNA girişinden bağımsız olarak gözlemlendiğini göstermektedir. Bununla birlikte, düşük RNA girişi için COO olasılığı, eşiklerin GCB için 0 ila 0.1, UNC için 0.1-0.9 ve ABC çağrıları20 için 0.9 >ila <0.0 olduğu COO CB / UNC olasılık çağrı eşiğini ihlal etmiştir. Başlıca DLBCL COO alt tipleri, tüm DLBCL vakalarının% 41 ve% 44'ünü oluşturan GCB ve ABC'dir; UNC ikisinin ara grubunu temsil eder ve ABC en agresif 20,27’dir. Bu nedenle, COO’nun C örneğinin makrodiseksiyonu üzerine yaptığı değişiklik, COO alt tipinde GCB’den ABC’ye açık bir değişikliğe neden olmazken, GCB’den UNC’ye geçiş, daha agresif bir hastalığa doğru bir kayma önerebilir. Dahası, son zamanlarda yapılan çalışmalar, UNC alt tipinin sadece bir ara alt tip olmadığını ve potansiyel olarak alt tipe özgü terapötik olarak sömürülebilir niteliklere sahip olabileceğini göstermektedir28. Benzer şekilde, A ve E örneklerinin makrodiseksiyonu, DHITsig çağrılarında DH negatiften DH pozitife veya tam tersi yönde belirgin değişikliklere neden olmamıştır. Bununla birlikte, makrodiseksiyon üzerine bir GCB örneğinin (örnek A) NEG’den UNCLASS’a ve bir ABC örneğinin (örnek E) makrodiseksiyon üzerine UNCLASS’tan NEG’e hareketleri biyolojik olarak uygundur, çünkü BCL2’yi içeren çift vuruşlu translokasyonların münhasıran bir GCB fenomeni olduğu bildirilmiştir19. Translokasyonlar klinik ortamlarda FISH tarafından geleneksel olarak ve her yerde tespit edilmesine rağmen, tespitleri için alternatif daha az ilgili ve zaman alıcı bir yöntem tanımlamak için artan bir ivme vardır. DLBCL90 testi, bu testin klinik tanı29’da kullanılan FISH problarına şifreli translokasyonları tespit edebildiği bulgusuyla kullanımının gerekçesinin güçlendirildiği bu ihtiyacı karşılayan önemli bir araçtır.
Yukarıda açıklanan makrodiseksiyon protokolü, araştırmacıların normalde yaygın olarak kullanılan çalışma dahil etme kriterleri eşiklerinin altına düşecek doku örneklerinin tümör içeriğini arttırmalarını sağlayan basit bir yöntemi özetlemektedir. Bir çalışma iş akışına makrodiseksiyon dahil etmek, araştırmacıların tümör içeriğini artırarak zayıf tümör yoğun dokuları çalışma dışlamasından kurtarmalarını sağlar. Buna karşılık, bu, ortaya çıkan RNA ve DNA’nın genomik araştırma altındaki tümörü temsil ettiğine dair artan güvene izin verir. Doku diseksiyonu için daha kesin yöntemler mevcut olsa da, daha geniş, infiltratif olmayan, tabaka benzeri veya katı bir şekilde büyüyen tümörler için makrodiseksiyon muhtemelen yeterlidir. Burada sunulan sonuçlar, genomik tahlillerde tümör saflığının önemini ve bunu başarmak için güvenilir bir araç olarak makrodiseksiyonun önemini vurgulamaktadır.
The authors have nothing to disclose.
Bu çalışma, biyonumune bilim programı kapsamında NIH tarafından finanse edilen AIDS ve Kanser Örnek Kaynağı (ACSR, UM1 CA181255-2) tarafından desteklenmektedir. Video çekildi ve post prodüksiyon düzenlemesi Mayo Clinic Media Services tarafından gerçekleştirildi.
200-proof ethanol | Decon | 2701 | |
AllPrep DNA/RNA FFPE Kit | Qiagen | 80234 | DNA/RNA FFPE extraction kit |
Coplin pots | Various | x | |
DLBCL90 probes | NanoString | various | Digital gene expression profiling based DLBCL90 assay |
d-Limonene | VWR | 89376-092 | |
Forceps | Various | x | |
Glass micrscope slides | FisherBrand | 12-550-15 | |
Glycerol | VWR | 0854-1L | |
Master kits | NanoString | various | |
Microtome | Leica | RM2265 | |
Microtubes | Ambion | AM12400 | |
NanoDrop One | Thermo Scientific | ND-ONE-W | Spectrophotometer for DNA, RNA and protein qualitation |
nCounter | NanoString | x | Digital gene expression profiling platform used to run the DLBCL90 assay |
Permanent marker | Electrib Microscope Sciences | 72109-12 | |
Razor blade dispenser | Electrib Microscope Sciences | 71985-10 | |
Razor blades | Electrib Microscope Sciences | 71985-23 | |
Tissue digestion buffer | Qiagen | 80234 | |
Ultrapure water | VWR | SH30538.02 | |
Waterbath | Triangle Biomedical Sciences | TFB-120 | |
Wooden stick | FisherBrand | 22363158 |