Summary

Ablações de volume profunda e espacialmente controladas usando um microscópio de dois fótons no Gás de Peixe-Zebra

Published: July 15, 2021
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Summary

O desenvolvimento embrionário requer coordenação em larga escala do movimento celular. A ablação a laser mediada por dois fótons permite a ablação espacialmente controlada em três dimensões de grandes grupos de células profundas. Além disso, essa técnica pode sondar a reação de células migratórias coletivamente in vivo a perturbações em seu ambiente mecânico.

Abstract

A morfogênese envolve muitos movimentos celulares para organizar células em tecidos e órgãos. Para o desenvolvimento adequado, todos esses movimentos precisam ser rigorosamente coordenados, e acumular evidências sugere que isso é alcançado, pelo menos em parte, através de interações mecânicas. Testar isso no embrião requer perturbações físicas diretas. As ablações a laser são uma opção cada vez mais utilizada que permite aliviar restrições mecânicas ou isolar fisicamente duas populações celulares uma da outra. No entanto, muitas ablações são realizadas com um laser ultravioleta (UV), que oferece resolução axial limitada e penetração tecidual. Um método é descrito aqui para ablto de volumes profundos, significativos e espacialmente bem definidos usando um microscópio de dois fótons. As ablações são demonstradas em uma linha transgênica de zebrafish expressando a proteína fluorescente verde no mesendoderme axial e usadas para cortar o mesendoderme axial sem afetar o ectoderme sobreceptório ou a célula de gema subjacente. O comportamento celular é monitorado por imagens ao vivo antes e depois da ablação. O protocolo de ablação pode ser usado em diferentes estágios de desenvolvimento, em qualquer tipo de célula ou tecido, em escalas que variam de alguns mícrons a mais de cem mícrons.

Introduction

As interações célula-célula desempenham papéis vitais no desenvolvimento. As células fornecem sinais que seus vizinhos diretos, ou células mais distantes, podem perceber, influenciando assim seu destino e/ou comportamento. Muitos desses sinais são de natureza química. Por exemplo, nos eventos de indução bem caracterizados, um grupo celular produz moléculas difusíveis que afetam o destino de outra população celular1. Outros sinais, no entanto, são mecânicos; as células exercem forças e restrições sobre seus vizinhos, que os vizinhos percebem e respondem a2.

Uma forma de estudar a importância dessas interações célula-célula in vivo é eliminar algumas células e observar o desenvolvimento subsequente. Infelizmente, as técnicas disponíveis para remover ou destruir células são limitadas. As células podem ser removidas cirurgicamente3,4, usando agulhas ou pequenos fios, mas tais tratamentos são invasivos, não muito precisos, e geralmente realizados sob um estereoscópio, impedindo imagens imediatas sob um microscópio. Além disso, mirar células profundas implica perfurar um buraco em tecidos sobrelvando, criando perturbações indesejadas. Fotosensibilizadores geneticamente codificados, como KillerRed, têm sido usados para induzir a morte celular através da iluminação 5. Fotosensitizers são cromóforos que geram espécies reativas de oxigênio após a irradiação da luz. Sua principal limitação é que eles requerem longas iluminação luminosas (cerca de 15 minutos), o que pode ser difícil de alcançar se as células estão se movendo, e que induzem a morte celular através da apoptose, o que não é imediato.

Finalmente, as ablações a laser foram desenvolvidas e amplamente utilizadas nos últimos 15 anos6,7,8,9,10,11,12. Um raio laser é focado na célula/tecido alvo. Induz sua ablação através do aquecimento, fotoblação ou ablação induzida pelo plasma; o processo envolvido depende da densidade de energia e do tempo de exposição13. A maioria dos protocolos de ablação usam lasers UV para sua alta energia. No entanto, a luz UV é absorvida e espalhada por tecidos biológicos. Assim, mirar células profundas requer uma alta potência laser, que então induz danos em tecidos mais superficiais e fora do avião. Isso limita o uso de lasers UV para estruturas superficiais e explica sua resolução axial relativamente baixa. A óptica não linear (a chamada microscopia de dois fótons) usa propriedades não lineares de luz para excitar um fluoróforo com dois fótons de aproximadamente metade da energia no domínio infravermelho. Quando aplicado a ablações, isso tem três principais vantagens. Primeiro, a luz infravermelha é menos dispersa e menos absorvida do que a luz UV por tecidos biológicos14, permitindo alcançar estruturas mais profundas sem aumentar a potência laser necessária. Em segundo lugar, o uso de um laser pulsado femtosegundo fornece densidades de energia muito altas, criando uma ablação através da indução plasmática, que, ao contrário do aquecimento, não difunde espacialmente15. Em terceiro lugar, a densidade de energia induzindo a formação plasmática é alcançada apenas no ponto focal. Graças a essas propriedades, as ablações a laser de dois fótons podem ser usadas para atingir precisamente células profundas sem afetar o ambiente tecidual circundante.

As migrações coletivas são um excelente exemplo de processos de desenvolvimento nos quais as interações célula-células são fundamentais. As migrações coletivas são definidas como migrações celulares nas quais as células vizinhas influenciam o comportamento de uma célula16. A natureza dessas interações (químicas ou mecânicas) e como elas afetam a migração celular podem variar muito e muitas vezes não são totalmente compreendidas. A capacidade de remover células e observar como isso afeta os outros é fundamental para desvendar ainda mais esses processos coletivos. Há alguns anos, estabelecemos — usando abordagens cirúrgicas — que a migração do polster durante a gastrusão de zebrafish é uma migração coletiva17. O polster é um grupo de células que constitui as primeiras células internalizadoras no lado dorsal do embrião18. Essas células, rotuladas em verde na linha transgênica Tg(gsc:GFP), estão localizadas profundamente no embrião, abaixo de várias camadas de células epiblastos. Durante a gastruação, esse grupo lidera a extensão do mesoderme axial, migrando do organizador embrionário para o polo animal19,20,21,22,23 (Figura 1A). Estabelecemos que as células precisam de contato com seus vizinhos para orientar sua migração na direção do polo animal. No entanto, entender melhor as bases celulares e moleculares dessa migração coletiva envolve a remoção de algumas células para ver como isso influencia as demais. Nós, portanto, desenvolvemos ablações de grandes e profundos volumes usando uma configuração de microscopia de dois fótons. Aqui, demonstramos o uso deste protocolo para cortar o polster em seu meio e observar as consequências na migração celular rastreando núcleos rotulados com Histone2B-mCherry.

Protocol

Todo o trabalho animal foi aprovado pelo Comitê de Ética n 59 e pela Ministère de l’Education Nationale, de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche sob o número de arquivo APAFIS#15859-2018051710341011v3. Algumas das etapas descritas abaixo são específicas para nossos equipamentos e software, mas podem ser facilmente adaptadas a diferentes equipamentos. 1. Preparação para injeção Prepare 75 mL de solução de 1% de agarose em Embrião Médio (EM). Coloque o m…

Representative Results

Para cortar o polster em seu meio, um embrião Tg(gsc:GFP), injetado com Histone2B-mCherry mRNAs foi montado no estágio de 70% epiboly, como descrito na etapa 4. O polster foi identificado pela expressão GFP, e o embrião foi montado para que o plano do polster seja perpendicular ao eixo óptico (Figura 1B). Inclinar o embrião para longe desta posição complicará o procedimento. A luz terá que passar por mais tecidos para alcançar os planos de ablação, e os aviões de abla?…

Discussion

Aqui, descrevemos um protocolo que usa óptica não linear para realizar ablações de volume profundas e espacialmente bem definidas. O passo mais crítico do protocolo é encontrar condições de tratamento que forneçam energia suficiente para permitir ablações, mas não muita energia, para evitar detritos excessivos ou cavitação. A quantidade de energia entregue no local alvo depende principalmente de: (1) a potência de saída a laser, (2) a qualidade do alinhamento a laser, (3) a natureza do tecido através do …

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a Emilie Menant pelo cuidado com os peixes, o Polytechnique Bioimaging Facility, em particular Pierre Mahou, pela assistência com imagens ao vivo em seus equipamentos, em parte apoiados por Région Ile-de-France (interDIM) e Agence Nationale de la Recherche (ANR-11-EQPX-0029 Morphoscope2, ANR-10-INBS-04 France BioImaging). Este trabalho foi apoiado pelas bolsas ANR 15-CE13-0016-1, 18-CE13-0024, 20-CE13-0016, e o programa de pesquisa e inovação Horizon 2020 da União Europeia sob o acordo de subvenção Marie Skłodowska-Curie No 840201, a Ministère de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche e o Centre National de la Recherche Scientifique.

Materials

25x water immersion objective Olympus XLPLN25XWMP2
Agarose PanReac AppliChem A8963,0500
Data analysis software : Matlab Math Works
Electro-optic modulator (EOM) ConOptics 350-80LA
Embryo Medium (EM) solution Westerfield, M. The Zebrafish Book. A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Danio rerio), 5th Edition. University of Oregon Press, Eugene (Book). (2000).
Environmental chamber chamber Okolab H201-T-UNIT-BL
EOM driver ConOptics 302RM
Fluorescence source Lumencor SOLA
Glass bottom dishes MatTek P35G-0-10-C
Glass capillaries Harvard Apparatus 300085 Outside diameter 1.0 mm, inside diameter 0.58 mm
Glass pipettes Volac D810 Tip should be fire polished
Green/ablation laser Spectra Physics Mai Tai HP DeepSee
Histone2B-mCherry mRNA Synthesized from pCS2-H2B-mCherry plasmid (Dumortier& al. 2012)
Image analysis software: IMARIS Bitplane
ImSpector software Abberior Instruments Development Team
Injection mold Adapative Science Tools I-34
Microloader tips Eppendorf 5242956003
Micromanipulator Narishige MN-151
Micropipette puller Sutter P-1000
mMESSAGE mMACHINE SP6 Transcription Kit Invitrogen AM1340
Penicillin-Streptomycin Thermofisher 15140-122 10 000 units penicillin and 10 mgstreptomycin per ml
Photomultiplier tube (PMT) Hammamatsu H7422-40
PicoPump (Air injector) World Precision Instrument PV820
Red laser Spectra Physics OPO/Insight DeepSee
RNAse free water for injection Sigma W3500
Spreadsheet software: Excel Microsoft
Stereomicroscope Nikon SMZ18
Tg(gsc:GFP) zebrafish line Doitsidou, M. et al. Guidance of primordial germ cell migration by the chemokine SDF-1. Cell. 111 (5), 647–59, doi: doi.org/10.1016/S0092-8674(02)01135-2 (2002).
TriM Scope II microscope La Vision Biotech

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Boutillon, A., Escot, S., David, N. B. Deep and Spatially Controlled Volume Ablations using a Two-Photon Microscope in the Zebrafish Gastrula. J. Vis. Exp. (173), e62815, doi:10.3791/62815 (2021).

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