Summary

طريقة معممة لتحديد تكوين حمض الفينوليك القابل للذوبان الحر والقدرة المضادة للأكسدة للحبوب والبقوليات

Published: June 10, 2022
doi:

Summary

الأحماض الفينولية هي مواد كيميائية نباتية مهمة موجودة في الحبوب الكاملة. أنها تمتلك خصائص نشطة بيولوجيا مثل وظائف الحماية المضادة للأكسدة. يهدف هذا العمل إلى الإبلاغ عن طريقة معممة لتحديد HPLC ، وتقدير إجمالي محتوى الفينول ، وتحديد القدرة المضادة للأكسدة للأحماض الفينولية في الحبوب والبقوليات.

Abstract

الأحماض الفينولية هي فئة من المركبات العضوية التي تحمل كلا من مجموعة الفينول ومجموعة كربوكسيلية. توجد في الحبوب وتتركز في نخالة الحبوب أو معطف بذور البقوليات. لديهم خصائص مضادة للأكسدة التي ولدت الكثير من الاهتمام البحثي في السنوات الأخيرة ، حول وظائفهم الصحية الوقائية المضادة للأكسدة المحتملة. يقدم هذا العمل طريقة معممة لاستخراج الأحماض الفينولية القابلة للذوبان الحرة من الحبوب الكاملة وتحليل قدرتها المضادة للأكسدة. تم استخدام خمس عينات من الحبوب الكاملة تتكون من حبوبين (القمح والذرة الصفراء) وثلاث بقوليات (حبوب اللوبيا والفاصوليا الكلوية وفول الصويا). تم طحن الحبوب إلى دقيق واستخراج الأحماض الفينولية القابلة للذوبان الحرة باستخدام الميثانول المائي. ثم تم تحديد المركبات باستخدام كروماتوغراف سائل عالي الضغط (HPLC). تم استخدام طريقة Folin-Ciocalteu لتحديد محتواها الفينولي الكلي بينما تم تحديد قدراتها المضادة للأكسدة باستخدام قدرة الكسح الجذري DPPH ، وقدرة مضادات الأكسدة المكافئة ل Trolox (TEAC) وقدرة امتصاص الأكسجين الجذري (ORAC). وشملت الأحماض الفينولية التي تم تحديدها أحماض الفانيليك والكافيين والكوماريك والفيروليك. تم تحديد حمض الفانيليك فقط في اللوبيا بينما تم تحديد حمض الكافيين فقط في حبوب الكلى. تم تحديد حمض p-Coumaric في الذرة الصفراء واللوبيا وفول الصويا ، في حين تم تحديد حمض الفيروليك في جميع العينات. كان حمض الفيروليك هو حمض الفينوليك السائد الذي تم تحديده. انخفض التركيز الكلي للأحماض الفينولية في العينات بالترتيب التالي: فول الصويا > اللوبيا > الذرة الصفراء = الفاصوليا الكلوية > القمح. انخفضت القدرة الكلية المضادة للأكسدة (مجموع قيم اختبارات DPPH و TEAC و ORAC) على النحو التالي: فول الصويا > والفاصوليا > الذرة الصفراء = حبة اللوبيا > القمح. خلصت هذه الدراسة إلى أن تحليل HPLC بالإضافة إلى اختبارات DPPH و TEAC و ORAC توفر معلومات مفيدة حول تكوين حمض الفينول والخصائص المضادة للأكسدة للحبوب الكاملة.

Introduction

الأحماض الفينولية هي من بين أهم المواد الكيميائية النباتية التي تمت دراستها في النباتات بسبب الدور الحيوي الذي تلعبه في الدفاع عن النبات ضد العدوى العاشبة والفطرية ، وكذلك الحفاظ على الدعم الهيكلي والسلامة في الأنسجة النباتية 1,2. فهي وفيرة في نخالة الحبوب ومعطف البذور من البقوليات3. من الناحية الهيكلية ، يتم تقسيمها إلى مجموعتين: أحماض هيدروكسي بنزويك (الشكل 1) وأحماض الهيدروكسي سيناميك (الشكل 2). تشمل أحماض الهيدروكسي بنزويك الشائعة في الحبوب والبقوليات أحماض الجاليك و p-hydroxybenzoic و 2,4-dihydroxybenzoic و protocatechuic و vanillic و syringic ، في حين أن أحماض الهيدروكسي سيناميك الشائعة تشمل أحماض الكافيك و p-coumaric و ferulic و sinapic3. تمتلك الأحماض الفينولية أيضا خصائص مضادة للأكسدة لأنها قادرة على مسح الجذور الحرة ، والتي تسبب التزنخ التأكسدي في الدهون ، وبدء ونشر الإجهاد التأكسدي الناجم عن الجذور في الأنظمة الفسيولوجية 4,5. بسبب هذا الدور الفسيولوجي الحيوي كمضادات للأكسدة ، فهي موضوع بحث حديث. هذا لأنه عند استهلاكها كمكونات للأطعمة النباتية ، يمكنها ممارسة حماية مضادة للأكسدة.

الحبوب ومنتجات الحبوب هي مصادر غذائية رئيسية للكربوهيدرات للبشر والحيوانات في جميع أنحاء العالم6. وتشمل الحبوب القمح والأرز والذرة (الذرة) والشعير والتريتيكال والدخن والذرة الرفيعة. ومن بين هذه الذرة، الذرة هي الأكثر استخداما، حيث يقدر الاستخدام العالمي بنحو 1,135.7 مليون طن في 2019/2020، يليها القمح مع استخدام عالمي يقدر بنحو 757.5 مليون طن خلال نفس الفترة7. تعد أطعمة الحبوب مصادر رائعة للطاقة للمستهلكين لأنها مصادر غنية بالكربوهيدرات. كما أنها توفر بعض البروتين والدهون والألياف والفيتامينات والمعادن6. بالإضافة إلى قيمتها الغذائية ، تعد الحبوب مصادر جيدة لمضادات الأكسدة الكيميائية النباتية ، وخاصة الأحماض الفينولية ، والتي لديها القدرة على حماية النظام الفسيولوجي من الأضرار التأكسدية الناجمة عن الجذور3. البقوليات هي أيضا مصادر جيدة للمغذيات وهي عموما أعلى في البروتين من الحبوب. كما أنها تحتوي على الفيتامينات والمعادن وتستخدم في إعداد الأطعمة المختلفة8. بالإضافة إلى ذلك ، البقوليات هي مصادر جيدة لمجموعة متنوعة من مضادات الأكسدة الكيميائية النباتية ، بما في ذلك الأحماض الفينولية ، والفلافونويد ، والأنثوسيانين ، والبروانثوسيانيدينات9،10. قد يكون لأنواع مختلفة من الحبوب والبقوليات تركيبة حمض فينولية مختلفة. لذلك هناك حاجة لدراسة تكوين حمض الفينوليك للحبوب والبقوليات وأصنافها ، من أجل معرفة فوائدها الصحية المحتملة فيما يتعلق بمضادات الأكسدة الفينولية.

تم الإبلاغ عن عدد من الفحوصات لقياس كمية الأحماض الفينولية في الحبوب والبقوليات ، وتحديد أنشطتها المضادة للأكسدة. الطرق الأكثر شيوعا لتحليل الأحماض الفينولية للحبوب الكاملة هي قياس الطيف الضوئي والكروماتوغرافيا السائلة11. كان الهدف من هذا العمل هو إظهار طريقة كروماتوغرافية سائلة معممة عالية الضغط لتحديد تكوين حمض الفينول القابل للذوبان الحر ، وطرق الطيف الضوئي لتحديد المحتوى الفينولي الكلي والقدرة المضادة للأكسدة لبعض الحبوب الكاملة والبقوليات.

Protocol

1. نوع العينات استخدم خمس عينات من الحبوب الكاملة ، تتكون من حبوبين (على سبيل المثال ، القمح القاسي والذرة الصفراء) وثلاث بقوليات (على سبيل المثال ، حبوب اللوبيا Blackeye وفول الصويا والفاصوليا الحمراء الكلوية) لهذه الدراسة. طحن 50 غرام من كل حبة في ثلاثة أضعاف في الدقيق ، وذل?…

Representative Results

ويبين الجدول 2 الأحماض الفينولية التي تم تحديدها في الحبوب والبقوليات. استنادا إلى المعايير الأصيلة المتاحة ، تم تحديد أربعة أحماض فينولية في العينات وهي: الفانيليا ، والكافيين ، والأحماض الكومارية ، والفيروليك. حمض الفانيليك هو حمض هيدروكسي بنزويك في حين أن الثلاثة الأخرى …

Discussion

تم اختيار الحبوب الكاملة كحبوب وبقوليات تمثيلية للحبوب التي تجد تطبيقات غذائية واسعة في جميع أنحاء العالم. في حين قد توجد اختلافات بين أصناف كل حبة ، كان تركيز هذه الدراسة هو إظهار طريقة معممة لاستخراج وتحليل حمض الفينول الحر للحبوب الكاملة. تم تعديل طريقة الاستخراج عن طريق تقليل كميات ال…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويعرب صاحبا البلاغ عن امتنانهما للدعم التقني الذي قدمته السيدة أليسون سير والسيدة هانا أودورو – أوبينغ، فضلا عن الدعم الذي قدمته السيدة جانيس فاجاردو والسيد ميغيل ديل روزاريو لتحرير الفيديو.

Materials

15 mL Falcon conical centrifuge tubes Fisher Scientific 05-527-90
2 mL Amber glass ID Surestop vial Thermo Scientific C5000-2W
2 mL Amber microcentrifuge tubes VWR 20170-084
2,2′-Azobis(2-amidinopropane) dihydrochloride (AAPH) Sigma-Aldrich 440914-100G
2,2'-Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) (C18H18N4O6S4) ≥98%, Sigma Aldrich A1888-2G
2,2-Diphenyl-1pikrylhydrazyl (DPPH) (C18H12N5O6) Sigma Aldrich D913-2
6-Hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid (Trolox) (C14H18O4), ≥98% Fluka Chemika 56510
9 mm Autosampler Vial Screw Thread Caps Thermo Scientific 60180-670
96 well flat bottom plates Fisher Scientific 12565501
Agilent BioTek ELx800 microplate reader Fisher Scientific BT-ELX800NB
Agilent BioTek Precision 2000 96/384 Automated Microplate Pipetting System Fisher Scientific N/A
Agilent BioTek FLx800 Microplate Fluorescence Reader Fisher Scientific N/A
Analytical balance SI-114 Denver Instrument SI-114.1
Autosampler, Waters 717 Plus Waters WAT078900
BD 3 mL syringe Luer-Lok Tip BD 309657
Bransonic ultrasonic cleaner, Branson 5510 Millipore Sigma Z245143
Corning LSE Vortex Mixer Corning 6775
Durapore Filter (0.45 µm PVDF Membrane) Merck Millipore Ltd HVLP04700 
Durapore Membrane Filters (0.45 µm HV) Merck Millipore Ltd HVHP04700
Eppendorf Research plus, 0.5-10 µL Eppendorf 3123000020
Eppendorf Research plus, 0.5-5 mL Eppendorf 3123000071
Eppendorf Research plus, 100-1000 µL Eppendorf 3123000063
Eppendorf Research plus, 10-100 µL Eppendorf 3123000047
Ethyl acetate, HPLC grade Fisher Chemical E195-4
Ferulic acid standard Sigma Aldrich 128708-5G
Fluorescein Fisher Scientific AC119245000
Folin & Ciocalteu phenol reagent Sigma Aldrich F9252
Formic acid, 99% Acros Organics, Janssen Pharmaceuticalaan 3a 27048-0010
Gallic acid standard Sigma G7384
High performance liquid chromatograph (HPLC), Waters 2695 Waters 960402
Methanol, HPLC grade Fisher Chemical A452-4
Micro pipet tips, 0.5-10 µL Fisherbrand 21-197-2F
Microcentrifuge Sorvall Legend Micro 21 centrifuge Thermo Scientific 75002435
Multichannel micropipette, Proline Plus, 30-300 µL Sartorius 728240
Photodiode array detector, Waters 2996 Waters 720000350EN
Pipet tips, 1000 µL VWR 83007-382
Pipet tips, 1-5 mL VWR 82018-840
Potassium persulfate (K2S2O8), ≥99.0% Sigma Aldrich 216224-100G
Potassium phosphate dibasic anhydrous (K2HPO4) Fisher Scientific P288-500
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) Fisher Scientific P285-500
PYREX 250 mL Short Neck Boiling Flask, Round Bottom Corning 4321-250
Reversed phase C18 Analytical Column (100 x 3 mm) Accucore aQ Thermo Scientific 17326-103030
Roto evaporator, IKA RV 10 IKA  0010005185
Sodium carbonate (NaCO3) anhydrous Fisher Chemical S263-1
Sodium chloride (NaCl) Mallinckrodt AR® 7581
Sodium phosphate dibasic anhydrous (Na2HPO4) Fisher Scientific BP332-500
Sodium phosphate monobasic anhydrous (NaH2PO4) Fisher bioreagents BP329-500
Standardization pipet tips 0-200µL Fisherbrand 02-681-134
Syringe Driven Filter unit (0.22 µm)  Millex®-GV SLGVR04NL
Target micro-serts vial insert (400 µL) Thermo Scientific C4011-631
Ultrapure water (Direct Q-3 UV system with pump) Millipore ZRQSVP030

Referenzen

  1. Huitu, O., et al. Silicon, endophytes and secondary metabolites as grass defenses against mammalian herbivores. Frontiers in Plant Science. 5, 478 (2014).
  2. Joshi, J. R., Burdman, S., Lipsky, A., Yariv, S., Yedidia, I. Plant phenolic acids affect the virulence of Pectobacterium aroidearum and P. carotovorum ssp. brasiliense via quorum sensing regulation. Molecular Plant Pathology. 17 (4), 487-500 (2016).
  3. Dykes, L., Rooney, L. W. Phenolic compounds in cereal grains and their health benefits. Cereal Foods World. 52 (3), 105-111 (2007).
  4. Xiang, J., Apea-Bah, F. B., Ndolo, V. U., Katundu, M. C., Beta, T. Profile of phenolic compounds and antioxidant activity of finger millet varieties. Food Chemistry. 275, 361-368 (2019).
  5. Qiu, Y., Liu, Q., Beta, T. Antioxidant properties of commercial wild rice and analysis of soluble and insoluble phenolic acids. Food Chemistry. 121 (1), 140-147 (2010).
  6. Beverly, R. L., Motarjemi, Y. . Encyclopedia of Food Safety. 3, 309-314 (2014).
  7. FAO. Food Outlook – Biannual report on global food markets. Food and Agriculture Organization. , (2020).
  8. Erbersdobler, H. F., Barth, C. A., Jahreis, G. Legumes in human nutrition. Nutrient content and protein quality of pulses. Ernahrungs Umschau. 64 (9), 134-139 (2017).
  9. Dueñas, M., Hernández, T., Estrella, I. Assessment of in vitro antioxidant capacity of the seed coat and the cotyledon of legumes in relation to their phenolic contents. Food Chemistry. 98 (1), 95-103 (2006).
  10. Khang, D. T., Dung, T. N., Elzaawely, A. A., Xuan, T. D. Phenolic profiles and antioxidant activity of germinated legumes. Foods. 5 (2), 27 (2016).
  11. Hefni, M. E., Amann, L. S., Witthöft, C. M. A HPLC-UV method for the quantification of phenolic acids in cereals. Food Analytical Methods. 12 (12), 2802-2812 (2019).
  12. AOAC. . Official Methods of Analysis. 17th edn. , (2000).
  13. Apea-Bah, F. B., Head, D., Scales, R., Bazylo, R., Beta, T. Hydrothermal extraction, a promising method for concentrating phenolic antioxidants from red osier dogwood (Cornus stolonifer) leaves and stems. Heliyon. 6 (10), 05158 (2020).
  14. Apea-Bah, F. B., Minnaar, A., Bester, M. J., Duodu, K. G. Sorghum-cowpea composite porridge as a functional food, Part II: Antioxidant properties as affected by simulated in vitro gastrointestinal digestion. Food Chemistry. 197, 307-315 (2016).
  15. Robbins, R. J., Bean, S. R. Development of a quantitative high-performance liquid chromatography-photodiode array detection measurement system for phenolic acids. Journal of Chromatography A. 1038 (1-2), 97-105 (2004).
  16. Singleton, V. L., Rossi, J. A. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture. 16, 144-158 (1965).
  17. Prior, R. L., Wu, X., Schaich, K. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 53 (10), 4290-4302 (2005).
  18. Ainsworth, E. A., Gillespie, K. M. Estimation of total phenolic content and other oxidation substrates in plant tissues using Folin-Ciocalteu reagent. Nature Protocols. 2 (4), 875-877 (2007).
  19. Waterhouse, A. L. Determination of total phenolics. Current Protocols in Food Analytical Chemistry. 1, 1-8 (2002).
  20. Huang, D., Ou, B., Prior, R. L. The chemistry behind antioxidant capacity assays. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 53 (6), 1841-1856 (2005).
  21. Esterbauer, H., Wäg, G., Puhl, H. Lipid peroxidation and its role in atherosclerosis. British Medical Bulletin. 49 (3), 566-576 (1993).
  22. Esterbauer, H., Gebicki, J., Puhl, H., Jürgens, G. The role of lipid peroxidation and antioxidants in oxidative modification of LDL. Free Radical Biology and Medicine. 13 (4), 341-390 (1992).
  23. Apea-Bah, F. B., Serem, J. C., Bester, M. J., Duodu, K. G. Phenolic composition and antioxidant properties of Koose, a deep-fat fried cowpea cake. Food Chemistry. 237, 247-256 (2017).
check_url/de/62467?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Apea-Bah, F. B., Drawbridge, P., Beta, T. A Generalized Method for Determining Free Soluble Phenolic Acid Composition and Antioxidant Capacity of Cereals and Legumes. J. Vis. Exp. (184), e62467, doi:10.3791/62467 (2022).

View Video