Dit protocol demonstreert hoe biologische cryo-geconserveerde monsters kunnen worden afgebeeld met behulp van cryo-gestructureerde verlichtingsmicroscopie. We demonstreren de methodologie door het cytoskelet van U2OS-cellen in beeld te brengen.
Driedimensionale (3D) gestructureerde verlichtingsmicroscopie (SIM) maakt beeldvorming van fluorescerend gelabelde cellulaire structuren met een hogere resolutie mogelijk dan conventionele fluorescentiemicroscopie. Deze superresolutie (SR) techniek maakt visualisatie van moleculaire processen in hele cellen mogelijk en heeft het potentieel om te worden gebruikt in combinatie met elektronenmicroscopie en röntgentomografie om structurele en functionele informatie te correleren. Een SIM-microscoop voor cryogenisch geconserveerde monsters (cryoSIM) is onlangs in gebruik genomen bij de correlatieve cryo-imaging beamline B24 bij het Britse synchrotron.
Het is speciaal ontworpen voor 3D-beeldvorming van biologische monsters bij cryogene temperaturen op een manier die compatibel is met latere beeldvorming van dezelfde monsters door röntgenmicroscopiemethoden zoals cryo-zachte röntgentomografie. Dit video-artikel biedt gedetailleerde methoden en protocollen voor succesvolle beeldvorming met behulp van de cryoSIM. Naast instructies over de werking van de cryoSIM-microscoop zijn aanbevelingen opgenomen met betrekking tot de keuze van monsters, fluoroforen en parameterinstellingen. Het protocol wordt gedemonstreerd in U2OS-celmonsters waarvan de mitochondriën en tubuline fluorescerend zijn gelabeld.
SR-beeldvormingstechnieken zijn het afgelopen decennium breed toegankelijk geworden voor biologen1. Ze maken beeldvorming met hoge resolutie mogelijk van fluorescerend gelabelde monsters voorbij de diffractielimiet. Het was echter een uitdaging om SR-microscopiemethoden aan te passen om met monsters bij cryogene temperaturen te werken2. Dit zou voordelig zijn voor correlatieve beeldvorming in combinatie met elektronen- of röntgentomografie. Onlangs is SIM aangepast voor gebruik met cryogene monsters en is met succes aangetoond dat het correlatieve studies van biologische cellen mogelijk maakt in combinatie met zachte röntgentomografie (SXT)3 op de correlatieve cryo-imaging beamline B24 op de Diamond Light Source Synchrotron (https://www.diamond.ac.uk/Instruments/Biological-Cryo-Imaging/B24.html). SIM kan de resolutie van conventionele breedveldmicroscopie verdubbelen door het monster te verlichten met gestreepte lichtpatronen (Moiré-franjes) onder drie hoeken en in vijf fasen. De interferentie tussen deze lichtpatronen en de fluorescentie van het monster kan worden gebruikt om computationeel extra informatie over subdiffractiestructuren te ontdekken4,5.
Er zijn verschillende voordelen van SIM ten opzichte van andere SR-technieken voor cryogene toepassingen. Ten eerste kan het werken zonder speciaal ontworpen knipperende fluoroforen; conventionele fluoroforen kunnen worden gebruikt, waardoor toegang wordt gegeven tot een breder scala aan potentiële fluorescerende taggingmiddelen6. Bovendien vereist het slechts 15 afbeeldingen per z-segment (in 3D; 9 afbeeldingen voor 2D), terwijl andere SR-methoden ongeveer 1000 afbeeldingen per plak nemen, waardoor de kans toeneemt dat het monster wordt verwarmd en daarom het risico op ijskristalvorming toeneemt, wat artefacten kan veroorzaken. Ten slotte kan deze techniek dikkere biologische monsters van meer dan 10 μm in beeld brengen, waardoor hele cellen in hun bijna-oorspronkelijke toestand kunnen worden afgebeeld6. De cryoSIM is gebouwd met behulp van standaard optische componenten en met open-access software voor beeldvorming, waardoor het eenvoudig te documenteren en te dupliceren is indien gewenst6. De cryoSIM heeft een 100x/0.9 numeriek diafragma objectief (zie de Tabel van Materialen); meer informatie over de optische componenten, ontwerpparameters en prestaties is beschreven door Phillips et al.6 Hier laat dit protocol zien hoe de cryoSIM-microscoop moet worden gebruikt, inclusief hoe monsters op de cryogene fase moeten worden geladen en gelost, hoe gegevens op de microscoop kunnen worden verzameld en hoe de SIM-beelden kunnen worden gereconstrueerd.
3D SIM bij cryogene temperaturen heeft veel voordelen ten opzichte van andere SR-beeldvormingstechnieken voor het afbeelden van verglaasd biologisch materiaal. Het vereist aanzienlijk minder beelden per z-plak in vergelijking met andere SR-methoden, wat resulteert in minder bestraling en een lagere kans op ijskristalvorming voor verglaasde monsters. Het is ook in staat om hele cellen in beeld te brengen en kan worden gecorreleerd met röntgentomografie om structuur en functie te matchen. Interessant is dat de meeste in de handel verkrijgbare fluoroforen en fluorescentietags minder bleken onder cryogene omstandigheden dan bij kamertemperatuur. Gezien de hoge kwantumopbrengst van de meest voorkomende fluoroforen bij kamertemperatuur (meer dan 80% in sommige gevallen), is de absolute winst die in fotonen wordt gedetecteerd echter niet te wijten aan veranderingen in de kwantumopbrengst, maar aan een vermindering van de complexe bleekprocessen. Meer informatie over de opbrengst van fluoroforen bij cryogene temperaturen is te vinden in 8.
Het is van cruciaal belang dat monsters die bij de cryoSIM aankomen, zijn voorbereid met behulp van een conventionele cryofluorescentiemicroscoop met brightfield-mogelijkheid om een raster “kaart” te produceren die alle potentiële AOIs voor verdere beeldvorming omvat(figuur 5). Toegangstijd bij de cryoSIM wordt toegewezen via een competitief proces waarbij een voorstel wordt ingediend, dat vervolgens wordt beoordeeld op haalbaarheid van de techniek en biomedische impact. De tijd bij de apparatuur is daarom altijd “at a premium”, en vooraf toegewezen netten maken het meest efficiënte gebruik van een toewijzing mogelijk. Het is ook essentieel dat het monster verglaasd blijft, vooral tijdens de overdracht van het monster van de monsterhouder naar het beeldvormingsplatform, om de vorming van ijskristallen en de daaropvolgende monsterschade te minimaliseren. Het monster moet van goede kwaliteit zijn om de beste SIM-beelden te produceren. Een goed voorbereid monster zal worden gekenmerkt door de volgende kenmerken: (a) het zal geen ijskristalverontreiniging hebben, (b) het gebruikte raster zal een vinderraster zijn, (c) de drager zal plat zijn, (d) het rastergaas en het substraatoppervlak zullen niet auto-fluorescerend zijn, en (e) er zullen geen breuken in het ondersteuningsmembraan zijn. Deze voorwaarden kunnen worden bereikt door zorgvuldige monsterbehandeling en ervoor te zorgen dat monsters altijd verglaasd blijven.
Het is belangrijk om van tevoren te controleren of voorgestelde monsterfluooforen voldoende signaal geven in de cryoSIM-microscoop. Tools zoals SPEKCheck9 kunnen helpen bij het kiezen van de optimale fluorofoor- en filtercombinaties. Als er problemen zijn met de ruwe gegevensverzameling of het reconstructieproces, kunnen artefacten na de reconstructie in de afbeeldingen verschijnen. Voorbeelden van verschillende artefacten zijn gedocumenteerd door Demmerle et al.10 De beeldreconstructieparameters kunnen in het SoftWoRx-logbestand worden bekeken als de reconstructie niet optimaal is door het reconstructiesamenvattingsbestand te openen. Er moet een consistente lijnafstand zijn tussen hoeken in een bepaald kanaal en een relatief consistente amplitude. Variatie van meer dan 30% en waarden aanzienlijk boven 1 (als vergoeding voor de kraalgrootte wordt toegepast) moeten nader worden onderzocht en wijzen waarschijnlijk op mislukte reconstructies. Bovendien kan de SIMcheck2-software in Fiji ook worden gebruikt om verschillende controles uit te voeren op de onbewerkte en gereconstrueerde gegevens om de oorzaak van fouten in de instellingen van de beeldvormings- of reconstructieparameter te diagnosticeren. SIM-check en de modulatiecontrastkaart kunnen ook helpen bij de beoordeling van de kwaliteit van gereconstrueerde gegevens door te interpreteren welke delen van een afbeelding waarschijnlijk echte structuren versus artefacten zijn.
Een laag modulatiecontrast (weergegeven door donkere kleur, in figuur 5E)binnen het nucleaire gebied betekent dat dit gebied gevoeliger zal zijn voor reconstructieartefacten, wat impliceert dat de hash-patronen die in de kern worden getoond, kunnen worden geclassificeerd (Figuur 5D) als een artefact. Sterke fluorescentiesignaalgebieden hebben meer kans om inheemse structuren in de verwerkte gegevens nauwkeurig weer te geven. In gebieden met een zwak signaal waar fluoroforen over grotere gebieden zijn verdeeld, zoals het totale oppervlak van een blaasje, is het waarschijnlijk dat echt signaal naast verwerkingsartefacten bestaat, en er moet voorzichtig worden omgegaan met de interpretatie van die gegevens. Na inspectie van de volledig gereconstrueerde gegevens om ervoor te zorgen dat er geen vreemde artefacten zijn, en dat de achtergrond over het algemeen Gaussisch is en gecentreerd in de buurt van nul, worden de gegevens over het algemeen op nul geknipt, of de modale waarde – de piek van het achtergrondsignaal – zou zeer dicht bij nul moeten zijn. Dit zorgt ervoor dat het dynamisch bereik van de weergegeven afbeelding niet wordt gedomineerd door negatieve achtergrondartefacten. Wanneer een zwakker signaal wordt verwacht, moet extra zorg worden besteed aan het analyseren van de kenmerken en ervoor te zorgen dat het echte structuren zijn in plaats van reconstructie-artefacten.
Er zijn enkele beperkingen van het beeldvormingssysteem. Omdat het monsterstadium vlak is, zijn monsters met variabele dikte of rasters die niet vlak zijn, geen ideale onderwerpen voor beeldvorming. Bovendien, als correlatieve beeldvorming zal worden gedaan met behulp van zachte röntgentomografie, mogen cellen in de buurt van rastergrenzen niet in beeld worden gebracht, omdat deze niet zichtbaar zijn in de röntgenmicroscoop tijdens de acquisitie van tilt-series. Ten slotte heeft de hoeveelheid vloeien van het monster vóór het invriezen een aanzienlijke invloed op de beeldkwaliteit; te weinig blotting resulteert in monsters die te dik zijn, wat suboptimale SIM-beelden met hoge achtergrondruis oplevert, terwijl te veel blotting ervoor kan zorgen dat cellen misvormd raken en daarom vatbaarder zijn voor hitteschade door de invallende laserstraal. Kortom, cryoSIM is een krachtig fluorescentiemicroscopie-hulpmiddel voor het in beeld brengen van biologische monsters in 3D in een bijna-native stadium en heeft brede toepassingen op veel gebieden.
The authors have nothing to disclose.
Dit project heeft financiering ontvangen van het Horizon 2020 iNEXT-Discovery-project van de Europese Commissie. I.M. Dobbie erkent de financiering van de Wellcome Trust (107457/Z/15/Z). Dit werk werd uitgevoerd met de steun van de Diamond Light Source, instrument B24 (voorstel BI25512). Onze dank gaat uit naar het personeel van Micron en al onze uitstekende gebruikers en medewerkers voor het helpen opzetten van de cryoSIM en het bijbehorende potentieel.
Auto grids | FEI | ||
Autogrids | Thermo Fisher Scientific | 1036173 | |
BioTracker 488 Green Microtubule Cytoskeleton Dye | Sigma-Aldrich | SCT142 | |
Cockpit Software | Oxford University | https://github.com/MicronOxford/cockpit | |
cryo compatible polyurethane container | Jena bioscience | CC-FD-800 | |
Cryo TEM grid storage box | Thermo Fisher Scientific | Model#AutoGrid | |
cryo-SIM microscope | Custom made | N/A | Custom made, see following reference for the design: Michael A. Phillips, Maria Harkiolaki, David Miguel Susano Pinto, Richard M. Parton, Ana Palanca, Manuel Garcia-Moreno, Ilias Kounatidis, John W. Sedat, David I. Stuart, Alfredo Castello, Martin J. Booth, Ilan Davis, and Ian M. Dobbie, "CryoSIM: super-resolution 3D structured illumination cryogenic fluorescence microscopy for correlated ultrastructural imaging," Optica 7, 802-812 (2020). Has a Nikon TU Plan Apo 100x/0.9 NA. |
Cryostage system | Linkam Scientific Instruments | CMS196 | |
Fine tip surgical forceps | Ted Pella | 38125 | |
MitoTracker Deep Red FM | Thermo Fisher Scientific | M22426 | |
Python Microscope Software | Oxford University | https://www.python-microscope.org/ | |
Scientific dry paper wipes | Kimberly-Clark 7551 | 2 | |
SIM Reconstruction Software | softWoRx, GE Healthcare | Version 6.5.2 | |
StitchM Software | Diamond Light Source | https://github.com/DiamondLightSource/StitchM | |
TEM grids for samples | Quantifoil Micro Tools | G200F1 |