Summary

Aktivitet av bakre laterale linje afferent nevroner under svømming i sebrafisk

Published: February 10, 2021
doi:

Summary

Vi beskriver en protokoll for å overvåke endringer i den afferente nevronaktiviteten under motorkommandoer i et modell virveldyrhårcellesystem.

Abstract

Sensoriske systemer samler signaler som er avgjørende for å styre atferd, men dyr må tyde hvilken informasjon som er biologisk relevant. Locomotion genererer reafferent signaler om at dyr må disentangle fra relevante sensoriske signaler i omgivelsene. For eksempel, når en fisk svømmer, oppdages strømning generert fra kroppsunduleringer av mekanoreceptive nevromasser, som består av hårceller, som komponerer sidelinjen. Hårcellene overfører deretter væskebevegelsesinformasjon fra sensoren til hjernen via de sensoriske afferente nevronene. Samtidig sendes korollær utladning av motorkommandoen til hårceller for å forhindre sensorisk overbelastning. Å ta hensyn til den hemmende effekten av prediktive motorsignaler under bevegelse er derfor kritisk når man vurderer følsomheten til sidelinjesystemet. Vi har utviklet en in vivo elektrofysiologisk tilnærming for samtidig å overvåke bakre lateral linje afferent neuron og ventral motorrotaktivitet i sebrafisk larver (4-7 dager etter befruktning) som kan vare i flere timer. Ekstracellulære opptak av afferente nevroner oppnås ved hjelp av den løse patchklemmeteknikken, som kan oppdage aktivitet fra enkle eller flere nevroner. Ventrale rotopptak utføres gjennom huden med glasselektroder for å oppdage motorisk nevronaktivitet. Vår eksperimentelle protokoll gir potensial til å overvåke endogene eller fremkalte endringer i sensorisk inngang på tvers av motorisk atferd i en intakt, oppførende virveldyr.

Introduction

Afferent nevroner av mekanosensoriske systemer overfører informasjon fra hårceller til hjernen under hørsel og balanse. Elektrofysiologi kan avsløre følsomheten til afferente nevroner gjennom direkte opptak. Selv om det kan være utfordrende å lappe hele celler fra hårceller, er det enklere å registrere fra nedstrøms afferente nevroner og tillater vurdering av handlingspotensialer som svar på kontrollerte stimuleringer1,2,3. Stimulerende hårceller fører til avbøyning, som endrer mekanosensoriske strukturer, og utløser dermed en økning i virkningspotensialer (pigger) i afferent nevroner4,5,6. I fravær av ytre stimuli øker afferente nevroner også spontant på grunn av glutamatlekkasje fra hårcellene til afferent postsynaptiske terminaler7,8, og har vist seg å bidra til å opprettholde følsomhet9,10. Patch klemme registrering av afferent aktivitet muliggjør observasjon av hårcelle følsomhet og signaldynamikk som ikke er mulig ved hjelp av teknikker med lavere temporal oppløsning, for eksempel i mikrofonikk11,12 eller funksjonell kalsiumavbildning13,14,15. Følgende protokoll vil tillate opptak av afferent aktivitet samtidig med motorkommandoer for å avsløre øyeblikkelige endringer i hårcellefølsomhet.

Sebrafisk (Danio rerio) bruker hårceller som finnes i nevromasser som komponerer laterallinjesystemet for å oppdage vannbevegelse i forhold til kroppen, som oversettes til nevrale signaler som er avgjørende fornavigasjon 16,17,18, rovdyrunngåelse, byttedyr fange19,20og skolegang21. Vannstrømmen kan også selvgenereres av bevegelsene til svømming22,23,24, åndedrett22,25,26og fôring27. Disse atferdene består av repeterende bevegelser som kan tretthet hårceller og svekke sensing. Derfor er det kritisk at sidelinjen systemet skiller mellom ekstern (exafferent) og selvgenerert (reafferent) strømning stimuli. En korollær utslipp demper selvgenererte strømningssignaler under bevegelse i sebrafisk. Dette hemmende prediktive motorsignalet videresendes via synkende nevroner til sensoriske reseptorer for å endre inngangen eller avbryte behandlingen av den reafferente tilbakemeldingen28,29. Seminalarbeid som bidro til vår tidlige forståelse av dette feedforward-systemet, stolte på in vitro-preparater der tilkoblings- og endogene aktiviteten til nevralkretsen ikke ble opprettholdt28,30,31,32,33,34,35. Denne protokollen beskriver en tilnærming til å bevare en intakt nevral krets der endogen tilbakemeldingsdynamikk opprettholdes og dermed muliggjør bedre forståelse av korollær utslipp in vivo.

Protokollen som er skissert her beskriver hvordan man overvåker bakre laterallinje afferent neuron og motorisk nevronaktivitet samtidig i larval sebrafisk. Karakterisering av afferent signaldynamikk før, under og etter motoriske kommandoer gir innsikt i sanntid, endogen tilbakemelding fra sentralnervesystemet som modulerer hårcellefølsomhet under bevegelse. Denne protokollen skisserer hvilke materialer som må utarbeides før eksperimenter, og beskriver deretter hvordan man lammer og forbereder sebrafisk larver. Protokollen vil beskrive hvordan man etablerer en stabil løs patch opptak av afferent nevroner og ekstracellulær ventral rot (VR) opptak av motoriske nevroner. Representative data som kan fås ved hjelp av denne protokollen presenteres fra en eksemplarisk person og analyse ble utført på flere replikeringer av den eksperimentelle protokollen. Forhåndsbehandling av data utføres ved hjelp av tilpassede skriftlige skript i MATLAB. Totalt sett er dette in vivo eksperimentelle paradigmet klar til å gi en bedre forståelse av sensorisk tilbakemelding under bevegelse i et modell vertebrathårcellesystem.

Protocol

All dyrepleie og eksperimenter ble utført i samsvar med protokoller godkjent av University of Floridas Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Fremstilling av materialer for elektrofysiologiske opptak Lag en silikon elastomerbunnet opptaksfat. Dispenser et tynt lag med selvblandende silikonelastomerkomponenter (f.eks. Sylgard) i en dekselglassbunnet vevskulturrett til den nivåer med kanten av grunne brønner. Ca. 0,5 ml er tilstrekkelig. Dekk og herd rett…

Representative Results

Etter at sebrafisk larver er riktig immobilisert og bakre lateral linje afferent ganglion og VR-opptak oppnås, kan aktivitet i både afferent og motoriske nevroner måles samtidig. Opptakskanaler vises ved hjelp av gapfrie opptaksprotokoller (trinn 1.4) for kontinuerlig overvåking av avferente og VR-aktivitet. I sanntid kan reduksjoner i spontan afferent pigghastighet observeres samtidig med VR-aktivitet som indikerer fiktive svømmekamper (Figur 1E). Vi fant ut at de beste resultatene og …

Discussion

Den eksperimentelle protokollen som er beskrevet, gir potensial til å overvåke endogene endringer i sensorisk inngang på tvers av motorisk atferd i en intakt, oppførende virveldyr. Spesielt beskriver den en in vivo-tilnærming til å utføre samtidige ekstracellulære opptak av laterale linje afferent nevroner og ventrale motorrøtter i larval sebrafisk. Spontan afferent aktivitet har tidligere vært preget av sebrafisk uten hensyn til potensiell samtidig motoraktivitet1,<sup class=…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner takknemlig støtte fra National Institute of Health (DC010809), National Science Foundation (IOS1257150, 1856237) og Whitney Laboratory for Marine Biosciences til J.C.L. Vi vil takke tidligere og nåværende medlemmer av Liao Lab for å stimulere til diskusjoner.

Materials

100 mL beaker PYREX 1000 resceptacle for etchant
10x water immersion objective Olympus UMPLFLN10xW low magnification for positioning larvae and recording electrode
40x water immersion objective Olympus LUMPLFLN40XW higher magnification for position electrode tip and establishing patch-clamp
abfload.m supplemental coding file custom written MATLAB script for converting raw electrophysiology recordings to .mat files
AffVR_preprocess.m supplemental coding file custom written MATLAB script for preprocessing recording data
BNC coaxial cables ThorLabs 2249-C-12 connecting amplifier and digitizer channels; require 4
borosilicate glass capillaries w/ filament Warner Instruments G150F-3 inner diameter: 0.86, outer diameter: 1.50; capillary glass used to form recording electrodes
burst_detect supplemental coding file custom written MATLAB function necessary to run AffVR_preprocess.m
computer N/A N/A any computer should work
DC Power Supply Tenma 72-420 used for electrically etching dissection pins
electrophysiology digitizer Axon Instruments, Molecular Devices Axon DigiData 1440A enables acquisition of patch-clamp data
filament Sutter Instrument Company FB255B 2.5 mm box filament used in micropipette puller
fine forceps Fine Science Tools Dumont #5 (0.05 x 0.02 mm) Item No. 11295-10 used to manipulate larvae and insert pins
fixed stage DIC microscope Olympus BX51WI microscope used to visualize and establish patch-clamp recordings
flexible, tapered pipette tip Fisher Scientific 02-707-169 flexible tips enable insertion into recording electrode to dispense extracellular solution at the tip
FluoroDish World Precision Instruments Inc. FD3510-100 cover glass bottomed dish recording dish
KimWipe KimTech 34155 task wipe used for wicking away excess fluid from larvae
Kwik-Gard World Precision Instruments Inc. 710172 self-mixing sylgard elastomer
MATLAB MathWorks R2020b command line software for preprocessing data
microelectrode amplifier Axon Instruments, Molecular Devices MultiClamp 700B patch clamp amplifier for dual channel recordings
microforge Narishige MF-830 microforge to polish recording electrode
micromanipulator control unit Siskiyou MC1000-eR/T 4-axis dial coordinator for controlling micromanipulator
micropipette puller Sutter Instrument Company Flaming/Brown P-97 for pulling capillary glass into recording electrodes
microscope control unit Siskiyou MC1000e positions the microscope around the fixed stage and preparation
motorized micromanipulator Siskiyou MX7600 positions the headstage and attached recording electrode for patch-clamp recording
MultiClamp Commander Molecular Devices 2.2.2 downloadable from Axon MultiClamp 700B Commander download page
optical air table Newport Corporation VH3036W-OPT breadboard isolation table to float microscope and minimize vibrations during recordings
pCLAMP Molecular Devices 10.7.0 downloadable from Axon pCLAMP 10 Electrophysiology Data Acquisition & Analysis Software Download page
permanent ink marker Sharpie order from amazon.com for marking the leading edge side of the VR electrode to ensure proper orientation when inserting into pipette holder
petri-dish Falcon 35-3001 used to immerse larvae in paralytic
pipette holder Molecular Devices 1-HL-U hold recording electrode and connect to the headstage
pneumatic transducer Fluke Biomedical Instruments DPM1B for controlling recording electrode internal pressure
potassium hydroxide Sigma-Aldrich 221473-25G etchant for etching dissection pins
silicone tubing Tygon 14-169-1A tubing to connect pneumatic transducer to pipette holder
spike_detect supplemental coding file custom written MATLAB function necessary to run AffVR_preprocess.m
stereomicroscope Carl Zeiss Stemi 2000-C used to visualize pin tips and during preparation of larvae
straight edge razor blade Canopus order from amazon.com cuts the tungsten wire while making dissection pins
swimbout_detect supplemental coding file custom written MATLAB function necessary to run AffVR_preprocess.m
syringe Becton Dickinson Compoany 309602 filled with extracellular solution to inject into recording electrodes
transfer pipette Sigma-Aldrich Z135003-500EA single use, non-sterile pipette for transfering larvae
tricaine methanesulfonate Syndel 12854 pharmaceutical aneasthetic used to euthanize larvae with high dosage.
tungsten wire World Precision Instruments Inc. 715500 0.002 inch, 50.8 μm diameter; used to make dissection pins
vacuum filtration unit Sigma-Aldrich SCGVU11RE single use, sterile, vacuum filtration units used to sterilize extracellular solution used for electrophysiology electrode ringer
voltage-clamp current-clamp headstage Molecular Devices CV-7B supplied with MultiClamp 700B amplifier used as left and right headstages
α-bungarotoxin ThermoFisher B1601 for immobilizing the larvae prior to recording

Referenzen

  1. Trapani, J. G., Nicolson, T. Mechanism of spontaneous activity in afferent neurons of the zebrafish lateral-line organ. The Journal of Neuroscience. 31 (5), 1614-1623 (2011).
  2. Haehnel-Taguchi, M., Akanyeti, O., Liao, J. C. Afferent and motorneuron activity in response to single neuromast stimulation in the posterior lateral line of larval zebrafish. Journal of Neurophysiology. 112 (6), 1329-1339 (2014).
  3. Levi, R., Akanyeti, O., Ballo, A., Liao, J. C. Frequency response properties of primary afferent neurons in the posterior lateral line system of larval zebrafish. Journal of Neurophysiology. 113 (2), 657-668 (2015).
  4. Harris, G. G., Fishkopf, L. S., Flock, A. Receptor potentials from hair cells of the lateral line. Science. 167 (3914), 76-79 (1970).
  5. Dow, E., Jacobo, A., Hossain, S., Siletti, K., Hudspeth, A. J. Connectomics of the zebrafish’s lateral line neuromast reveals wiring and miswiring in a simple microcircuit. eLife. 7, 33988 (2018).
  6. Obholzer, N., et al. Vesicular glutamate transporter 3 is required for synaptic transmission in zebrafish hair cells. The Journal of Neuroscience. 28 (9), 2110-2118 (2008).
  7. Keen, E. C., Hudspeth, A. J. Transfer characteristics of the hair cell’s afferent synapse. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (14), 5537-5542 (2006).
  8. Li, G., Keen, E., Andor-Ardó, D., Hudspeth, A. J., von Gersdorff, H. The unitary event underlying multiquantal EPSCs at a hair cell’s ribbon synapse. The Journal of Neuroscience. 29 (23), 7558-7568 (2009).
  9. Manley, G. A., Robertson, D. Analysis of spontaneous activity of auditory neurons in the spiral ganglion of the guinea-pig cochlea. The Journal of Physiology. 258 (2), 323-336 (1976).
  10. Kiang, N. Y. S., Watanabe, T., Thomas, E., Clark, L. . Discharge patterns of single fibers in the cat’s auditory nerve. , (1965).
  11. Corey, D. P., Hudspeth, A. J. Ionic basis of the receptor potential in a vertebrate hair cell. Nature. 281 (5733), 675-677 (1979).
  12. Trapani, J. G., Nicolson, T. Physiological recordings from zebrafish lateral-line hair cells and afferent neurons. Methods in Cell Biology. 100, 219-231 (2010).
  13. Reinig, S., Driever, W., Arrenberg, A. B. The descending diencephalic dopamine system is tuned to sensory stimuli. Current Biology. 27 (3), 318-333 (2017).
  14. Zhang, Q., et al. Synaptically silent sensory hair cells in zebrafish are recruited after damage. Nature Communications. 9 (1), 1388 (2018).
  15. Pichler, P., Lagnado, L. Motor behavior selectively inhibits hair cells activated forward motion in the lateral line of zebrafish. Current Biology. 30 (1), 150-157 (2020).
  16. Olszewski, J., Haehnel, M., Taguchi, M., Liao, J. C. Zebrafish larvae exhibit rheotaxis and can escape a continuous suction source using their lateral line. PloS One. 7 (5), 36661 (2012).
  17. Suli, A., Watson, G. M., Rubel, E. W., Raible, D. W. Rheotaxis in larval zebrafish is mediated by lateral line mechanosensory hair cells. PLoS One. 7 (2), 29727 (2012).
  18. Oteiza, P., Odstcil, I., Lauder, G., Portugues, R., Engert, F. A novel mechanism for mechanosensory-based rheotaxis in larval zebrafish. Nature. 547 (7664), 445-448 (2017).
  19. McHenry, M. J., Feitl, K. E., Strother, J. A. Larval zebrafish rapidly sense the water flow of a predator’s strike. Biology Letters. 5 (4), 477-479 (2009).
  20. Stewart, W. J., Cardenas, G. S., McHenry, M. J. Zebrafish larvae evade predators by sensing water flow. The Journal of Experimental Biology. 216, 388-398 (2013).
  21. Mekdara, P. J., Schwalbe, M. A. B., Coughlin, L. L., Tytell, E. D. The effects of lateral line ablation and regeneration in schooling giant danios. The Journal of Experimental Biology. 221, 175166 (2018).
  22. Palmer, L. M., Giuffrida, B. A., Mensinger, A. F. Neural recordings from the lateral line in free-swimming toadfish, Opsanus tau. The Biological Bulletin. 205 (2), 216-218 (2003).
  23. Ayali, A., Gelman, S., Tytell, E. D., Cohen, A. H. Lateral line activity during undulatory body motions suggests a feedback link in closed-loop control of sea lamprey swimming. Canadian Journal of Zoology. 87 (8), 671-683 (2009).
  24. Mensinger, A. F., Van Wert, J. C., Rogers, L. S. Lateral line sensitivity in free-swimming toad fish Opsanus tau. The Journal of Experimental Biology. 222, 190587 (2019).
  25. Montgomery, J., Bodznick, D., Halstead, M. Hindbrain signal processing in the lateral line system of the dwarf scorpionfish Scopeana papillosus. The Journal of Experimental Biology. 199, 893-899 (1996).
  26. Montgomery, J. C., Bodznick, D. An adaptive filter that cancels self-induced noise in the electrosensory and lateral line mechanosensory systems of fish. Neuroscience Letters. 174 (2), 145-148 (1994).
  27. Palmer, L. M., Deffenbaugh, M., Mensinger, A. F. Sensitivity of the anterior lateral line to natural stimuli in the oyster toadfish, Opsanus tau (Linnaeus). The Journal of Experimental Biology. 208, 3441-3450 (2005).
  28. Russell, I. J., Roberts, B. L. Inhibition of spontaneous lateral-line activity of efferent nerve stimulation. The Journal of Experimental Biology. 57, 77-82 (1972).
  29. Lunsford, E. T., Skandalis, D. A., Liao, J. C. Efferent modulation of spontaneous lateral line activity during and after zebrafish motor commands. Journal of Neurophysiology. 122 (6), 2438-2448 (2019).
  30. Russell, I. J. The pharmacology of efferent synapses in the lateral-line system of Xenopus laevis. The Journal of Experimental Biology. 54 (3), 643-659 (1971).
  31. Roberts, B. L., Russell, I. J. The activity of lateral-line efferent neurons in stationary and swimming dogfish. The Journal of Experimental Biology. 57 (2), 435-448 (1972).
  32. Flock, A., Russell, I. J. The post-synaptic action of efferent fibres in the lateral line organ of the burbot Lota lota. The Journal of Physiology. 235 (3), 591-605 (1973).
  33. Montgomery, J. C. Noise cancellation in the electrosensory system of the thornback ray; common mode rejection of input produced by the animal’s own ventilatory movement. Journal of Comparative Physiology. 155, 103-111 (1984).
  34. Tricas, T. C., Highstein, S. M. Action of the octavolateralis efferent system upon the lateral line of free-swimming toadfish, Opsanus tau. Journal of Comparative Physiology. 169 (1), 25-37 (1991).
  35. Weeg, M. S., Land, B. R., Bass, A. H. Vocal pathways modulate efferent neurons to the inner ear and lateral line. The Journal of Neuroscience. 25 (25), 5967-5974 (2005).
  36. Elgoyhen, A. B., Johnson, D. S., Boulter, J., Vetter, D. E., Heinemann, S. α9: an acetylcholine receptor with novel pharmacological properties expressed in rat cochlear hair cells. Cell. 79 (4), 705-715 (1994).
  37. Masino, M. A., Fetcho, J. R. Fictive swimming motor patterns in wild type and mutant larval zebrafish. Journal of Neurophysiology. 93 (6), 3177-3188 (2005).
  38. Hentschke, H. abfload. 1.4.0.0. MATLAB Central File Exchange. , (2020).
  39. Harris, G. G., Milne, D. C. Input-output characteristics of the lateral-line sense organs of Xenopus laevis. The Journal of the Acoustical Society of America. 40 (1), 32-42 (1966).
  40. Liao, J. C., Haehnel, M. Physiology of afferent neurons in larval zebrafish provides a functional framework for lateral line somatotopy. Journal of Neurophysiology. 107 (10), 2615-2623 (2012).
  41. Song, S., et al. Mathematical modeling and analyses of interspike-intervals of spontaneous activity in afferent neurons of the zebrafish lateral line. Nature Science Reports. 8, 14851 (2018).
  42. Liao, J. C., Fetcho, J. R. Shared versus specialized glycinergic spinal interneurons in axial motor circuits of larval zebrafish. The Journal of Neuroscience. 28 (48), 12982-12992 (2008).
  43. von Holst, E., Mittelstaedt, H. The principle of reafference: interactions between the central nervous system and the peripheral organs. Die Naturwissenschften. 37, 463 (1950).
  44. Crapse, T. B., Sommer, M. A. Corollary discharge across the animal kingdom. Nature Reviews. Neuroscience. 9 (8), 587-600 (2008).
  45. Brichta, A. M., Goldberg, J. M. Responses to efferent activation and excitatory response-intensity relations of turtle posterior-crista afferents. Journal of Neurophysiology. 83 (3), 1224-1242 (2000).
check_url/de/62233?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Lunsford, E. T., Liao, J. C. Activity of Posterior Lateral Line Afferent Neurons during Swimming in Zebrafish. J. Vis. Exp. (168), e62233, doi:10.3791/62233 (2021).

View Video