Summary

Activité des neurones afférents de la ligne latérale postérieure pendant la baignade chez le poisson zèbre

Published: February 10, 2021
doi:

Summary

Nous décrivons un protocole pour surveiller des changements de l’activité afférente de neurone pendant des commandes de moteur dans un système de cellules de cheveux vertébré modèle.

Abstract

Les systèmes sensoriels rassemblent des indices essentiels pour diriger le comportement, mais les animaux doivent déchiffrer quelles informations sont biologiquement pertinentes. La locomotion génère des indices reafferents que les animaux doivent démêler des indices sensoriels pertinents de l’environnement environnant. Par exemple, lorsqu’un poisson nage, le flux généré par les ondulations corporelles est détecté par les neuromastes mécanoréceptifs, comprenant des cellules ciliées, qui composent le système de la ligne latérale. Les cellules ciliées transmettent ensuite des informations de mouvement fluide du capteur au cerveau via les neurones afférents sensoriels. Simultanément, la décharge corollaire de la commande motrice est relayée aux cellules ciliées pour empêcher la surcharge sensorielle. La prise en compte de l’effet inhibiteur des signaux moteurs prédictifs pendant la locomotion est donc critique lors de l’évaluation de la sensibilité du système de ligne latérale. Nous avons développé une approche électrophysiologique in vivo pour surveiller simultanément le neurone afférent de ligne latérale postérieure et l’activité ventrale de racine de moteur dans les larves de poisson zèbre (4-7 jours après la fertilisation) qui peuvent durer plusieurs heures. Les enregistrements extracellulaires des neurones afférents sont réalisés utilisant la technique lâche de serrage de correction, qui peut détecter l’activité des neurones simples ou multiples. Les enregistrements de racines ventrales sont effectués à travers la peau avec des électrodes en verre pour détecter l’activité des motoneurones. Notre protocole expérimental offre le potentiel de surveiller les changements endogènes ou évoqués dans l’entrée sensorielle à travers les comportements moteurs chez un vertébré intact et se comportant.

Introduction

Les neurones afférents des systèmes mécanosensoires transmettent des informations des cellules ciliées au cerveau pendant l’audition et l’équilibre. L’électrophysiologie peut révéler la sensibilité des neurones afférents grâce à des enregistrements directs. Alors que le patchage de cellules entières à partir de cellules ciliées peut être difficile, l’enregistrement à partir de neurones afférents en aval est plus facile et permet d’évaluer les potentiels d’action en réponse à des stimulations contrôlées1,2,3. La stimulation des cellules ciliées conduit à leur déviation, ce qui modifie les structures mécanosensoires, déclenchant ainsi une augmentation des potentiels d’action (pointes) dans les neurones afférents4,5,6. En l’absence de stimuli externes, les neurones afférents piquent également spontanément en raison d’une fuite de glutamate des cellules ciliées vers les bornes post-synaptiques afférentes7,8,et il a été démontré qu’ils contribuent au maintien de la sensibilité9,10. L’enregistrement de l’activité afférente par pince patch permet d’observer la sensibilité des cellules ciliés et la dynamique du signal qui ne sont pas possibles en utilisant des techniques à résolution temporelle plus faible, telles que dans la microphonie11, 12 ou l’imageriefonctionnelle du calcium13,14,15. Le protocole suivant permettra à l’enregistrement de l’activité afférente en même temps que les commandes motrices de révéler des changements instantanés de la sensibilité des cellules ciliés.

Les poissons zèbres(Danio rerio)utilisent des cellules ciliées contenues dans les neuromastes qui composent le système de ligne latérale pour détecter le mouvement de l’eau par rapport à leur corps, ce qui se traduit par des signaux neuronaux essentiels à la navigation16,17,18,l’évitement des prédateurs, la capture des proies19,20et la scolarisation21. L’écoulement de l’eau peut également être auto-généré par les mouvements dela natation 22,23,24,de la respiration22,25,26et de l’alimentation27. Ces comportements comprennent des mouvements répétitifs qui peuvent fatiguer les cellules ciliées et altérer la détection. Par conséquent, il est essentiel que le système de ligne latérale différencie les stimuli d’écoulement externes (exafferents) et auto-générés (reafferent). Un rejet corollaire atténue les signaux d’écoulement auto-générés pendant la locomotion chez le poisson zèbre. Ce signal moteur prédictif inhibiteur est relayé via les neurones descendants vers les récepteurs sensoriels pour modifier l’entrée ou interrompre le traitement de la rétroaction reafferente28,29. Les travaux fondateurs contribuant à notre compréhension précoce de ce système d’alimentation se sont appuyés sur des préparations in vitro où la connectivité et l’activité endogène du circuit neuronal n’ont pas été maintenues28,30, 31,32,33,34,35. Ce protocole décrit une approche à la préservation d’un circuit neural intact où la dynamique endogène de rétroaction est maintenue de ce fait permettant une meilleure compréhension de la décharge corollaire in vivo.

Le protocole décrit ici décrit comment surveiller le neurone afférent de ligne latérale postérieure et l’activité de neurone moteur simultanément dans le poisson zèbre larvaire. La caractérisation de la dynamique du signal afférent avant, pendant et après les commandes motrices fournit des informations sur la rétroaction endogène en temps réel du système nerveux central qui module la sensibilité des cellules ciliées pendant la locomotion. Ce protocole décrit les matériaux qui devront être préparés avant les expériences, puis décrit comment paralyser et préparer les larves de poissons zèbres. Le protocole décrira comment établir un enregistrement lâche stable de correction des neurones afférents et des enregistrements extracellulaires de racine ventrale (VR) des neurones moteurs. Les données représentatives qui peuvent être obtenues utilisant ce protocole sont présentées à partir d’un individu d’exemple et l’analyse a été exécutée sur de multiples répétitions du protocole expérimental. Le prétraitement des données est effectué à l’aide de scripts écrits personnalisés dans MATLAB. Dans l’ensemble, ce paradigme expérimental in vivo est sur le point de fournir une meilleure compréhension de la rétroaction sensorielle lors de la locomotion dans un système modèle de cellules ciliées vertébrées.

Protocol

Tous les soins et expériences sur les animaux ont été effectués conformément aux protocoles approuvés par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de Floride. 1. Préparation de matériaux pour les enregistrements électrophysiologiques Faites un plat d’enregistrement à fond d’élastomère en silicone. Distribuez une fine couche de composants d’élastomère de silicone auto-mélangeants (p. ex. Sylgard) dans un plat de …

Representative Results

Après que les larves de poisson zèbre soient correctement immobilisées et que le ganglion afférent de ligne latérale postérieure et l’enregistrement de VR soient réalisés, l’activité dans les neurones afférents et les motoneurones peut être mesurée simultanément. Les canaux d’enregistrement sont affichés à l’aide de protocoles d’enregistrement sans espace (étape 1.4) pour une surveillance continue de l’activité afférente et de la RV. En temps réel, on peut observer une diminution du taux de…

Discussion

Le protocole expérimental décrit fournit le potentiel de surveiller les changements endogènes dans l’entrée sensorielle à travers les comportements moteurs dans un vertébré intact et se comportant. Plus précisément, il détaille une approche in vivo pour effectuer des enregistrements extracellulaires simultanés de neurones afférents à la ligne latérale et de racines motrices ventrales chez les larves de poissons zèbres. L’activité afférente spontanée a été précédemment caractérisée chez le pois…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions J.C.L. du soutien du National Institute of Health (DC010809), de la National Science Foundation (IOS1257150, 1856237) et du Whitney Laboratory for Marine Biosciences. Nous tenons à remercier les membres passés et présents du Liao Lab pour leurs discussions stimulantes.

Materials

100 mL beaker PYREX 1000 resceptacle for etchant
10x water immersion objective Olympus UMPLFLN10xW low magnification for positioning larvae and recording electrode
40x water immersion objective Olympus LUMPLFLN40XW higher magnification for position electrode tip and establishing patch-clamp
abfload.m supplemental coding file custom written MATLAB script for converting raw electrophysiology recordings to .mat files
AffVR_preprocess.m supplemental coding file custom written MATLAB script for preprocessing recording data
BNC coaxial cables ThorLabs 2249-C-12 connecting amplifier and digitizer channels; require 4
borosilicate glass capillaries w/ filament Warner Instruments G150F-3 inner diameter: 0.86, outer diameter: 1.50; capillary glass used to form recording electrodes
burst_detect supplemental coding file custom written MATLAB function necessary to run AffVR_preprocess.m
computer N/A N/A any computer should work
DC Power Supply Tenma 72-420 used for electrically etching dissection pins
electrophysiology digitizer Axon Instruments, Molecular Devices Axon DigiData 1440A enables acquisition of patch-clamp data
filament Sutter Instrument Company FB255B 2.5 mm box filament used in micropipette puller
fine forceps Fine Science Tools Dumont #5 (0.05 x 0.02 mm) Item No. 11295-10 used to manipulate larvae and insert pins
fixed stage DIC microscope Olympus BX51WI microscope used to visualize and establish patch-clamp recordings
flexible, tapered pipette tip Fisher Scientific 02-707-169 flexible tips enable insertion into recording electrode to dispense extracellular solution at the tip
FluoroDish World Precision Instruments Inc. FD3510-100 cover glass bottomed dish recording dish
KimWipe KimTech 34155 task wipe used for wicking away excess fluid from larvae
Kwik-Gard World Precision Instruments Inc. 710172 self-mixing sylgard elastomer
MATLAB MathWorks R2020b command line software for preprocessing data
microelectrode amplifier Axon Instruments, Molecular Devices MultiClamp 700B patch clamp amplifier for dual channel recordings
microforge Narishige MF-830 microforge to polish recording electrode
micromanipulator control unit Siskiyou MC1000-eR/T 4-axis dial coordinator for controlling micromanipulator
micropipette puller Sutter Instrument Company Flaming/Brown P-97 for pulling capillary glass into recording electrodes
microscope control unit Siskiyou MC1000e positions the microscope around the fixed stage and preparation
motorized micromanipulator Siskiyou MX7600 positions the headstage and attached recording electrode for patch-clamp recording
MultiClamp Commander Molecular Devices 2.2.2 downloadable from Axon MultiClamp 700B Commander download page
optical air table Newport Corporation VH3036W-OPT breadboard isolation table to float microscope and minimize vibrations during recordings
pCLAMP Molecular Devices 10.7.0 downloadable from Axon pCLAMP 10 Electrophysiology Data Acquisition & Analysis Software Download page
permanent ink marker Sharpie order from amazon.com for marking the leading edge side of the VR electrode to ensure proper orientation when inserting into pipette holder
petri-dish Falcon 35-3001 used to immerse larvae in paralytic
pipette holder Molecular Devices 1-HL-U hold recording electrode and connect to the headstage
pneumatic transducer Fluke Biomedical Instruments DPM1B for controlling recording electrode internal pressure
potassium hydroxide Sigma-Aldrich 221473-25G etchant for etching dissection pins
silicone tubing Tygon 14-169-1A tubing to connect pneumatic transducer to pipette holder
spike_detect supplemental coding file custom written MATLAB function necessary to run AffVR_preprocess.m
stereomicroscope Carl Zeiss Stemi 2000-C used to visualize pin tips and during preparation of larvae
straight edge razor blade Canopus order from amazon.com cuts the tungsten wire while making dissection pins
swimbout_detect supplemental coding file custom written MATLAB function necessary to run AffVR_preprocess.m
syringe Becton Dickinson Compoany 309602 filled with extracellular solution to inject into recording electrodes
transfer pipette Sigma-Aldrich Z135003-500EA single use, non-sterile pipette for transfering larvae
tricaine methanesulfonate Syndel 12854 pharmaceutical aneasthetic used to euthanize larvae with high dosage.
tungsten wire World Precision Instruments Inc. 715500 0.002 inch, 50.8 μm diameter; used to make dissection pins
vacuum filtration unit Sigma-Aldrich SCGVU11RE single use, sterile, vacuum filtration units used to sterilize extracellular solution used for electrophysiology electrode ringer
voltage-clamp current-clamp headstage Molecular Devices CV-7B supplied with MultiClamp 700B amplifier used as left and right headstages
α-bungarotoxin ThermoFisher B1601 for immobilizing the larvae prior to recording

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Diesen Artikel zitieren
Lunsford, E. T., Liao, J. C. Activity of Posterior Lateral Line Afferent Neurons during Swimming in Zebrafish. J. Vis. Exp. (168), e62233, doi:10.3791/62233 (2021).

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