提出了一个协议,允许使用微计算断层扫描在任何发展阶段对完整的 果蝇黑色素加斯特 进行可视化。
生物医学成像工具允许在空间尺度上研究分子机制,从基因到生物体。 嗜血杆菌黑色素加斯特是 一种功能良好的模型生物体,它受益于利用光和电子显微镜来了解细胞和组织水平下的基因功能。成像平台的应用,使了解基因功能的水平,在整个完整的生物体将进一步提高我们对遗传机制的知识。在这里,提出了一个完整的动物成像方法,概述了使用微计算断层扫描(μ-CT)在任何发育阶段可视化 果蝇 所需的步骤。μ CT 的优势包括商用仪器和最短的动手时间,无需组织解剖或清除方法即可以微米级分辨率生成准确的 3D 信息。与加速图像分析和三维渲染的软件配对,可以对任何组织或器官系统进行详细的形态分析,以便更好地了解描述性和假设性测试研究的发展机制、生理学和解剖学。通过利用电子显微镜、光显微镜和μ-CT的成像工作流程,可以对基因功能进行彻底的评估,从而进一步促进这种强大的模型生物体的效用。
成像方法,允许详细调查物体的内部结构,而不破坏其整体的3D结构已证明广泛有利于许多不同的学科,包括物理,工程,材料科学,考古学,古生物学,地质学,和生物学1,2,3,4,5,6,7,8,9.在这些无损成像方法中,基于 X 射线的平台特别有用,因为与可见光波相比,高能 X 射线能够穿透许多不同的样品类型和材料,且散射最小。因此,计算机断层扫描(CT)、微计算断层扫描(μ-CT)、纳米计算断层扫描(Nano-CT)和同步质显微造已成为X射线成像样品的主要技术,从米到微米不等,毫米到亚微米分辨率能力为10、11、12、13、14。
虽然这些平台的设计、X 射线几何和组件不同,以平衡样本大小和分辨率,但它们都依赖于相同的图像捕获基本原则:通过物体传播并被探测器捕获的 X 射线源。X 射线束穿过物体内不同密度时,差分衰减会生成图像对比度。3D 数据是通过旋转样品或探测器获得的,收集一系列 2D 投影图像,然后使用算法重建成包含分辨率在 x,y,z15中的同位素的 3D 信息的图光。对于许多使用锥形光束 X 射线几何形状投影被成像对象的台式μ-CT 扫描仪,Feldkamp 算法用于以最小的错误16准确重建对象。
给定平台的分辨率主要由系统参数决定,如 X 射线束的大小(点大小)、扫描仪几何形状(从物体到 X 射线源的距离)、探测器上的像素大小以及使用的重建算法。其他因素,如扫描仪振动,X射线束波动,样品运动,材料类型或化学污渍用于可视化对象也可以显著影响空间分辨率下的实际世界成像调理15。
在生物医学应用方面,CT和μ-CT在促进我们对解剖学、生理学、发育和疾病机制的理解方面发挥了关键作用,成为人类患者诊断的工具,也是模型生物体17、18的临床前成像平台。例如,小鼠国际表型联盟,其目标是确定小鼠基因组中每个基因的功能,利用μ-CT作为其表型管道19的一部分。他们的研究结果对于了解参与发育和疾病过程的基因至关重要,同时也作为小鼠解剖和发育的地图集。其他模型生物,如斑马鱼和大鼠,也完全接受使用μ-CT对一些基因突变体17,21,22,23进行整个动物表型。
将整个动物成像与模型生物体相结合的优点是可以充分探索对特定生物过程基因功能的机械理解。这是可能的,因为模型生物体中具有良好的特征基因组和许多遗传工具,能够在不同的发育时间点、特定组织、单个细胞,甚至亚细胞细胞器精确操作基因功能。这些包括二进制表达系统,如UAS/GAL4系统(及其许多衍生物)、CRISPR/Cas9和RNAi 24、25、26。当这些遗传工具与由电子显微镜、光显微镜(荧光和非荧光)以及整个动物成像(如μ-CT)组成的强大成像管道配合使用时,可以彻底评估分子、细胞、组织、器官和整个生物体,从而更深入地了解基因功能。
本协议侧重于在非哺乳动物模型生物中使用μ-CT,其无数的遗传工具帮助阐明了许多分子机制26,27。它采用了以前在非模型昆虫1,28,29,30,31,32的协议,并建立在德罗索菲拉以前的μ-CT研究的基础上,建立一个标准化的协议,用于这种动物33,34,35,36,37,38,39 ,40,41.概述了使用商用扫描仪成功制备苍蝇μ CT 数据集的样品准备、成像和分析的步骤。有了这个协议,飞行的所有发育阶段都可以高分辨率地用于描述性和假设性测试研究,包括分类学、解剖学、发育、生理学和疾病27。该协议也将可用于成像几乎任何昆虫,甚至非活材料,需要化学染色图像对比,以提高可视化μ-CT。
在所有发育阶段,对完整的果蝇黑色素加斯特进行可视化仍然是一项挑战,这主要是因为光显微镜与这种动物中发现的厚重的色素角质层不相容。而其他完整的动物成像方法,如磁共振成像(MRI)、光学相干断层扫描(OCT)和超显微镜结合组织清除,在苍蝇50、51、52、53、54、μ-CT中得到了成功应用,具有许多优点,使其成为整个动物成像的理想选择.X 射线很容易穿透色素的甲骨文,其小波长允许亚微米成像。标签需要对广泛可用的化学品进行最低限度的投资,并且没有专门的板凳技能。μ-CT扫描仪也市售,其成本可与光显微镜平台相媲美,同时对更广泛的学科(地质学、古生物学、工程学等)更具吸引力,这些学科也可以从该机构的可用性中获益。同步加速器X射线源也可用于固定昆虫和活昆虫31、55、56的高分辨率μ-CT成像,但比商用台式扫描仪更难以获得。
该协议为获取苍蝇成人、幼虫、幼虫和细胞化胚胎的μ-CT图像提供了一种有效的方法。请注意,对于上述许多步骤,还可应用替代方法为成像样品准备样品。其他研究已提供昆虫使用的不同固定、标记和干燥步骤的详细比较,并鼓励有兴趣采用这种技术的人评估每种方法的优点1、4、13、29、30、57。虽然此协议相对简单,但提出了一些有用的建议。
首先,在破坏完整标本的甲状层时应小心谨慎,这样基础软组织就不会受到显著干扰。重要的是,让幼虫和早期幼崽阶段在Bouin的溶液中经过2个小时的固定,然后再戳。这将加强组织,并限制淋巴的数量,将渗出的甲骨文孔,这可以改变器官结构。如果感兴趣的结构位于此处,则成人的个体身体部分(头部、胸部和腹部)可以分开。建议使用手术刀干净地切开这些片段,而不是用钳子将其拉开,这可能会破坏肠道或中枢神经系统的 3D 结构,例如。至于时间安排,成年人一般只需要16小时。完全固定, 而幼虫和幼虫阶段需要 24 小时。此外,如果碘或 PTA 染色看起来不均匀,则样品可以放回溶液中,以孵育更长的时间,直到实现染色。最后,水合样品不应放置在4°C,因为这似乎会在室温升高后诱发体腔内的气泡。
其次,样品安装会因仪器、阶段类型以及样品是否需要保持水分或已干点而异。如果水合,请确保样品不会泄漏,并可能破坏扫描仪。将样品安装在移液器尖端内时,请务必用钝器轻轻推动,直到标本遇到轻微阻力且无法移动。推力过大会导致甲状层变形和潜在的结构缺陷。此外,请确保样品在支架中尽可能靠近旋转轴。任何摆动都会增加扫描时间,因为视野较大,并且会降低重建后最终图光检查的分辨率。
第三,用于获取投影图像的扫描仪设置也会因仪器而异。为了最大限度地提高扫描仪的分辨率,X 射线束点尺寸应尽可能小(5-10 μm)。这可以通过平衡 X 射线电压和电流设置来实现,从而使总功率为 3-4 W。通过这些设置和相机上的适当曝光时间,样品可以实现适当的 X 射线束衰减和最佳图像对比度。物体和 X 射线源之间使用铝或铜滤光片可用于微调最佳 X 射线能量设置,以实现最佳图像对比度,或使光束衰减到足以使用更高功率的源。至于图像分辨率,这将取决于许多不同的变量,包括污渍类型、投影图像数量、图像像素大小、相机位置、示例移动、扫描仪振动和重建参数。包含已知尺寸标记的条形模式幻象 (QRM GmbH) 可以帮助评估给定扫描仪和相机设置的空间分辨率。
也值得评估成像临界点干燥或水合样品的优点。Sombke等人对两种方法进行了比较评估,发现关键点干燥在涉及节肢动物30的μ CT应用方面具有优越性。然而,水合样品的好处是,动物受到较少的化学和机械暴露,这可能导致定量和形态文物。这也往往比CPD更好地保存细腻的组织。然而,水合样品的保质期要短得多,并且应在固定后不迟于一个月进行成像,因为此时组织退化和图像质量下降变得明显。此外,水合样品的分辨率将略低于临界点干燥样品,因为 X 射线还必须穿透塑料移液器尖端和周围的液体(水或缓冲器)。临界点干燥样品可以保存更长的时间,尤其是当保存在干燥石上时。它们也可以直接放置在X射线束路径,只需将翅膀或腿粘在昆虫针上,并将其放置在舞台夹头中,简化安装过程。然而,这些样品的广泛乙醇脱水会导致组织收缩和微妙的组织结构的损失,这就是为什么执行一系列增加的EtOH浓度,以尽量减少这些影响是很重要的。然而,应该指出,所有形式的化学处理,包括副甲醛固定,甚至碘染色都可能导致组织收缩58,59。虽然这两种方法都不会提供活飞中”实际器官大小”的测量,但形态测量在比较突变动物和野生类型动物时仍然有效,只要两组样品的固定、染色和干燥步骤相同,最好是平行进行的。
最后,μ-CT为德罗索菲拉33、34、35、36、37、38、39、40、41提供了有用的全动物成像工具。许多其他研究已经展示了这项技术的力量,了解昆虫分类学,生态学,生理学,发育和解剖学的各个方面,可以帮助通知未来的研究苍蝇1,28,30,31,32,55,56,57 .结合已经广泛应用于这种生物体的遗传和光显微镜工具,μ-CT可以将自己定位在实验管道中,从而在基因型和表型之间有更深入的理解。
The authors have nothing to disclose.
没有纳赛尔·鲁桑的支持,这一切都是不可能的。我要感谢美国国家卫生研究院鼠标成像设施的道格·莫里斯、丹妮尔·多纳休和布伦达·克伦伯格以及微光子的本·阿奇的培训和有益的讨论。我还感谢蔡司的曼苏雷 ·诺鲁齐 · 拉德扫描了 Xradia 520 Versa 上的腹部样本。劳伦·史密斯、萨曼莎·史密斯和瑞秋·吴也帮助扫描。物体研究系统的迈克·马什为萤火把提供了技术支持。我还感谢来自国家心肺和血液研究所(1K22HL137902-01)和怀俄明大学的启动基金的支持。我还要感谢匿名评论者提出的有益建议和意见。
100% Ethanol | For critical point drying | ||
Bouin's Solution | Sigma-Aldrich | HT10132 | For animal fixation |
Critical Point Dryer | Dries samples using the critical point method; multiple options available (Balzers CPD 020 or Leica EMCPD300) | ||
Dragonfly Software | Object Research Systems | For visualization and segmentation of micro-CT datasets; https://www.theobjects.com/dragonfly/index.html | |
Heat Block | For microfuge tubes | ||
Image Analysis Workstation | Should contain sufficient RAM and quality graphics card for 3D rendering | ||
Iodine Solution (I2KI) | Fisher Scientific | SI86-1 | For staining |
Microcomputed Tomography Scanner | Bruker | Skyscan 1172 | Cone-beam X-Ray geometry; detector is a Hamamatsu 10 MP camera with 11.54 µm pixel size. |
Microcomputed Tomography Scanner Software | Bruker | For controling the scanner itself (e.g., performing flat field corrections, X-ray tube power, camera expsoure times, acquisition, etc.) | |
Minutien Pins | Fine Science Tools | 26002-15 | For poking hole in cuticle |
NRecon Image Reconstruction Software | Bruker | Used to reconstruct cross-section images from 2D projection images taken with cone-beam X-Ray geometry | |
P10 pipet tips | Genesee Scientific | 24-120 | Sample mounting |
Phosphate Buffered Saline | Resarch Products International | P32060-4000.0 | Dilute to 1X with water before use |
Phosphotungstic Acid Hydrate | Sigma-Aldrich | 79690-25g | For staining |
Pin Holder | Fine Science Tools | 26018-17 | For Minutien Pins |
Triton X-100 | Research Products International | 111036 | To remove waxy coating from adult flies (as 0.5% PBST) |
X-Ray Microscope | Zeiss | Xradia 520 Versa | Cone-beam X-Ray geometry featuring Fresnel zone plate objective lenses for Resoluton at a Distance (RaaD™) |