Summary

Neisseria meningitidis 유도만능줄기세포 유래 뇌내피세포의 감염

Published: July 14, 2020
doi:

Summary

여기에 설명된 프로토콜은 유도만능줄기세포 유래 뇌유사 내피세포의 분화, 감염을 위한 Neisseria meningitidis 준비 및 기타 분자 분석을 위한 샘플 수집의 주요 단계를 강조합니다.

Abstract

수막구균성 뇌수막염은 나이세리아 수막염(Neisseria meningitidis , 수막구균, Nm)이 고도로 전문화된 뇌 내피 세포(BEC)에 침투하여 중추신경계(CNS)에 접근할 수 있을 때 발생하는 생명을 위협하는 감염입니다. Nm은 인간 특이적 병원체이기 때문에 강력한 in vivo 모델 시스템이 없기 때문에 Nm과 BEC 간의 숙주-병원체 상호 작용에 대한 연구가 어려워지고 네이티브 BEC를 모방하는 인간 기반 모델이 필요합니다. BEC는 복잡한 밀착 접합부와 높은 경내피 전기 저항(TEER)을 특징으로 하는 말초 내피 세포와 비교할 때 더 단단한 장벽 특성을 가지고 있습니다. 그러나 1차 BEC 및 불멸화된 BEC와 같은 많은 in vitro 모델은 기본 신경 미세환경에서 제거된 후 장벽 특성이 부족하거나 빠르게 손실됩니다. 최근 인간 줄기세포 기술의 발전으로 유도만능줄기세포(iPSC)에서 뇌와 유사한 내피세포를 유도하는 방법이 개발되어 다른 체외 인간 모델과 비교할 때 BEC를 더 잘 표현할 수 있습니다. Nm-BEC 상호작용을 모델링하기 위해 iPSC 유래 BEC(iPSC-BEC)를 사용하면 BEC 장벽 특성을 가진 인간 세포를 사용할 수 있다는 이점이 있으며, 장벽 파괴, 선천성 면역 활성화 및 박테리아 상호작용을 검사하는 데 사용할 수 있습니다. 여기서는 분석을 위한 박테리아 준비, 감염 및 샘플 수집 외에도 iPSC에서 iPSC-BEC를 도출하는 방법을 보여줍니다.

Introduction

혈액-뇌 장벽(BBB)과 수막 혈액-CSF 장벽(mBCSFB)은 중추신경계(CNS)에서 순환을 분리하는 매우 단단한 세포 장벽이며 주로 고도로 전문화된 뇌 내피 세포(BEC)로 구성되어 있습니다1,2. BEC는 뇌 안팎의 영양소와 노폐물을 조절하고 많은 독소, 약물 및 병원균을 배제하여 적절한 뇌 항상성을 유지합니다 1,2. 세균성 뇌수막염은 혈액 매개 박테리아가 BEC에 의해 형성된 장벽과 상호 작용하고 이를 뚫고 들어가 염증을 일으킬 때 발생합니다. Neisseria meningitidis(Nm, 수막구균)는 건강한 사람의 10-10%의 비염을 집락화하는 그람 음성 박테리아이지만 경우에 따라 심각한 전신 질환을 유발할 수 있습니다3. 영향을 받은 개인에서 Nm은 자반증을 유발할 수 있는 혈류에 접근할 수 있을 뿐만 아니라 BEC를 관통하여 뇌수막염을 유발하는 중추신경계에 접근할 수 있다3. Nm은 전 세계적으로 세균성 뇌수막염의 주요 원인이며, 백신 접종 노력에도 불구하고 여전히 뇌수막염의 주요 원인이다4. 항생제 치료와 같은 현대 의학적 개입으로 이러한 질환은 생존할 수 있게 되었지만, 뇌수막염에 걸린 사람들은 종종 영구적인 신경학적 손상을 입게 된다 5,6.

이전 연구에서는 Nm-BEC 상호 작용에 기여하는 박테리아 요인 및 숙주 신호 전달을 확인했습니다 7,8,9,10,11. CD147과 같은 수용체뿐만 아니라 불투명도 단백질 Opc 및 type-IV pili와 같은 확인된 부착 및 침습은 다양한 BEC 모델에서 시험관 내에서 수행되었지만 이러한 모델에는 BBB 특성을 정의하는 많은 것이 부족합니다 7,9,11,12. Nm-BEC 상호 작용에 대한 완전한 이해는 부분적으로 in vivo 모델을 활용할 수 없고, 불완전한 백신 보호 및 in vitro에서 강력한 인간 BEC 모델의 부족으로 인해 여전히 어렵습니다.

시험관 내 hBEC를 모델링하는 것은 BEC의 고유한 특성으로 인해 어려운 일이었습니다. 말초 내피 세포와 비교하여, BEC는 복잡한 밀착 접합부로 인한 높은 경내피 전기 저항(trans-endothelial electrical resistance, TEER)과 같은 장벽 특성을 강화하는 다수의 표현형을 가지고 있다12. 일단 뇌 미세환경으로부터 제거되면, BEC는 그들의 장벽 특성을 빠르게 상실하여 약한 장벽만을 형성하는 1차 또는 불멸화된 시험관 내 모델의 유용성을 제한한다12,13. Nm 감염의 인체 특이성, 강력한 in vivo 모델의 부족, in vitro에서 인간 BEC를 모델링하는 데 어려움이 결합되어 Nm과 BEC 간의 복잡한 숙주-병원체 상호 작용을 이해하기 위한 더 나은 모델이 필요합니다. 최근에는 모델 인간 유도만능줄기세포(iPSC) 기술을 사용하여 생체 내 BEC를 더 잘 모방하는 iPSC로부터 BEC 유사 세포를 유도했습니다 12,13,14,15. iPSC-BEC는 인간에서 유래하고, 쉽게 확장할 수 있으며, 1차 또는 불멸 표현형에 비해 예상되는 BEC 표현형을 가지고 있습니다12,13,14,15. 또한, iPSC-BEC가 숙주-병원체 상호작용, 헌팅턴병, 앨런-허른던-더들리 증후군을 유발하는 MCT8 결핍과 같은 중추신경계의 다양한 질병을 모델링하는 데 유용하다는 것을 입증했습니다 16,17,18,19,20,21. 여기서는 재생 가능한 iPSC 공급원에서 iPSC-BEC를 유도하는 방법과 Nm에 의한 iPSC-BEC의 감염이 선천성 면역 반응의 활성화를 유도하는 방법을 보여줍니다. 우리는 이 모델이 다른 in vitro 모델에서 재현할 수 없는 숙주-병원체 상호작용을 조사하는 데 유용하며 Nm과 같은 인간 특이적 병원체와의 상호작용을 검사할 때 특히 유용하다고 믿습니다.

Protocol

참고: 모든 배지/시약 준비, 줄기 세포 유지 및 분화 단계는 Stebbins et al.22에서 채택되었습니다. 1. iPSC 배양 및 BEC 분화에 필요한 물질 준비. IMR90-4 iPSC 배양을 위한 조직 배양(TC) 플라스틱의 매트릭스 코팅 기저막 매트릭스 겔(예: Matrigel)을 2.5mg 분취액으로 추출하고 -20°C에서 보관합니다.알림: 매트릭스 겔과 부분 표본을 얼음 위에서 취급할 때…

Representative Results

여기에 설명된 프로토콜은 Stebbins et al.에서 채택한 것으로, iPSC를 BBB 특성을 가진 뇌 유사 내피 세포로 분화하는 과정과 Nm19,22의 iPSC-BEC를 사용하는 감염 연구에 이 모델을 활용하는 방법을 강조합니다. iPSC-BEC는 적절하게 분화될 경우 TEER로 측정한 2000 Ω·cm2보다 큰 단단한 장벽 특성을 나타내며 VE-cadherin 및 CD31(PECAM)과 같은 내피 마커를 발현합니…

Discussion

시험 내 1차 및 불멸화된 인간 BEC는 강력한 장벽 표현형이 부족한 경향이 있기 때문에 BEC와 BBB를 모델링하는 데 어려움이 있었습니다. 인간 줄기 세포 기술의 출현으로 내피 마커, 단단한 접합 발현, 장벽 특성, 다른 CNS 세포 유형에 대한 반응 및 기능적 유출 수송체와 같은 예상되는 특징적인 BBB 표현형을 유지하는 iPSC 유래 BEC 유사 세포의 생성이 가능해졌습니다 12,13,14,15,22<…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

L.M.E.는 A.S-U.에 수여된 “인간 병원체에 의한 미생물 감염 연구를 위한 3D 조직 모델”이라는 제목의 DFG 연구 교육 프로그램 GRK2157 지원을 받습니다. B.J.K.는 알렉산더 폰 훔볼트 재단(Alexander von Humboldt Foundation)의 박사후 연구원의 지원을 받고 있습니다. 또한, 문화 분야에서 iPSC-BEC를 생성하는 데 기술적 도움을 준 Lena Wolter에게 감사의 뜻을 전합니다.

Materials

Accutase (1x) Sigma A6964 Enzymatic cell dissociation reagent
Acetic acid Sigma A6283
All-trans retinoic acid (RA) Sigma R2625
Anti-CD31 (PECAM-1) Thermo Scientific (Labvision) RB-10333
Anti-Claudin-5 Invitrogen 4C3C2
Anti-Glut-1 Thermo Scientific (Labvision) SPM498 (MA5-11315)
Anti-Occludin Invitrogen 33-1500
Anti-VE-cadherin Santa Cruz sc-52751
Anti-ZO-1 Invitrogen 33-9100
Bacto Proteose Peptone BD 211684
b-Mercaptoethanol Merck (Sigma-Aldrich) 805740
Cell culture plates and flasks Sarstedt
Centrifuge (Heraeus Megafuge 1.0R) Thermo Scientific
Class II biosafety cabinet Nuaire NU-437-400E
CO2 Incubator (DHD Autoflow CO2 Air-Jacketed Incubator) Nuaire
Collagen IV Sigma C5533
Columbia ager + 5 % sheep blood Biomerieux 43049
Costar Transwell polyester filters (12- or 24-well) Corning 3460, 3470
D(+)-Glucose Merck (Sigma-Aldrich) G8270
DAPI Invitrogen D1306
DMEM/F12 Gibco 31330-038
DMSO ROTH A994.1
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) Gibco 21600-069
Epithelial Volt-Ohm Meter (Millicell ERS-2) with STX electrode Merck (Millipore) MERS00002
Fe(NO3)3 ROTH 5632.1
Fibronectin Sigma F1141
Fluoresence microscope (Eclipse Ti) Nikon
Hemacytometer (Neubauer) A. Hartenstein ZK06
Human basic fibroblast growth factor (bFGF) PeproTech 100-18B
Human Endothelial Serum Free Medium (hESFM) Gibco 11111-044
Inverted microscope (Wilovert) Hund (Will Wetzlar)
iPS(IMR90)-4 cells WiCell
Kellogg's supplement To prepare 110 ml of Kellogg's supplement, prepare 100 ml of 4 g/ml glucose, 0.1 g/ml glutamine, and 0.2 mg/ml thiamine pyrophosphate and 10 ml of 5 mg/ml Fe(NO3)3 and combine the solutions. Filter sterilize and store aliquoted at -20 °C.
Knockout serum replacement (KOSR) Gibco 10828-028
L-glutamine (GlutaMAX) Invitrogen 35050-038
LunaScript RT SuperMix Kit NEB E3010L cDNA synthesis kit
Matrigel Matrix Corning 354230
Methanol ROTH 4627.5
MgCl2 ROTH KK36.1
Micropipettes (Research Plus) Eppendorf
NaHCO3 ROTH 6329
Nonessential amino acids (NEAA) Gibco 11140-035
NucleoSpin RNA isolation kit Machery-Nagel 740955 RNA isolation kit
Pipette boy (Accu-Jet Pro) Brand
Platelet poor plasma-derived serum, bovine (PDS) Fisher 50-443-029
PowerUp SYBR Green Master Mix Applied Biosystems A25742 qPCR master mix
qPCR film (MicroAmp Optical Adhesive Film) Applied Biosystems 4211971
qPCR plates (MicroAmp Fast 96-well) Applied Biosystems 4346907
ROCK inhibitor, Y27632 dihydrochloride Tocris 1254
RT-PCR thermo cycler (StepOnePlus) Applied Biosystems 4376600
Serological pipettes Sarstedt
StemFlex basal medium + 50x StemFlex supplement Gibco A3349401 Stem-cell maintenance medium
Swinging Bucket Rotor (Heraeus #2704) Thermo Scientific
Thiamine pyrophosphate Sigma C8754-5G
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco 15250061
Versene Gibco 15040-033 Non-enzymatic cell dissociation reagent (EDTA)

Referenzen

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Endres, L. M., Hathcock, S. F., Schubert-Unkmeir, A., Kim, B. J. Neisseria meningitidis Infection of Induced Pluripotent Stem-Cell Derived Brain Endothelial Cells. J. Vis. Exp. (161), e61400, doi:10.3791/61400 (2020).

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