여기에 설명된 프로토콜은 유도만능줄기세포 유래 뇌유사 내피세포의 분화, 감염을 위한 Neisseria meningitidis 준비 및 기타 분자 분석을 위한 샘플 수집의 주요 단계를 강조합니다.
수막구균성 뇌수막염은 나이세리아 수막염(Neisseria meningitidis , 수막구균, Nm)이 고도로 전문화된 뇌 내피 세포(BEC)에 침투하여 중추신경계(CNS)에 접근할 수 있을 때 발생하는 생명을 위협하는 감염입니다. Nm은 인간 특이적 병원체이기 때문에 강력한 in vivo 모델 시스템이 없기 때문에 Nm과 BEC 간의 숙주-병원체 상호 작용에 대한 연구가 어려워지고 네이티브 BEC를 모방하는 인간 기반 모델이 필요합니다. BEC는 복잡한 밀착 접합부와 높은 경내피 전기 저항(TEER)을 특징으로 하는 말초 내피 세포와 비교할 때 더 단단한 장벽 특성을 가지고 있습니다. 그러나 1차 BEC 및 불멸화된 BEC와 같은 많은 in vitro 모델은 기본 신경 미세환경에서 제거된 후 장벽 특성이 부족하거나 빠르게 손실됩니다. 최근 인간 줄기세포 기술의 발전으로 유도만능줄기세포(iPSC)에서 뇌와 유사한 내피세포를 유도하는 방법이 개발되어 다른 체외 인간 모델과 비교할 때 BEC를 더 잘 표현할 수 있습니다. Nm-BEC 상호작용을 모델링하기 위해 iPSC 유래 BEC(iPSC-BEC)를 사용하면 BEC 장벽 특성을 가진 인간 세포를 사용할 수 있다는 이점이 있으며, 장벽 파괴, 선천성 면역 활성화 및 박테리아 상호작용을 검사하는 데 사용할 수 있습니다. 여기서는 분석을 위한 박테리아 준비, 감염 및 샘플 수집 외에도 iPSC에서 iPSC-BEC를 도출하는 방법을 보여줍니다.
혈액-뇌 장벽(BBB)과 수막 혈액-CSF 장벽(mBCSFB)은 중추신경계(CNS)에서 순환을 분리하는 매우 단단한 세포 장벽이며 주로 고도로 전문화된 뇌 내피 세포(BEC)로 구성되어 있습니다1,2. BEC는 뇌 안팎의 영양소와 노폐물을 조절하고 많은 독소, 약물 및 병원균을 배제하여 적절한 뇌 항상성을 유지합니다 1,2. 세균성 뇌수막염은 혈액 매개 박테리아가 BEC에 의해 형성된 장벽과 상호 작용하고 이를 뚫고 들어가 염증을 일으킬 때 발생합니다. Neisseria meningitidis(Nm, 수막구균)는 건강한 사람의 10-10%의 비염을 집락화하는 그람 음성 박테리아이지만 경우에 따라 심각한 전신 질환을 유발할 수 있습니다3. 영향을 받은 개인에서 Nm은 자반증을 유발할 수 있는 혈류에 접근할 수 있을 뿐만 아니라 BEC를 관통하여 뇌수막염을 유발하는 중추신경계에 접근할 수 있다3. Nm은 전 세계적으로 세균성 뇌수막염의 주요 원인이며, 백신 접종 노력에도 불구하고 여전히 뇌수막염의 주요 원인이다4. 항생제 치료와 같은 현대 의학적 개입으로 이러한 질환은 생존할 수 있게 되었지만, 뇌수막염에 걸린 사람들은 종종 영구적인 신경학적 손상을 입게 된다 5,6.
이전 연구에서는 Nm-BEC 상호 작용에 기여하는 박테리아 요인 및 숙주 신호 전달을 확인했습니다 7,8,9,10,11. CD147과 같은 수용체뿐만 아니라 불투명도 단백질 Opc 및 type-IV pili와 같은 확인된 부착 및 침습은 다양한 BEC 모델에서 시험관 내에서 수행되었지만 이러한 모델에는 BBB 특성을 정의하는 많은 것이 부족합니다 7,9,11,12. Nm-BEC 상호 작용에 대한 완전한 이해는 부분적으로 in vivo 모델을 활용할 수 없고, 불완전한 백신 보호 및 in vitro에서 강력한 인간 BEC 모델의 부족으로 인해 여전히 어렵습니다.
시험관 내 hBEC를 모델링하는 것은 BEC의 고유한 특성으로 인해 어려운 일이었습니다. 말초 내피 세포와 비교하여, BEC는 복잡한 밀착 접합부로 인한 높은 경내피 전기 저항(trans-endothelial electrical resistance, TEER)과 같은 장벽 특성을 강화하는 다수의 표현형을 가지고 있다12. 일단 뇌 미세환경으로부터 제거되면, BEC는 그들의 장벽 특성을 빠르게 상실하여 약한 장벽만을 형성하는 1차 또는 불멸화된 시험관 내 모델의 유용성을 제한한다12,13. Nm 감염의 인체 특이성, 강력한 in vivo 모델의 부족, in vitro에서 인간 BEC를 모델링하는 데 어려움이 결합되어 Nm과 BEC 간의 복잡한 숙주-병원체 상호 작용을 이해하기 위한 더 나은 모델이 필요합니다. 최근에는 모델 인간 유도만능줄기세포(iPSC) 기술을 사용하여 생체 내 BEC를 더 잘 모방하는 iPSC로부터 BEC 유사 세포를 유도했습니다 12,13,14,15. iPSC-BEC는 인간에서 유래하고, 쉽게 확장할 수 있으며, 1차 또는 불멸 표현형에 비해 예상되는 BEC 표현형을 가지고 있습니다12,13,14,15. 또한, iPSC-BEC가 숙주-병원체 상호작용, 헌팅턴병, 앨런-허른던-더들리 증후군을 유발하는 MCT8 결핍과 같은 중추신경계의 다양한 질병을 모델링하는 데 유용하다는 것을 입증했습니다 16,17,18,19,20,21. 여기서는 재생 가능한 iPSC 공급원에서 iPSC-BEC를 유도하는 방법과 Nm에 의한 iPSC-BEC의 감염이 선천성 면역 반응의 활성화를 유도하는 방법을 보여줍니다. 우리는 이 모델이 다른 in vitro 모델에서 재현할 수 없는 숙주-병원체 상호작용을 조사하는 데 유용하며 Nm과 같은 인간 특이적 병원체와의 상호작용을 검사할 때 특히 유용하다고 믿습니다.
시험관 내 1차 및 불멸화된 인간 BEC는 강력한 장벽 표현형이 부족한 경향이 있기 때문에 BEC와 BBB를 모델링하는 데 어려움이 있었습니다. 인간 줄기 세포 기술의 출현으로 내피 마커, 단단한 접합 발현, 장벽 특성, 다른 CNS 세포 유형에 대한 반응 및 기능적 유출 수송체와 같은 예상되는 특징적인 BBB 표현형을 유지하는 iPSC 유래 BEC 유사 세포의 생성이 가능해졌습니다 12,13,14,15,22<…
The authors have nothing to disclose.
L.M.E.는 A.S-U.에 수여된 “인간 병원체에 의한 미생물 감염 연구를 위한 3D 조직 모델”이라는 제목의 DFG 연구 교육 프로그램 GRK2157 지원을 받습니다. B.J.K.는 알렉산더 폰 훔볼트 재단(Alexander von Humboldt Foundation)의 박사후 연구원의 지원을 받고 있습니다. 또한, 문화 분야에서 iPSC-BEC를 생성하는 데 기술적 도움을 준 Lena Wolter에게 감사의 뜻을 전합니다.
Accutase (1x) | Sigma | A6964 | Enzymatic cell dissociation reagent |
Acetic acid | Sigma | A6283 | |
All-trans retinoic acid (RA) | Sigma | R2625 | |
Anti-CD31 (PECAM-1) | Thermo Scientific (Labvision) | RB-10333 | |
Anti-Claudin-5 | Invitrogen | 4C3C2 | |
Anti-Glut-1 | Thermo Scientific (Labvision) | SPM498 (MA5-11315) | |
Anti-Occludin | Invitrogen | 33-1500 | |
Anti-VE-cadherin | Santa Cruz | sc-52751 | |
Anti-ZO-1 | Invitrogen | 33-9100 | |
Bacto Proteose Peptone | BD | 211684 | |
b-Mercaptoethanol | Merck (Sigma-Aldrich) | 805740 | |
Cell culture plates and flasks | Sarstedt | ||
Centrifuge (Heraeus Megafuge 1.0R) | Thermo Scientific | ||
Class II biosafety cabinet | Nuaire | NU-437-400E | |
CO2 Incubator (DHD Autoflow CO2 Air-Jacketed Incubator) | Nuaire | ||
Collagen IV | Sigma | C5533 | |
Columbia ager + 5 % sheep blood | Biomerieux | 43049 | |
Costar Transwell polyester filters (12- or 24-well) | Corning | 3460, 3470 | |
D(+)-Glucose | Merck (Sigma-Aldrich) | G8270 | |
DAPI | Invitrogen | D1306 | |
DMEM/F12 | Gibco | 31330-038 | |
DMSO | ROTH | A994.1 | |
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) | Gibco | 21600-069 | |
Epithelial Volt-Ohm Meter (Millicell ERS-2) with STX electrode | Merck (Millipore) | MERS00002 | |
Fe(NO3)3 | ROTH | 5632.1 | |
Fibronectin | Sigma | F1141 | |
Fluoresence microscope (Eclipse Ti) | Nikon | ||
Hemacytometer (Neubauer) | A. Hartenstein | ZK06 | |
Human basic fibroblast growth factor (bFGF) | PeproTech | 100-18B | |
Human Endothelial Serum Free Medium (hESFM) | Gibco | 11111-044 | |
Inverted microscope (Wilovert) | Hund (Will Wetzlar) | ||
iPS(IMR90)-4 cells | WiCell | ||
Kellogg's supplement | To prepare 110 ml of Kellogg's supplement, prepare 100 ml of 4 g/ml glucose, 0.1 g/ml glutamine, and 0.2 mg/ml thiamine pyrophosphate and 10 ml of 5 mg/ml Fe(NO3)3 and combine the solutions. Filter sterilize and store aliquoted at -20 °C. | ||
Knockout serum replacement (KOSR) | Gibco | 10828-028 | |
L-glutamine (GlutaMAX) | Invitrogen | 35050-038 | |
LunaScript RT SuperMix Kit | NEB | E3010L | cDNA synthesis kit |
Matrigel Matrix | Corning | 354230 | |
Methanol | ROTH | 4627.5 | |
MgCl2 | ROTH | KK36.1 | |
Micropipettes (Research Plus) | Eppendorf | ||
NaHCO3 | ROTH | 6329 | |
Nonessential amino acids (NEAA) | Gibco | 11140-035 | |
NucleoSpin RNA isolation kit | Machery-Nagel | 740955 | RNA isolation kit |
Pipette boy (Accu-Jet Pro) | Brand | ||
Platelet poor plasma-derived serum, bovine (PDS) | Fisher | 50-443-029 | |
PowerUp SYBR Green Master Mix | Applied Biosystems | A25742 | qPCR master mix |
qPCR film (MicroAmp Optical Adhesive Film) | Applied Biosystems | 4211971 | |
qPCR plates (MicroAmp Fast 96-well) | Applied Biosystems | 4346907 | |
ROCK inhibitor, Y27632 dihydrochloride | Tocris | 1254 | |
RT-PCR thermo cycler (StepOnePlus) | Applied Biosystems | 4376600 | |
Serological pipettes | Sarstedt | ||
StemFlex basal medium + 50x StemFlex supplement | Gibco | A3349401 | Stem-cell maintenance medium |
Swinging Bucket Rotor (Heraeus #2704) | Thermo Scientific | ||
Thiamine pyrophosphate | Sigma | C8754-5G | |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Gibco | 15250061 | |
Versene | Gibco | 15040-033 | Non-enzymatic cell dissociation reagent (EDTA) |