Summary

Real-time beeldvorming van CCL5-geïnduceerde migratie van periosteale skeletstamcellen bij muizen

Published: September 16, 2020
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft de detectie van CCL5-gemedieerde periostale skeletstamcelmigratie in realtime met behulp van levende intravitale microscopie van dieren.

Abstract

Periostale skeletstamcellen (P-SSC’s) zijn essentieel voor levenslang botonderhoud en -herstel, waardoor ze een ideale focus zijn voor de ontwikkeling van therapieën om de genezing van fracturen te verbeteren.  Periostale cellen migreren snel naar een verwonding om nieuwe chondrocyten en osteoblasten te leveren voor fractuurgenezing. Traditioneel is de werkzaamheid van een cytokine om celmigratie te induceren alleen in vitro uitgevoerd door een transwell- of scratch-assay uit te voeren. Met vooruitgang in intravitale microscopie met behulp van multifoton excitatie, werd onlangs ontdekt dat 1) P-SSC’s het migrerende gen CCR5 tot expressie brengen en 2) behandeling met het CCR5-ligand bekend als CCL5 de fractuurgenezing en de migratie van P-SSC’s verbetert als reactie op CCL5. Deze resultaten zijn in real-time vastgelegd. Hier wordt een protocol beschreven om de P-SSC migratie van de calvariale hechting skeletstamcel (SSC) niche naar een verwonding na behandeling met CCL5 te visualiseren. Het protocol beschrijft de constructie van een muisbevestiging en beeldvormingsbevestiging, chirurgische voorbereiding van de muiscalfalaria, inductie van een calvariadefect en verwerving van time-lapse beeldvorming.

Introduction

Fractuurherstel is een dynamisch, meercellig proces dat verschilt van embryonale skeletontwikkeling en remodellering. Tijdens dit proces wordt de inductie van letselsignalen van beschadigd weefsel gevolgd door de snelle rekrutering, proliferatie en daaropvolgende differentiatie van skeletstam / voorlopercellen, die allemaal van cruciaal belang zijn voor de algehele stabiliteit en fixatie van fracturen1. In het bijzonder vereisen vroege stadia van fractuurgenezing zachte eeltvorming, die voornamelijk wordt toegeschreven aan periostale residente cellen2. Wanneer botten gewond zijn, reageert een subset van periostale cellen snel en draagt bij aan nieuw gedifferentieerde kraakbeentussenproducten en osteoblasten in het eelt3, wat de aanwezigheid van een afzonderlijke skeletstam / voorlopercelpopulatie in het botvlies impliceert. Daarom vormen de identificatie en functionele karakterisering van de periosteum-residente skeletstamcellen (SSC’s) een veelbelovende therapeutische aanpak voor degeneratieve botziekten en botdefecten4.

SSC’s worden verondersteld zich op meerdere weefsellocaties te bevinden, waaronder het beenmerg. Net als bij beenmerg zijn osteogene/chondrogene SSC’s ook geïdentificeerd in het botvlies4,5,6.  Deze periostale SSC’s (P-SSC’s) kunnen worden gelabeld met vroege mesenchymale afstammingsmarkers (d.w.z. Prx1-Cre5, Ctsk-Cre7 en Axin2-CreER8) tijdens de foetale botontwikkeling4,7,8,9,10. Een belangrijke beperking van deze single genetic lineage tracing modellen is dat er een aanzienlijke heterogeniteit is binnen gelabelde celpopulaties. Bovendien kunnen ze gelabelde SSC’s niet onderscheiden van hun nageslacht in vivo. Om deze beperking aan te pakken, hebben we onlangs een dubbele reportermuis ontwikkeld (Mx1-Cre + Rosa26-Tomato + α SMA-GFP +) om P-SSC’s duidelijk te visualiseren van beenmerg-SSC’s (BM-SSC’s)11. Met dit model is vastgesteld dat P-SSC’s worden gekenmerkt door Mx1+αSMA+ dual labeling, terwijl meer gedifferentieerde Mx1+ cellen zich bevinden in het beenmerg, endosteale en periostale oppervlakken, en corticale en trabeculaire botten11,12.

Van meerdere cytokines en groeifactoren is bekend dat ze botremodellering en -reparatie reguleren en zijn getest op de verbetering van skeletherstel in kritieke segmentdefecten1,13. Vanwege de cellulaire complexiteit van letselmodellen die worden gegenereerd door verstoring van de fysieke barrière van het botcompartiment, zijn de directe effecten van deze moleculen op endogene P-SSC-migratie en activering tijdens genezing onduidelijk. De functionele kenmerken en migratiedynamiek van SSC’s worden vaak in vitro beoordeeld door een transwell- of scratch-assay uit te voeren, in combinatie met cytokines of groeifactoren waarvan bekend is dat ze migratie in andere celpopulaties induceren. De interpretatie van de resultaten van deze in vitro experimenten voor toepassing in hun overeenkomstige in vivo systemen is dus een uitdaging. Momenteel wordt in vivo beoordeling van de migratie van skeletstam/voorlopercellen doorgaans niet in realtime waargenomen; in plaats daarvan wordt het gemeten op vaste tijdspunten na de breuk5,7,14,15,16.

Een beperking van deze methode is dat migratie niet op eencellig niveau wordt beoordeeld; in plaats daarvan wordt het gemeten via veranderingen in celpopulaties. Vanwege recente vooruitgang in intravitale microscopie van levende dieren en het genereren van extra reportermuizen, is in vivo tracking van individuele cellen nu mogelijk. Met behulp van levende dier intravitale microscopie observeerden we de verschillende migratie van P-SSC’s van de calvaria hechting niche naar een botletsel binnen 24-48 uur na verwonding in Mx1 / Tomato / αSMA-GFP muizen.

CCL5/CCR5 werd onlangs geïdentificeerd als een regulerend mechanisme dat de rekrutering en activering van P-SSC’s beïnvloedt tijdens de vroege blessurerespons. Interessant is dat er geen detectie was van substantiële P-SSC-migratie als reactie op een verwonding in realtime. Behandeling van een verwonding met CCL5 produceert echter een robuuste, richtingsafhankelijke migratie van P-SSC’s, die in realtime kan worden vastgelegd. Daarom is het doel van dit protocol om een gedetailleerde methodologie te bieden voor het registreren van de in vivo migratie van P-SSC’s in realtime na behandeling met CCL5.

Protocol

Alle muizen werden in pathogeenvrije omstandigheden gehouden en alle procedures werden goedgekeurd door het Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van het Baylor College of Medicine. 1. Muisvoorbereiding Kruis Mx1-Cre17 en Rosa26-loxP-stop-loxP-tdTomato (Tom)18 muizen (gekocht bij het Jackson Laboratory) met αSMA-GFP muizen (hier geleverd door Drs. Ivo Kalajzic en Henry Kronenberg) om Mx1-Cre+Ros…

Representative Results

Er is voorgesteld dat skeletvoorlopers migratie- of bloedsomlooppotentieel hebben20. Onlangs werden Mx1-Cre+Rosa26-Tomato+α SMA-GFP+ (Mx1/Tomato/αSMA-GFP) reportermuizen gegenereerd, waarbij P-SSC’s worden gemarkeerd door Mx1+α SMA+ dual labeling (Figuur 2A,B). Substantiële migratie van Mx1+α SMA+…

Discussion

Tijdens botgenezing zijn periostale cellen de belangrijkste bron van nieuw gedifferentieerde chondrocyten en osteoblasten binnen een verwonding eelt3. Net als bij beenmerg zijn osteogene/chondrogene SSC’s ook geïdentificeerd in het botvlies4,5,6. Het beoordelen van endogene P-SSC functionele kenmerken is technisch uitdagend. Vaak wordt de migratiedynamiek van SSC’s in vitro beoordeeld, waardoor de interp…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de Bone Disease Program of Texas Award, de Caroline Wiess Law Fund Award en de NIAMS van de National Institutes of Health onder de awardnummers R01 AR072018, R21 AG064345, R01 CA221946 tot D.P.  We bedanken M.E. Dickinson en T.J. Vadakkan in de BCM Optical Imaging and Vital Microscopy Core en de BCM Advanced Technology Cores met financiering van NIH (AI036211, CA125123 en DK056338).

.

Materials

½” optical post ThorLabs TR2 For imaging mount
1 mL syringe BD 309659
27G needle BD PercisionGlide 305111
29G insulin syringe McKesson 102-SN05C905P
50 mL conicol tube Falcon 352098 For mouse restraint
Adjustable angle plate Renishaw R-PCA-5023-50-20 For imaging mount
Alcohol wipes Coviden 6818
betadine surgical scrub Henry Schen 67618-151-16
Buprenorphine SR-LAB ZooPharm 1mg/mL Sustained Release
Combo III Obtained from staff veterinarian N/A 37.6 mg/mL Ketamine; 1.9 mg/mL Xylazine; 0.37 mg/mL Acepronazine
Coverslip Fisher 12-545-87 24 x 40 premium superslip
Fine tip forcepts FST 11254-20
Ketamine KetaVed 50989-161-06 100 mg/mL
Leica TCS SP8MP with DM6000CFS Leica Microsystems N/A
Matrigel R & D Systems 344500101
Medical tape McKesson 100199 3" x 10 yds (7.6 cm x 9.1 m)
Methocellulose Electron Microscopy Sciences 19560
Microdissection scissors FST 1456-12
Motorized stage Anaheim automation N/A
Needle holder FST 12500-12
Nonabsorbable sutures McKesson S913BX monofilament nylon 5-0 nonabsorbable sutures with attached C-1 reverse cutting needle
Opthalmic ointment Rugby 0536-1086-91
RANTES Biolegend 594202 10 µg/50 µL
Right-angle clamp for ½” post, 3/16” Hex ThorLabs RA90 For imaging mount
Spring-loaded 3/16” Hex-locking ¼” thumbscrew ThorLabs TS25H For imaging mount
Sterile cotton swabs Henry Schen 100-9249
Sterile DPBS (1x) Corning 21-030-CV
Sterile drapes McKessen 25-517
Surgical gloves McKessen 3158VA
Triple antibiotic ointment Taro Pharmaceuticals U.s.a., Inc. 51672-2120-2
Vacutainer blood collection set BD REF 367298 25G butterfly needle infusion set with 12" tubing

Referenzen

  1. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: mechanisms and interventions. Nature Reviews Rheumatology. 11 (1), 45-54 (2015).
  2. Murao, H., Yamamoto, K., Matsuda, S., Akiyama, H. Periosteal cells are a major source of soft callus in bone fracture. Journal of Bone and Mineral Metabolism. 31 (4), 390-398 (2013).
  3. Colnot, C. Skeletal cell fate decisions within periosteum and bone marrow during bone regeneration. Journal of Bone and Mineral Research. 24 (2), 274-282 (2009).
  4. Roberts, S. J., van Gastel, N., Carmeliet, G., Luyten, F. P. Uncovering the periosteum for skeletal regeneration: the stem cell that lies beneath. Bone. 70, 10-18 (2015).
  5. Duchamp de Lageneste, O., et al. Periosteum contains skeletal stem cells with high bone regenerative potential controlled by Periostin. Nature Communications. 9 (1), 773 (2018).
  6. Olivos-Meza, A., et al. Pretreatment of periosteum with TGF-beta1 in situ enhances the quality of osteochondral tissue regenerated from transplanted periosteal grafts in adult rabbits. Osteoarthritis Cartilage. 18 (9), 1183-1191 (2010).
  7. Debnath, S., et al. Discovery of a periosteal stem cell mediating intramembranous bone formation. Nature. 562 (7725), 133-139 (2018).
  8. Ransom, R. C., et al. Axin2-expressing cells execute regeneration after skeletal injury. Scientific Reports. 6, 36524 (2016).
  9. Ouyang, Z., et al. Prx1 and 3.2kb Col1a1 promoters target distinct bone cell populations in transgenic mice. Bone. 58, 136-145 (2013).
  10. Wilk, K., et al. Postnatal Calvarial Skeletal Stem Cells Expressing PRX1 Reside Exclusively in the Calvarial Sutures and Are Required for Bone Regeneration. Stem Cell Reports. 8 (4), 933-946 (2017).
  11. Ortinau, L. C., et al. Identification of Functionally Distinct Mx1+alphaSMA+ Periosteal Skeletal Stem Cells. Cell Stem Cell. 25 (6), 784-796 (2019).
  12. Deveza, L., Ortinau, L., Lei, K., Park, D. Comparative analysis of gene expression identifies distinct molecular signatures of bone marrow- and periosteal-skeletal stem/progenitor cells. PLoS One. 13 (1), 0190909 (2018).
  13. Schindeler, A., McDonald, M. M., Bokko, P., Little, D. G. Bone remodeling during fracture repair: The cellular picture. Seminars in Cell and Developmental Biology. 19 (5), 459-466 (2008).
  14. Shi, Y., et al. Gli1 identifies osteogenic progenitors for bone formation and fracture repair. Cell Stem Cell. 15 (2), 782-796 (2017).
  15. Zhou, B. O., Yue, R., Murphy, M. M., Peyer, J. G., Morrison, S. J. Leptin-receptor-expressing mesenchymal stromal cells represent the main source of bone formed by adult bone marrow. Cell Stem Cell. 15 (2), 154-168 (2014).
  16. Grcevic, D., et al. In vivo fate mapping identifies mesenchymal progenitor cells. Stem Cells. 30 (2), 187-196 (2012).
  17. Kuhn, R., Schwenk, F., Aguet, M., Rajewsky, K. Inducible gene targeting in mice. Science. 269 (5229), 1427-1429 (1995).
  18. Srinivas, S., et al. Cre reporter strains produced by targeted insertion of EYFP and ECFP into the ROSA26 locus. BMC Developmental Biology. 1, 4 (2001).
  19. Park, D., et al. Endogenous bone marrow MSCs are dynamic, fate-restricted participants in bone maintenance and regeneration. Cell Stem Cell. 10 (3), 259-272 (2012).
  20. Nitzsche, F., et al. Concise Review: MSC Adhesion Cascade-Insights into Homing and Transendothelial Migration. Stem Cells. 35 (6), 1446-1460 (2017).
  21. Adler, J., Pagakis, S. N. Reducing image distortions due to temperature-related microscope stage drift. Journal of Microscopy. 210, 131-137 (2003).
  22. Roberts, S. J., Ke, H. Z. Anabolic Strategies to Augment Bone Fracture Healing. Current Osteoporosis Reports. 16 (3), 289-298 (2018).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Ortinau, L., Lei, K., Jeong, Y., Park, D. Real-Time Imaging of CCL5-Induced Migration of Periosteal Skeletal Stem Cells in Mice. J. Vis. Exp. (163), e61162, doi:10.3791/61162 (2020).

View Video