Здесь мы представляем протокол для сопряжения белка мономер ферментов формирования белка полимера с контролируемой последовательности и обездвижить его на поверхности для одномолекулярных исследований силы спектроскопии.
Химические и био-конъюгации методы были быстро разработаны в последние годы и позволяют строить белковых полимеров. Тем не менее, контролируемый процесс полимеризации белка всегда является сложной задачей. Здесь мы разработали ферментативную методологию построения полимеризованного белка шаг за шагом в рационально контролируемой последовательности. В этом методе, C-термина мономера белка является NGL для спряжения белка с использованием OaAEP1 (Oldenlandia affinis asparaginyl эндопептидазы) 1) в то время как N-термин был расщепления TEV (вирус табачного etch) расщепления плюс L (ENLYF/ GL) для временного N-терминала защиты. Следовательно, OaAEP1 смог добавить только один мономер белка за один раз, а затем протеазы TEV расщепляли N-терминус между q и G, чтобы разоблачить NH2-Gly-Leu. Затем устройство готово к следующей перевязке OaAEP1. Инженерный полипротеин исследуется путем развертывания индивидуального белкового домена с использованием атомной силовой микроскопической одномолекулярной силовой спектроскопии (AFM-SMFS). Поэтому данное исследование дает полезную стратегию для полипротеиновой инженерии и иммобилизации.
По сравнению с синтетическими полимерами, натуральные мультидоменные белки имеют единую структуру с хорошо контролируемым числом и типом субдоменов1. Эта функция обычно приводит к улучшению биологической функции и стабильности2,3. Многие подходы, такие как цистеин основе дисульфидных связей и рекомбинантных технологий ДНК, были разработаны для создания такого полимерного белка с несколькими доменами4,5,6,7. Однако первый метод всегда приводит к случайной и неконтролируемой последовательности, а второй приводит к другим проблемам, в том числе к трудностям для переэкспрессии токсичных и крупногабаритных белков и очищения сложного белка с кофактором и другими деликатными ферментами.
Чтобы решить эту задачу, мы разрабатываем ферментационный метод, который совмещает белок мономер вместе для полимера / полипротеина в шаг ею с помощью белка лигазы OaAEP1 в сочетании с протеаза TEV8,9. OaAEP1 является строгим и эффективным эндопептидаза. Два белка могут быть связаны ковалентно, как Asn-Gly-Leu последовательности (NGL) через два termini OaAEP1 менее чем за 30 минут, если N-терминов является Гли-Леу остатков (GL) и другой из которых C-терминус NGL остатков10. Однако, использование OaAEP1 только для того чтобы связать мономер протеина водит к полимеру протеина с uncontrolled последовательностью как метод соединения на основе cysteine. Таким образом, мы проектируем N-терминус белкового блока со съемным участком протеазы TEV плюс остатки лейцина в виде ENLYF/G-L-POI. До расщепления TEV, N-терминал не будет участвовать в перевязке OaAEP1. И тогда остатки GL на N-терминус, которые совместимы с дальнейшей перевязкой OaAEP1, подвергается после расщепления TEV. Таким образом, мы достигли последовательного ферментативного метода биосинтеза полипротеина с относительно хорошо контролируемой последовательностью.
Здесь наш метод поэтапного ферментативного синтеза может быть использован в подготовке полипротеиновых образцов, включая контролируемую последовательность и неконтролируемую, и протеиновой иммобилизации для одномолекулярных исследований, особенно для сложной системы, такой как металлопротеин.
Кроме того, эксперименты SMFS на основе AFM позволяют нам подтвердить конструкцию полимера и стабильность белка на одномолекулярном уровне. Одномолекулярная силовая спектроскопия, включая AFM, оптический пинцет и магнитный пинцет, является общим инструментом в нанотехнологии для механически управления биомолекулой и измерения их стабильности11,12,13,14,15,16,17,18,19,20. Одномолекулярный AFM широко используется в изучении белка(un), складывая21,22,23,25,измерения прочности взаимодействия рецептор-лиганд26,27,28,29,30,31,32,33,34, 35, неорганические химические связи20,36,37,38,39,40,41,42,43 и металло-лиганд связи в металлопротеина44,45,46,47,48,49,50 . Здесь одномолекулярный AFM используется для проверки синтезированной последовательность полипротеинов на основе соответствующего белка разворачивается сигнала.
Мы описали протокол ферментативного биосинтеза и иммобилизации полипротеина и проверили дизайн полипротеина на основе AFM SMFS. Данная методология предусматривает новый подход к созданию белково-полимера в разработанной последовательности, которая дополняет предыдущие методы для поли…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Национальным фондом естественных наук Китая (Грант No 21771103, 21977047), Фондом естественных наук провинции Цзянсу (Грант No. BK20160639) и Шуанчуань программы провинции Цзянсу.
iron (III) chloride hexahydrate | Energy chemical | 99% | |
Zinc chloride | Alfa Aesar | 100.00% | |
calcium chloride hydrate | Alfa Aesar | 99.9965% crystalline aggregate | |
L-Ascorbic Acid | Sigma Life Science | Bio Xtra, ≥99.0%, crystalline | |
(3-Aminopropyl) triethoxysilane | Sigma-Aldrich | ≥99% | |
sulfosuccinimidyl 4-(N-maleimidomethyl) cyclohexane-1-carboxylate | Thermo Scientific | 90% | |
Glycerol | Macklin | 99% | |
5,5'-dithiobis(2-nitrobenzoic acid) | Alfa Aesar | ||
Genes | Genscript | ||
Equipment | |||
Nanowizard 4 AFM | JPK Germany | ||
MLCT cantilever | Bruker Corp | ||
Mono Q 5/50 GL | GE Healthcare | ||
AKTA FPLC system | GE Healthcare | ||
Glass coverslip | Sail Brand | ||
Nanodrop 2000 | Thermo Scientific | ||
Avanti JXN-30 Centrifuge | Beckman Coulter | ||
Gel Image System | Tanon |