Представлены два метода обогащения холестерина: применение циклодекстрин насыщенного холестерином для обогащения тканей и клеток млекопитающих, а также использование обогащенных холестерином фосфолипидных дисперсий (липосом) для обогащения клеточных яйцеклеток. Эти методы являются полезными для определения влияния повышенного уровня холестерина в молекулярной, клеточной и органной функции.
Холестерин обогащения тканей млекопитающих и клеток, в том числе Ксенопус ооцитов, используемых для изучения функции клеток, может быть достигнуто с помощью различных методов. Здесь мы описываем два важных подхода, используемых для этой цели. Во-первых, мы описываем, как обогащать ткани и клетки с помощью циклодекстрин насыщен холестерина с помощью мозговых артерий (тканей) и гиппокампа нейронов (клеток) в качестве примеров. Этот подход может быть использован для любого типа тканей, клеток или клеточных линий. Альтернативный подход к обогащению холестерина предполагает использование липопротеинов низкой плотности (ЛПНП). Преимущество этого подхода является то, что он использует часть естественного холестерина гомеостаза машины клетки. Однако, в то время как циклодекстрин подход может быть применен для обогащения любого типа клеток с холестерином, LDL подход ограничивается клетками, которые выражают ldL рецепторов (например, клетки печени, костного мозга полученных клеток, таких как лейкоциты крови и ткани макрофагов), и уровень обогащения зависит от концентрации и мобильности рецептора ЛПНП. Кроме того, частицы ЛПНП включают в себя другие липиды, поэтому доставка холестерина неспецифическая. Во-вторых, мы описываем, как обогатить ооциты ксенопуса холестерином с помощью дисперсии на основе фосфолипидов (т.е. липосом), которая включает холестерин. Ксенопусские яйцеклетки представляют собой популярную гетерологусную систему экспрессии, используемую для изучения функции клеток и белков. Как для циклодекстрин основе холестерина обогащения подход млекопитающих тканей (мозговых артерий) и фосфолипид основе холестерина обогащения подход ксенопуса ооцитов, мы пяндекс. Этот уровень холестерина остается неизменным в течение длительных периодов инкубации (например, 60 мин). В совокупности эти данные обеспечивают основу для оптимизированных временных условий для обогащения холестерина тканей, клеток и ооцитов ксенопусов для функциональных исследований, направленных на изучение влияния обогащения холестерина.
Холестерин, основной клеточный липид, играет многочисленные критические функциональные и структурные роли1,,2,,3,,4,,55,66,7,8,,9. От регулирования физических свойств плазменной мембраны до обеспечения жизнеспособности клеток, роста, пролиферации и использования молекулы сигнала и прекурсора в изобилии биохимических путей, холестерин является императивным компонентом, необходимым для нормальной функции клеток и органов. В результате дефицит холестерина приводит к тяжелым физическим порокам развития и различным расстройствам. С другой стороны, даже небольшое повышение уровня холестерина выше физиологических уровней (2-3x),является цитотоксическим1,,2,,10 и было связано с развитием нарушений, в том числе сердечно-сосудистых11,,12,,13 и нейродегенеративных заболеваний14,15,16,17. Таким образом, для изучения важнейших функций холестерина и определения влияния изменений уровня холестерина были разработаны различные подходы, которые изменяют содержание холестерина в тканях, клетках и ксенопух.
Изменение уровня холестерина в тканях и клетках млекопитающих
Несколько подходов могут быть использованы для снижения уровня холестерина в тканях и клетках18. Один подход включает в себя их воздействие статинов, растворенных в липопротеино-дефицитной сыворотке для ингибирования HMG-CoA редуктазы, которая контролирует скорость синтеза холестерина19,20. Тем не менее, эти препараты снижения уровня холестерина также препятствуют образованию нестероловых продуктов вдоль мевалонатного пути. Таким образом, небольшое количество мевалоната добавляется, чтобы позволить образование этих продуктов21 и повысить специфику этого подхода. Другой подход к снижению уровня холестерина включает в себя использование циклодекстрин. Эти гюфрироранозы мономеры обладают внутренней гидрофобной полости с диаметром, который соответствует размеру стеринов22, что облегчает извлечение холестерина из клеток, тем самым истощая их от родного содержания холестерина23. Примером является 2-гидроксипропил-я-циклодекстрин (HP-CD), доклинический препарат в настоящее время тестируется для лечения ниманн-Пик типа C болезни, генетически наследственных смертельных метаболических расстройств, характеризующихся лизосомального холестерина хранения24. Уровень истощения холестерина зависит от конкретной производной используется. Например, HP-CD извлекает холестерин с меньшей емкостью, чем метилированные производные, метил-и-циклодекстрин (МЗКД)24,25,26,27,28,29,30. Примечательно, однако, что циклодекстрины могут также извлекать другие гидрофобные молекулы в дополнение к холестерину, что может привести к неспецифическим эффектам31. В отличие от истощения, клетки и ткани могут быть специально обогащены холестерином путем лечения циклодекстрином, который был донасыщен холестерином23. Этот подход также может быть использован в качестве контроля для специфики q-циклодекстринов, используемых для истощения холестерина31. Истощение холестерина из тканей и клеток является простым и может быть достигнуто путем разоблачения клеток в течение 30-60 мин до 5 мМ ММ МЗКД растворяется в среде, используемой для хранения клеток. Такой подход может привести к 50% снижению содержания холестерина (например, в гиппокампе нейронов32, крысиных мозговых артерий33). С другой стороны, подготовка комплекса к циклодекстрин-холестерин для обогащения холестерина тканей и клеток является более сложной и будет описана в разделе протокола.
Альтернативный подход к обогащению тканей и клеток с использованием циклодекстрин насыщен холестерина включает в себя использование ЛПНП, который опирается на рецепторы ЛПНП, выраженные в тканях / клетках18. Хотя этот подход предлагает преимущество использования природного холестерина гомеостаза машины клетки, он имеет несколько ограничений. Во-первых, ткани и клетки, которые не выражают рецептор ЛПНП не могут быть обогащены с помощью этого подхода. Во-вторых, частицы ЛПНП содержат другие липиды в дополнение к холестерину. В частности, ЛПНП состоит из белка ApoB100 (25%) и следующие липиды (75%): 6-8% холестерина, 45-50% холестериновый эфир, 18-24% фосфолипидов и 4-8% триацилглицерола34. Таким образом, доставка холестерина через частицы ЛПНП является неспецифической. В-третьих, процент увеличения содержания холестерина ЛПНП в тканях и клетках, которые выражают рецептор ЛПНП может быть значительно ниже, чем увеличение наблюдается с помощью циклодекстрин насыщенхолестерина холестерина. Например, в предыдущем исследовании, обогащение грызунов мозговых артерий с холестерином через ЛПНП привело только 10-15% увеличение уровня холестерина35. В отличие от этого, обогащение этих артерий циклодекстрином, насыщенным холестерином, как описано в разделе протокола, привело к увеличению содержания холестерина на 50% (см. раздел «Результаты представительства», рисунок 1).
Изменение уровня холестерина в яйцеклетках Ксенопуса
Ксенопусские яйцеклетки представляют собой гетерологовую систему экспрессии, обычно используемую для изучения функции клеток и белков. Более ранние исследования показали, что соотношение холестерина к фосфолипидным молярным соотношению у ооцитов Ксенопуса составляет 0,5 и 0,136. Из-за этого внутренне высокий уровень холестерина, повышение содержания холестерина в этой системе является сложной задачей, но может быть достигнуто с помощью дисперсии из мембранных фосфолипидов и холестерина. Фосфолипиды, которые мы выбрали для этой цели, аналогичны тем, которые используются для формирования искусственных планарных липидных бислой и включают L-я-фосфатидидаланоламин (POPE) и 1-palmitoyl-2-олеоил-сн-глицеро-3-фосфо-л-серин (POPS), как описано в разделе протокола. Такой подход может привести к увеличению содержания холестерина на 50% (см. раздел “Результаты представлений”, рисунок 2).
Альтернативный подход к обогащению ооцитов ксенопуса фосфолипидными дисперсиями предполагает использование циклодекстрин, насыщенный холестерином, который похож на то, как обогащаются ткани и клетки. Тем не менее, мы обнаружили, что этот подход имеет низкую воспроизводимость и эффективность, в среднем на 25% больше содержания холестерина. Это, возможно, связано с различной грузоподъемностью этих двух подходов (см. раздел “Результаты представитель”, рисунок 3). В отличие от этого, было показано, что использование циклодекстрин для истощения холестерина из ооцитов Ксенопуса может привести к снижениюсодержанияхолестерина на 40%.
Здесь мы сосредоточиваемся на обогащении холестерина тканей и клеток млекопитающих путем применения циклодекстрин насыщенных холестерином, и ксенопусов ооцитов с использованием липосом. Оба подхода могут быть использованы для разграничения влияния повышенного уровня холестерина на функцию белка. Механизмы модуляции холестерина функции белка могут включать прямые взаимодействия8 и/или косвенные эффекты9. Когда холестерин влияет на функцию белка через прямые взаимодействия, влияние повышения уровня холестерина на активность белка, вероятно, не зависит от типа клеток, системы выражения или подхода обогащения. Например, мы использовали эти два подхода, чтобы определить влияние холестерина на G-белок закрытых внутренне выправляя калия (GIRK) каналов, выраженных в предсердий миоцитов37, гиппокампа нейронов32,38, HEK29339 клеток, и Ксенопус ооцитов32,37. Результаты, полученные в этих исследованиях, были последовательными: во всех трех типах клеток млекопитающих и в оицитах амфибий холестерина upregulated GIRK функции канала (см. Представитель Результаты раздела, Рисунок 4, для гиппокампа нейронов и соответствующие эксперименты в ооцитов Ксенопуса). Кроме того, наблюдения, сделанные в этих исследованиях, также согласуются с результатами исследований, проведенных в предсердий миоцитов37,40 и гиппокампа нейронов32,38 свежеизолированных от животных, подвергаемых высоким уровнем холестерина диеты40. Примечательно, что обогащение холестерина гиппокампа нейронов с помощью МЗКД обратить вспять эффект аторвастатина терапии, используемой для решения воздействия диеты с высоким уровнем холестерина как на уровень холестерина и GIRK функции38. В других исследованиях мы исследовали влияние мутаций на чувствительность холестерина внутренне выправляющего калийный канал Kir2.1 с использованием обоих клеток Xenopus и клеток HEK29341. Опять же, влияние мутаций на чувствительность канала было аналогичным в двух системах.
Применение обоих методов обогащения для определения влияния повышенного уровня холестерина на молекулярную, клеточную и органную функцию многочисленны. В частности, использование циклодекстрин-холестериновых комплексов для обогащения клеток и тканей очень распространено во многом благодаря своей специфичности. Недавние примеры такого подхода включают определение влияния холестерина на активацию канала HERG и основные механизмы42, открытие, что холестерин активирует G белка связаны рецептор Smoothened содействовать Ежик сигнализации43, и определение роли холестерина в биомеханики стволовых клеток и адипогенеза через мембраны связанных связующих белков44. В нашей собственной работе, мы использовали обогащение тканей млекопитающих с комплексом M’CD: холестерин для изучения влияния обогащения холестерина на основную функцию и фармакологический профиль кальция- и напряжения-gated каналов большой проводимости (BK, MaxiK) в сосудистой гладкой мышце35,45,46. В других исследованиях, мы использовали фосфолипид основе дисперсии подход для обогащения ксенопусов ооцитов с холестерином, чтобы определить роли различных регионов в Kir2.1 и GIRK каналов в холестериновой чувствительности41,47,48,49, а также для определения предполагаемых холестеринсвязных сайтов в этих каналах32,50,51.
Методы обогащения тканей и клеток млекопитающих и ксенопусов холестерином представляют собой мощный инструмент для исследования влияния повышенного уровня холестерина на отдельные молекулярные виды, на сложные макромолекулярные системы (например, белки) и на клеточные и органн…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Грант развития ученых (11SDG5190025) от Американской ассоциации сердца (в A.R.-D.), и Национальный институт здравоохранения R01 грантов AA-023764 (до A.N.B.), и HL-104631 и R37 AA-11560 (к A.M.D.).
Amplex Red Cholesterol Assay Kit | Invitrogen | A12216 | |
Pierce BCA Protein Assay Kit | Thermo Scientific | 23225 | |
Pre-Diluted Protein Assay Standards BSA set | Thermo Scientific | 23208 | |
Brain PE 25Mg in Chloroform | Avanti Lipids | 840022C | |
16:0-18:1 PS 25Mg Chloroform | Avanti Lipids | 840034C | |
Cholesterol 100Mg Powder | Sigma | C8667 | |
KCl | Fisher | P217 | |
Trizma base | Sigma | T6066 | |
HEPES | Corning | 61-034-RO | |
MgCl2 | Fisher | M33 | |
NaCl | Fisher | S271 | |
KH2PO4 | Fisher | P285 | |
MgSO4 | EMD Chemicals | MX0070-1 | |
EDTA | VWR | E177 | |
Dextrose Anhydrous | Fisher | BP350 | |
NaHCO3 | Sigma | S6014 | |
CaCl2 | Sigma | C3881 | |
Blood Gas Tank | nexAir | ||
NaOH | Fisher | S318 | |
1.5mL tubes | Fisher | S35818 | |
Gastight Syringe 100uL | Hamilton | 1710 | |
Microliter Syringe 25uL | Hamilton | 702 | |
12 mL heavy duty conical centrifuge beaded rim tube | Pyrex | 8120-12 | |
Chloroform | Fisher | C298 | |
Support Stand | Homescience Tools | CE-STAN5X8 | |
Universal Clamp, 3-Prong | Homescience Tools | CE-CLPUNIV | |
Sonicator | Laboratory Supplies | G112SP1G | |
3D rotator mixer | Benchmark Scientific | B3D 1308 | |
96 well plate | Sigma | BR781602 | |
N2 gas | nexAir | ||
Glass beakers 40ml-1L | Fisher | 02-540 | |
Ice Machine | Scotsman | CU1526MA-1 | |
Ice bucket | Fisher | 50-136-7764 | |
1X PBS | Corning | 21-031-CM | |
TritonX | Fisher | BP151-100 | |
Sonic Dismembrator | Fisher | Model 100 | |
Eppendorf microcentrifuge | Eppendorf | Model 5417R | |
Amber bottles | Fisher | 03-251-420 | |
Corning™ Disposable Glass Pasteur Pipets | FIsher | 13-678-4A | |
Parafilm | FIsher | 50-998-944 | |
Isotemp™ BOD Refrigerated Incubator | FIsher | 97-990E | |
Oocytes | Xenoocyte™ | 10005 | |
Rat | Envigo | Sprague Dawley | weight 250g |
Methyl-β-cyclodextrin | Sigma | C4555 | |
Water bath incubator with shaker | Precision | 51221080 | Lowest shaker setting O/N 37 °C |
Filipin | Sigma | SAE0088-1ML | |
DMSO | Fisher | BP231 | |
Paraformaldehyde 4% | Mallinckrodt | 2621 | |
DI H2O | University DI source | ||
ProLong Gold antifade reagnet | Invitrogen | P10144 | |
Microslides 75x25mm Frosted | Diagger | G15978A | |
Forceps | Fine Science Tools | 11255-20 | |
Microscope Coverslip | Diagger | G15972B | |
Clear nail polish | Revlon | 771 Clear | |
Labeling Tape | Fisher | 15-901-20F | |
Securline Lab Marker II | Sigma | Z648205-5EA | |
BD 10mL Syringe | Fisher | 14-823-16E | |
1.2 μm syringe filter | VWR | 28150-958 | |
KimWipes | Fisher | 06-666A | |
pH probe | Sartorus | py-p112s | |
pH meter | Denver instrument | Model 225 | |
70% ETOH | Pharmco | 211USP/NF | |
Timer | Fisher | 02-261-840 | |
Steno book | Staples | 163485 |