Мы описываем протоколы для определения структуры IKK-обязательной области NEMO с помощью рентгеновской кристаллографии. Методы включают экспрессию белка, очищение и характеристику, а также стратегии успешной оптимизации кристалла и определения структуры белка в его несвязанной форме.
NEMO – это белок, который играет важную роль на пути NF-ЗБ, собирая IKK-комплекс с киназами IKK и IKK. После активации комплекс IKK фосфорилатирует молекулы I’B, ведущие к ядерной транслокации NF-‘B и активации генов-мишеней. Ингибирование взаимодействия NEMO/IKK является привлекательной терапевтической парадигмой для модуляции активности пути NF-ЗВ, что делает NEMO мишенью для проектирования и открытия ингибиторов. Чтобы облегчить процесс обнаружения и оптимизации ингибиторов NEMO, мы разработали улучшенную конструкцию связывающей области NEMO, которая позволила бы определить структуру белка в форме апо и при этом привязанных к небольшим молекулярным ингибитогам веса. Здесь мы представляем стратегию, используемую для проектирования, выражения и структурной характеристики мкноэ, имеющей обязательную область NEMO. Белок выражается в клетках кишечной палочки, растворяется в условиях денатурирования и очищается через три хроматографических шага. Мы обсуждаем протоколы получения кристаллов для определения структуры и описываем стратегии сбора и анализа данных. Протоколы найдут широкое применимость к структурному определению комплексов ИНГибиторов NEMO и малых молекул.
Путь НФ-ЗБ активируется в ответ на различные стимулы, включая цитокины, микробные продукты и стресс, для регулирования экспрессии генов-мишеней, ответственных за воспалительный и иммунный ответ, гибель клеток или выживание и пролиферацию1. Патологии, включая воспалительные и аутоиммунные заболевания и рак2,3,4,5 были коррелированы с гиперактивацией пути, что сделало модуляцию деятельности NF-QB основной мишенью для разработки новых методов лечения6,7.
Канонический путь NF-QB, в частности, отличается от неканонического пути, ответственного за лимфорганогенез и активацию В-клеток, зависимостью первого от леса белка NEMO (NF-QB основной модулятор8) для сборки IKK-комплекса с кининами IKK и IKK. Комплекс IKK отвечает за фосфорилирование ИЗБЗ (ингибитор ЗВ), который нацелен на деградацию, освобождая димеры NF-qB для перемещения в ядро для транскрипциигенов 1 ЗЗ и, следовательно, является привлекательной мишенью для развития ингибиторов для модулирования активности NF-B.
Наше исследование фокусируется на характеристике белково-белкового взаимодействия между NEMO и IKK, ориентированной на NEMO для разработки малых молекул ингибиторов формирования комплекса IKK. Минимальная связывающая область NEMO, необходимая для связывания ИККЗ, включает в себя остатки 44-111, и его структура была определена в комплексе с пептидом, соответствующим последовательности IKK 701-7459. NEMO и IKK’ образуют четырехсепарок, где NEMO dimer вмещает два сипов IKK (701-745) в удлиненный открытый паз с расширенным интерфейсом взаимодействия. IkK (734-742), также известный как NEMO-обязательный домен (NBD), определяет наиболее важную горячую точку для связывания, где два основных триптофанов (739 741) хоронят глубоко в кармане NEMO. Детали сложной структуры могут помочь в структуре на основе проектирования и оптимизации малых ингибиторов молекулы ориентации NEMO. В то же время, трудно, что связывание небольшой молекулы или пептида воссоздало бы в NEMO полное конформивное изменение (т.е. обширное открытие dimer с коритой сутышки NEMO), вызванное связыванием длинной IKK (701-745), как наблюдается в кристалле, и структура несвязанной NEMO или NEMO, связанной с небольшим ингибитором молекулы, может представлять собой лучшую структуру ингибирования.
Полноформатные NEMO и более мелкие конструкции усечения, охватывающие область IKK-связывания, оказались неразрешимыми для определения структуры в несвязанной форме с помощью рентгеновской кристаллографии и методов ядерного магнитного резонанса (ЯМР)10, что побудило нас разработать улучшенную версию обязательной области NEMO. Действительно, NEMO (44-111) в несвязанной форме лишь частично сложен и претерпевает конформационный обмен, и поэтому мы намерены стабилизировать его димерную структуру, складку свернутой катушки и стабильность, сохраняя при этом связывающее сродство к IkK. Путем связывать 3 heptads идеально dimeric coiled-coil последовательностей11 на N-и C-termini протеина, и серии 4 перегласовок пункта, мы произвели NEMO-EEAA, конструкцию полно dimeric и сложенную в свернутой катушке, которая спасла IKK-связывающе сродство к наномолярному диапазону как наблюдаемое для полной длины NEMO12. В качестве дополнительного преимущества мы надеялись, что адаптеры с кудрявых катушек (на основе последовательности GCN4) облегчат кристаллизацию и в конечном итоге помогут в определении структуры рентгеновского излучения с помощью молекулярной замены. Сонючие катушка адаптеры были аналогичным образом использованы как для повышения стабильности, улучшить поведение решения и облегчить кристаллизацию для тримерных скудных катушек и фрагментов антител13,14. NEMO-EEAA легко выражается и очищается от клеток Escherichia. coli с размытым тегом гистидина, растворяется, сложен в стабильную тусклую свернутую катушки и легко кристаллизуется, с дифракцией до 1,9 евро. Наличие упорядоченных спиральных катушек регионов GCN4 может дополнительно помочь в постепенном использовании данных из кристаллов NEMO-EEAA путем молекулярной замены с использованием известной структуры GCN415.
Учитывая результаты, полученные с apo-NEMO-EEAA, мы считаем, что описанные здесь протоколы также могут быть применены к кристаллизации NEMO-EEAA в присутствии небольших пептидов (например, пептида NBD) или малых ингибиторов молекулы, с целью понимания требований к ингибированию NEMO и структурной оптимизации первоначальных ингибиторов свинца к высокой сродости. Учитывая пластичность и динамичный характер многих доменов скудной катушки16,использование смоченной катушки адаптеры могли бы найти более общую применимость в оказании помощи структурного определения.
Попытки кристаллизации NEMO в несвязанной форме оказались безуспешными, включая попытки использования полноформатного белка и несколько конструкций усечения, охватывающих область, связывающую IKK. Наша биофизическая характеристика МКК-связывающей области NEMO (остатки 44-111) круговой дихр…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим профессора Д. Мэддена за многочисленные полезные дискуссии на протяжении всего проекта. Мы благодарим профессора Д. Болона за дар плазмиды, содержащей оптимизированную катушки GCN4. Мы благодарим доктора Б. Го за плазмиды NEMO. Мы благодарим Кристину Р. Арнольди, Тамар Басиашвили и Эми Кеннеди за демонстрацию процедуры. Мы благодарим БиоМТ Кристаллография Основной фонд и кафедры химии и биохимии и клеточной биологии в Дартмуте за использование кристаллографического оборудования и персонала BioMT за их поддержку. В этом исследовании использовалась линия луча AMX Национального синхротронного источника света II, Управления министерства энергетики США (DOE) Управления научных пользователей, работаемого для Управления науки Министерства энергетики США По линии Брукхейвенской национальной лаборатории по контракту No. ДЕ-SC0012704. Мы благодарим сотрудников NSLS II за их поддержку. Эта работа была профинансирована грантами NIH R03AR066130, R01GM133844, R35GM128663 и P20GM1131332, а также грантом Munck-Pfefferkorn Novel and Interactive.
20% w/v γ-PGA (Na+ form, LM) | Molecular Dimensions | MD2-100-150 | For fine screen crystallization of NEMO-EEAA |
3.5 kDa MWCO Dialysis Membrane | Spectra/Por | 132724 | For dialysis removal of imidazole |
Amicon Stirred Cell | Millipose Sigma | UFSC 05001 | For protein concentration |
Ammonium Chloride | Millipore Sigma | G8270 | For minimal media labeling |
Benzonase Nuclease | Millipore Sigma | 9025-65-4 | For digestion of nucleic acid |
BL21-CodonPlus (DE3)-RIL Competent Cells | Agilent Technologies | Model: 230245 | TEV expression |
CryoPro | Hampton Research | HR2-073 | Cryo-protectants kit |
D-Glucose (Dextrose) | Millipore Sigma | A9434 | For minimal media labeling |
Difco Terrific Broth | ThermoFisher | DF043817 | For culture growth |
Dithiothreitol > 99% | Goldbio | DTT25 | For reduction of disulfides |
E. coli: Rosetta 2 (DE3) | Novagen | 71400-3 | Expression of unlabeled NEMO-EEAA |
FORMULATOR | Formulatrix | Liquid handler/ screen builder | |
HCl – 1.0 M Solution | Hampton Research | HR2-581 | For fine screen crystallization of NEMO-EEAA |
HiLoad 16/600 Superdex 75 pg | GE Healthcare | 28989333 | For size exclusion purification |
HisTrap HP 5 mL column | GE Healthcare | 17524802 | For purification of His-tagged NEMO-EEAA |
HT 96 MIDAS | Molecular Dimensions | MD1-59 | For sparse matrix screening of NEMO-EEAA |
HT 96 Morpheous | Molecular Dimensions | MD1-46 | For sparse matrix screening of NEMO-EEAA |
Imidazole | ThermoFisher | 288-32-4 | For elution from His-trap column |
Isopropyl-beta-D-thiogalactoside | Goldbio | I2481C5 | For induction of cultures |
MRC2 crystallization plate | Hampton Research | HR3-083 | Crystallization plate |
NT8 – Drop Setter | Formulatrix | Crystallization | |
pET-16b | Millipore Sigma | 69662 | For cloning of NEMO-EEAA |
pET-45b | Millipore Sigma | 71327 | For cloning of NEMO-EEAA |
Phenylmethylsulfonyl fluoride | ThermoFisher | 36978 | For inhibition of proteases |
Polycarbonate Bottle for use in Ultracentrifuge Rotor Type 45 Ti | Beckmann Coulter | 339160 | Ultracentrifuge bottle |
Polyethylene Glycol 20,000 | Hampton Research | HR2-609 | For fine screen crystallization of NEMO-EEAA |
pRK793 (TEV) | Addgene | Plasmid 8827 | For TEV production |
QuikChange XL II | Agilent Technologies | 200522 | Site directed mutagenesis |
Required Cap Assembly: | Beckmann Coulter | 355623 | Ultracenttrifuge bottle cap |
ROCK IMAGER | Formulatrix | Crystallization Imager | |
Seed Bead Kit | Hampton Research | HR2-320 | Seed generation |
Sodium Chloride ≥ 99% | Millipore Sigma | S9888 | For buffering of purification solutions |
TCEP (Tris (2-Carboxyethyl) phosphine Hydrochloride) | Goldbio | TCEP1 | Reducing agent |
The Berkeley Screen | Rigaku | MD15-Berekely | For sparse matrix screening of NEMO-EEAA |
The PGA Screen | Molecular Dimensions | MD1-50 | For fine screen crystallization of NEMO-EEAA |
Tris – 1.0 M Solution | Hampton Research | HR2-589 | For fine screen crystallization of NEMO-EEAA |
Ultrapure Tris Buffer (powder format) | Thermofisher | 15504020 | For buffering of purification solutions |
Urea | ThermoFisher | 29700 | For denaturation of NEMO-EEAA |