המטרה הכללית שלנו היא להבין כיצד תאים התחושה מסחטות רמזים כי להוביל צמיחה סיבי מכוון. כאן, אנו מתארים את המתודולוגיה של adsorption מולקולרית המושרה אור של חלבונים, משמש כדי לייצר מיקרו דפוסים מוגדרים של מטריקס רכיבים מטריצות על מנת ללמוד אירועים ספציפיים השולטים אקסון הצמיחה ואת מציאת.
תאים חשים מגוון של רמזים לחילוץ, כולל הקומפוזיציה והגיאומטריה של מטריצה החילוץ, אשר מסונתז ושופצה על ידי התאים עצמם. כאן, אנו מציגים את השיטה של Adsorption מולקולרית אור המושרה של חלבונים (LIMAP) באמצעות מערכת פרימו כטכניקת הפנינג כדי לייצר מטריצה מיקרו בדוגמת מטריקס (ECM) מצעים באמצעות יחיד או שילוב של חלבונים. השיטה מאפשרת הדפסת תבניות ECM ברזולוציה של מיקרון עם מצוינות מעולה. אנו מספקים פרוטוקול צעד-אחר-צעד ומדגימים כיצד ניתן ליישם זאת כדי ללמוד את תהליכי האיתור העצבי. LIMAP יש יתרונות משמעותיים על פני שיטות הדפסה מיקרו הקיים במונחים של קלות הדפוס יותר מרכיב אחד ואת היכולת ליצור דפוס עם כל גאומטריה או הדרגתי. הפרוטוקול יכול בקלות להיות מותאם ללמוד את התרומה של כמעט כל רכיב כימי כלפי הגורל התא התנהגות התא. לבסוף, אנו דנים בסוגיות נפוצות שיכולות להיווצר וכיצד ניתן להימנע מכך.
בשנים האחרונות, המדע הביולוגי עשה יותר ויותר שימוש בהתקדמות שמספקת מדעי החומרים. דוגמה אחת בולטת היא המיקרו-מכשיר של מצעים, אשר ניתן להשתמש בהם כדי ללמוד תגובות סלולריות כגון הפצת תאים1,2, בידול3,4,מיכל 5,6, הגירת תאים7,8,9והפקודה הפתובה10,11. יש מספר טכניקות זמין המאפשרים את המיקרו-דפוס של מצעים, כגון פוטופוטון ההתרגשות רב-פוטכימיה12, AFM לטבול-עט ננוגרפיה13, סיכה והדפסה ישירה של הזרקת דיו14, הדפס קרן אלקטרונים15או מיקרופלואידיקה16. עם זאת, שתי טכניקות שבהן נעשה שימוש נרחב בשדה הביולוגי הן הדפסת מיקרומגע17,18,19או בעזרת מברק בעזרת לייזר3(איור 1). הדפוס בסיוע לייזר נחשב לספק תוצאות אמינות יותר במונחים של חלבון ו-יתד יציבות וכליאה התא על דפוסי, לעומת הדפסה microcontact20. גישה חדשנית יותר עבור מיקרו-הפנינג תיאר כאן הוא השימוש בספיחה מולקולרית המושרה של חלבונים21(LIMAP,איור 1 D) באמצעות מערכת זמינה מסחרית (פרימו,רשימת חומרים). לכל אחת מהשיטות יש יתרונות ומגבלות המתוארים להלן בקצרה. הדפסת מיקרומגע משתמשת בתבניות PDMS (בולים) עם מיקרו-תכונות הרצוי הנוצרות ממאסטרים ליטוגרף. בולים מודתמים עם חלבון נבחר אשר מועבר אז (חותמת) על מצע התרבות התא18(איור 1 קצת). מניקור באמצעות לייזר משתמש באור אולטרא סגול לקליב סרט אנטי-כסות22,23,24,25, חשיפת אזורים העשויים לאחר מכן להיות מצופים בחלבון הריבית (איור 1 B). בעוד שהרזולוציה הושגה עם גישות צילום, היא בטווח מיקרון25,26, רוב השיטות הללו דורשות מסכת צילום, במגע עם המדגם, או ממוקם במישור האובייקט של מטרת המיקרוסקופ23,27,28. הדרישות של מסיכות בהדפסה הן במיקרו-מגע והן בדפוס הצילום יכולות להיות מגבלה; מסיכות ספציפיות נדרשות עבור כל תבנית וגודל גיאומטריים, אשר עשוי להיות יקר וארוך זמן להפקת. בניגוד לטכניקות אלה, LIMAP אינו דורש מסכה (איור 1 D). שימוש במערכת פרימו עבור LIMAP יכול להיות אינטנסיבי בהתחלה, כי זה דורש רכישת ציוד. עם זאת, תוכנת קוד פתוח משמש לעיצוב דפוסים של כל הגיאומטריה הרצויה, מתן הרבה יותר חופש והתרת ניסויים מורכבים יותר כולל שימוש במעברי הצבע של ריכוז חלבונים. לייזר פרימו הוא נשלט ומכוון על ידי מכשיר micromirror הנשלט באופן דיגיטלי (DMD) כדי ליצור דפוסים בכל מספר של גיאומטריות מוגדרות על-ידי המשתמש. LIMAP דורש משטח התרבות להיות מצופה במולקולות המונעות מצורף לתא. פוליאתילן גליקול (יתד) הוא הנפוץ ביותר כגון “התרופה” מגיב; זה יוצר סרט צפוף נגד דבקים על משטח הזכוכית או הפלסטיק29. לאחר מכן, מאתחל תמונה מתווסף המאפשר את הסרט יתד להיות מוסר עם דיוק גבוה באמצעות מנגנון המספריים לצילום30על ידי חשיפה מקומית לאור UV תחת השליטה של DMD. אלה אזורים ללא יתד יכול להיות מצופה חלבונים כי ספוח לפני השטח חרוט לייזר, יצירת דפוס מיקרו. על ידי שינוי כוח הלייזר, כמויות שונות של יתד ניתן להסיר מן המשטח המאפשר למשתמש ליצור מעברי צבע חלבון. הסרת פג ואת ההליך ציפוי יכול לחזור ליצור דפוסים עם שניים או יותר חלבונים ברורים באותו מיקרו-באר21. מיקרו דפוסי שנוצר לספק משטחי דבק עבור תאים, המאפשר לימוד של התנהגות התא. במחקרים שלנו, אנו משתמשים מיקרו-העמקה כדי ללמוד neurite או אקסון החיפוש של קו התאים העצבי (CAD (כתיב) תאים הבדיל31) או החולדה הראשית השורש גנגליון (DRG) נוירונים, בהתאמה. כאן, אנו מתווה פרוטוקול צעד-אחר-צעד עבור LIMAP (איור 2) באמצעות מערכת פרימו הזמינה באופן מסחרי וליווי תוכנת לאונרדו. אנו מדגימים כיצד ניתן להשתמש בו ליצירת דפוסים בעלי גיאומטריות מוגדרות ומספר חלבונים, שבהם אנו משתמשים כדי ללמוד את מציאת הדגם. אנו דנים בסוגיות נפוצות שיכולות להיווצר וכיצד ניתן להימנע מכך.
LIMAP (פרימו) מיקרו-מחשב יתרונות והשוואה עם הדפסת מיקרומגע
בעוד הדפסה microcontact היא אולי השיטה הנפוצה ביותר בשימוש במיקרו-מיקרונינג בשדה הביולוגי39, נראה שיש מספר גדל והולך של חוקרים באמצעות limap טכנולוגיה40,41,42 ,43,44. כאן, הצגנו פרוטוקול באמצעות פרימו, מערכת זמינה מסחרית עבור LIMAP. בהמשך אנו דנים בקצרה על יתרונות פוטנציאליים ומגבלות של הדפסת מיקרואיש קשר ו-LIMAP צילום-מניפולציה.
הדפסה microcontact מחייב מאסטרים ליטוגרף המיוצר על ידי ציפוי ספין מסכת צילום (בדרך כלל SU-8) על זכוכית או סיליקון וופל, אשר לאחר מכן לייזר חרוט עם מיקרו תכונות הרצוי. מאסטרים אלה משמשים כתבניות כדי ליצורמ45בחותמת pdms. החותמת היא מודלת עם חלבון שנבחר כי adsorbs זה, והוא מועבר לאחר מכן (חותמת) על הצלחת תרבות התא. תהליך הספיחה של החלבון לחותמת PDMS תלוי בריכוז חלבונים, מאגר וזמן דגירה. פרמטרים אלה צריכים להיבדק מראש לקבלת תוצאות מיטביות46.
מאסטרים יכולים לשמש במספר משמעותי של ניסויים, שנמשך חודשים או אפילו שנים, אם נשמר כראוי. עם זאת, גורם מגביל של טכנולוגיה זו הוא הצורך לעצב מחדש מאסטרים חדשים של ליטוגרף עבור כל שינוי רצוי. שינויים בעיצובים ניסיוניים עשויים לגרום לייצור זמן רב של מאסטרים חדשים (עד מספר שבועות) ובכך לעכב ניסויים. לעומת זאת, לימפה פוטואטנינג אינו דורש מאסטר פיזי; היא משתמשת בתבניות דפוס שנוצר על ידי תוכנות שניתן להשתמש בהן כדי להתאים בגמישות הרצוי של מיקרו דפוסים כדי לשנות שאלות מחקר. LIMAP ניתן להשתמש גם כדי ליצור מעברי חלבון בתוך אותו מיקרו דפוס (איור 8), אשר קשה יותר להשיג באופן הניתן לשימוש באמצעות microcontact הדפסה47.
יתר על כן, הרזולוציה מיקרו דפוס השיגה עם limap, במקרה שלנו, הוא 2 יקרומטר (איור 6ב).
התקרבות לרזולוציה זו הגדילה את השונות הפנימית והבין-לדפוס. הפקת דפוסים סביב או מעל 10 יקרומטר רוחב היה מאוד מיותר (איור 6G, H). להיפך, עם הדפסה microcontact קשה לקבל בעקביות החלטות מתחת 10 יקרומטר והוא נפוץ למצוא חפצי אמנות בעת הטבעת תכונות קטנות (נתונים לא מוצגים).
הראינו כי LIMAP ניתן להשתמש מיקרו דפוס חלבונים מרובים (איור 9) בתוך אותו מיקרו-באר, המאפשר רמות נוספות של מורכבות להתווסף ניסויים. למרות שזה יכול להיות מושגת עם הדפסה microcontact, יישור חלבונים שונים עם רמה גבוהה של דיוק יכול להיות מבחינה טכנית תובענית למדי. בעוד מפרט חלבונים מרובים באמצעות LIMAP נראה ישר קדימה, חשוב לציין כי הכלאה של חלבונים באמצעות הליכי ציפוי רציפים ניתן לצמצם באמצעות חוסם ריאגנטים אך לא לחלוטין סולק (איור 9).
לגבי העלות של הטכניקה אחת או אחרת, LIMAP כפי שמתואר כאן דורש רכישה של ציוד מיקרו הרנינג (פרימו) כי ניתן להתקין על מיקרוסקופים פלואורסצנטית שונים ודורש שלב ממונע. למרות שהשקעה זו עולה בתחילה באופן אינטנסיבי, אין רכישות נוספות מלבד פריטים מתכלים (סטנסילים, פג ו-PLPP) בטווח הארוך המשויך LIMAP. לחילופין, הסטנסילים של pdms יכולים להיות מיוצרים גם במעבדה על ידי הניסויים האחרים שפורסמו בעקבות הפרוטוקולים המתפרסמים18,32. העלויות הגדולות ביותר עבור הדפסה של microcontact עשויות להיות משויכות לייצור מאסטרים חדשים, שיכולים להיות משמעותיים אם הניסויים דורשים דפוסים חדשים.
חיסרון אחד של LIMAP היא גישת תפוקה נמוכה יחסית של טכניקה זו. הדפסת מיקרו-מגע יכולה להפיק מספר רב של מיקרו-תבניות במהירות וביעילות בשלב הטבעה סימולטני, בהשוואה למיקרו-מיקרו הלייזר הנדרש עם LIMAP. לדוגמה, ניתן לייצר 6 כיסוי זכוכית מוטבע בתוך כ 2 h עם הדפסה microcontact באמצעות בולים PDMS (למעט הכנה בחותמת); מפענח אזור דומה (6-היטב צלחת) עם LIMAP ייקח כ 4 שעות, למעט ההליך של פסיבציה פני השטח (בהתחשב בתצורה של תבנית דפוס המתואר בשלב 5.12 ולראות איור 5ב).
מקדם הגבלת קצב נוסף של טכנולוגיית LIMAP היא זמן התאורה הארוך הנדרש עבור המעצבים אזורים גדולים (30 s לכל יחידת עיצוב עם 7.5 mW/mm2 לייזר). במקרים אלה, הדפסה של מיקרואנשי קשר עשויה להיות אפשרות מועדפת. חדש זמין ליוזם תמונה (ג’ל PLPP, טבלה של חומרים) צריך במידה ניכרת להפחית את הזמן שנלקח הדפוס, המאפשר את הדור של מאות מיקרו-דפוסים באזורים גדולים (עד 8 מ”מ2) בתוך דקות ספורות.
גורם חשוב נוסף לקחת בחשבון כאשר משטחי מיקרו לתרבות התאים הוא הופך את הצורה החוזרת של דפוסי מיקרו בקרב ניסויים שונים חוזר, בהשוואה לשונות שהתקבלו עם הדפסה microcontact. לדוגמה, הגרפים המוצגים באיור 7ב, D מייצגים נתונים של שלושה מזהים חוזרים ניסיוניים בעלי תוצאות דומות מאוד (נתונים לא מוצגים). בהתבסס על הניסיון שלנו הפרסומים הקודמים, רמה זו של התוכסות קשה להשיג עם microcontact הדפסה48,49,50,51,52.
בניגוד לטכניקות צילום אחרות הדורשות כימיה ייעודית למהנדס חומרים רגישים לאור או שימוש בתמונות רגישות, שבדרך כלל אינן תואמות באופן ביולוגי3, המרכיב הרגיש לאור של limap (plpp ) הוא ביולוגי תואם ונסבל היטב על ידי תאים21; בידינו לא חווינו כל הרעילות ציטובית על פני מגוון של תאים, כולל CAD, הנוירונים DRG (איור 10), פיברותקיעות, תאים אפיתל, ותאי מלנומה (נתונים לא מוצגים). יתרון נוסף של LIMAP באמצעות פרימו בהשוואה לטכניקות צילום אחרות של התמונה היא כי לא מפובקש נדרש. בדומה הדפסה microcontact, פושאול חדש צריך להיות מעוצב ומיוצר עבור כל דפוס רצוי.
כל המגבלות שהוזכרו לעיל עבור הדפסה מיקרו-מגע, עיין בגישה הידנית של הטכניקה. עם זאת, ניתן לשפר את התפוקה ואת השגות של הדפסה מיקרומגע באמצעות מכשיר אוטומטי עם עומס בולים ובקרת לחץ53.
שלבים מרכזיים של הפרוטוקול ופתרון הבעיות עבור LIMAP באמצעות פרימו
אחת הבעיות הנפוצות ביותר שנמצאו במהלך פרוטוקול זה היא שיש רמות גבוהות של הרקע בתוך מיקרו דפוסים. זה יכול להיות בגלל ייבוש מתוך מיקרו בארות אשר לעיתים קרובות מתרחשת בשל הנפח הקטן שלהם. כאשר הדבר מתרחש, קריסטלים של PBS מופיעים לעיתים קרובות סביב דפוסי ECM (איור 11א).
שלבי הכביסה לא מספיקים או לא יעילים לאחר דגירה של חלבון יכול גם לגרום לרמות גבוהות של זריחה ברקע. זה יכול להיות נצפתה במיוחד על ידי שימוש בריכוזי חלבון של 10 μg/mL (איור 11ב) או גבוה יותר. עודף חלבון ברקע יכול להיות מופחת על ידי כולל שטיפת כביסה נוספת עם PBS.
הנוכחות של רקע חלבון צריך להיות נמדד ומאופיין בכל ניסוי, חישוב עוצמת הזריחה ברקע (איור 6E) והפחתת זה מן העוצמה מיקרו דפוסי (איור 6F-H ואיור 7ב, ד). רקע חלבון גבוה עלול להשפיע על הקובץ המצורף ולבלוב של תאי CAD, להתפשר על הפרשנות של תוצאות.
הפערים בין יחידות העיצוב היא בעיה נפוצה כאשר למשתמשים יש ניסיון מוגבל (איור 11ב’), המתרחשת כתוצאה מחפיפה לא מספקת בין תבניות. ניתן לכוונן שני פרמטרים בתוכנת לאונרדו כדי להתגבר על זה: 1) מרווח שלילי בין העמודות עשוי להידרש, בהתאם לעיצוב התבנית (שלב 5.7 וראה איור 5ב, ג). לחלופין, 2) השתמש באפשרות מעבר הצבע בתפריט מומחה כדי לתפור את העמודות. בדיקה מהירה כדי לקבוע את פרמטרי הריווח האופטימלי ניתן לבצע באמצעות דבק UV (טבלת חומרים). טיפה קטנה של דבק זה מוחל על שקופית זכוכית, אשר מכוסה לאחר מכן עם שמיכות זכוכית, עשיית סרט. דבק UV מוטבע הוא photopatterned עם תבנית דפוס של עניין באמצעות מינון לייזר נמוך (30 mJ/mm2). את האזורים החשופים של הדבק המוטבע ניתן לרפא ולהפוך לגלויים במיקרוסקופ שדה בהיר. תוצאות הבדיקה מדמיינו להעריך את המרווח המתקבל בתבנית. בניסויים העצביים שלנו, פער בין פסים עלול להשפיע לרעה על התנהגות התא, ולייצר וריאציות בדינמיקה של גדילה (מהירות מופחתת או נטישה של הנתיב).
בעדכון האחרון של התוכנה לאונרדו (בזמן הפרסום, לאונרדו 4.11), ניתן לטעון בעבר מתוכנן תבניות תבנית גדולה יותר המכסה שטח גדול הרבה יותר (עד 8 מ”מ2 באמצעות המטרה 20x) של משטח מיקרו-באר לעומת 0.1 mm הנוכחי2 לכל יחידת עיצוב, ביטול הצורך לתפור יחד את יחידות עיצוב קטן יותר. קצוות לא מוגדרים עלולים לנבוע מחוסר התאמה של מיקוד לייזר במהלך יצירת תבניות (איור 11ג). לכן חיוני לכייל את הלייזר ולבצע שלבי דפוס התייחסות (ראה שלב 4) לפני הדפוס. פסים מוגדרים לקוי התוצאה של וריאציות ברוחב פס, מה שהופך את הקורלציה בין דינמיקת הצמיחה אקסון ורוחב פסים קשה. Axons גם נוטים לנטוש פסים כי יש קצוות מתפזרת. בנוסף, השונות בקצוות ניתן למצוא גם בעת הדפסת פסים של 10-20 יקרומטר רוחב או גבוה יותר, וכתוצאה מכך תוכן חלבון גבוה יותר בקצוות בהשוואה לאזורים המרכזיים של התבנית (איור 6B, D). אפקט קצה זה מופק על-ידי דיפוזיה שאינה אחידה של יוזם התמונה במהלך תהליך פוטואטטרנינג. תגובת התמונות היא תלוית חמצן, אשר מפזרת יותר בקצוות. אפקט קצה זה יכול להיות ממוזער הומוגניזציה צילום-יוזם עם פיפטה ב מיקרו-גם במהלך התהליך photopatterning. יתר על כן, תמונה חדשה ממוסחר מחדש (ג’ל PLPP), יכול גם להפחית את אפקט הקצה (צוות התמיכה של מערכת פרימו, תקשורת אישית).
מיקרו-הדפסה של יותר מחלבון אחד יכול לגרום החוצה מחייב (איור 9א-ד). ניתן למזער זאת על-ידי הגברת היעילות החוסמת המשמשת לתפוס אתרי קשירה לא ספציפיים בין הצעדים הדגירה של שני החלבונים השונים. מחייב החוצה של חלבונים יכול לperturb בלתי מנוצח של תוצאות ניסיוני עלול להוביל וטעה של נתונים, מאז קשה לקבוע את התרומה של כל חלבון כדי הדינמיקה הצמיחה אקסון והתנהגויות תאים אחרים.
מסקנה
אנו מקווים כי הפרוטוקול שסופקו באמצעות LIMAP מקלה על הדור של מיקרו תבניות חלבון באמצעות מערכת פרימו. בעוד הפרוטוקול שלנו מתמקד כיצד לייצר באופן אמין מיקרו דפוסים ב-2D משטחי זכוכית, אחרים הראו כי ניתן להשתמש LIMAP עבור מיקרו דפוס של מצעים רכים54, ומשטחים מובנים מיקרו עבור תרבויות תלת-ממד42. אלה מיקרו דפוסי יכול להיות כלי רב-תכליתי כדי ללמוד תגובות הסלולר שינויים במיקרו-סביבה שלהם.
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכת על ידי BBSRC, EPSRC, MRC וברוכים האמינים. המעבדה הרדיו אזרחי מהווה חלק ממרכז יחסי האמון של מחקר התאים, אוניברסיטת מנצ, הנתמכת על-ידי מימון הליבה מיחסי האמון (גרנט מספר 088785/Z/09/Z). המחברים מבקשים להכיר במימון המסופק על ידי המועצה למחקר ביוטכנולוגיה ומדעי ביולוגי (BBSRC) ל-C.M., K.J. (BB/M020630/1) ו-הוראות (BB/P000681/1) ועל ידי המועצה למחקר פיסי ומדעי הנדסי (EPSRC) ורפואי מועצת המחקר (MRC) מרכז להכשרה לדוקטורט ברפואת משובי לA.K. (EP/L014904/1). המחברים מודים לAlvéole על התכתובת שלהם ועל צוות התמיכה שלהם אחרי המכירה. המחברים מודים לפיטר מרץ ורוג כרי דשא ממתקן Bioimaging, אוניברסיטת מנצ על עזרתם עם המיקרוסקופיה. מיקרוסקופ מתקן Bioimaging המשמשים במחקר זה נרכשו עם מענקים של BBSRC, ברוכים האמינים ואוניברסיטת מנצ הקרן האסטרטגית.
Alexa 488 protein labeling kit | Invitrogen | A10235 | Working concentration: N.A. |
Alexa 647 protein labeling kit | Invitrogen | A20173 | Working concentration: N.A. |
CAD cells | ECACC | 8100805 | Working concentration: N.A. |
Conjugated fibrinogen-488 | Molecular Probes | F13191 | Working concentration: 10 μg/ml |
DMEM culture medium | Gibco | 11320033 | Working concentration: N.A. |
Epifluorescence Microscope** | Nikon | Eclipse Ti inverted | Working concentration: N.A. |
Fibronectin | Sigma | F4759 | Working concentration: 10 μg/ml (after labelling with Alexa 488 protein labeling kit, see above) (diluted in PBS) |
Fiji-Image J | www.imagej.nih.gov | Version 2.0.0-rc-54/1.51f | Working concentration: N.A. |
Fluorescent highlighter | Stabilo | Stabilo Boss Original | Working concentration: N.A. |
HEPES | Gibco | 15630080 | Working concentration: 1M |
Inkscape software | Inkscape | Check last update | Working concentration: N.A. |
Laminin-red fluorescent rhodamine | Cytoskeleton, Inc. | LMN01 | Working concentration: 10 μg/ml (diluted in PBS) |
Leonardo software | Alvéole | version 4.11 | Working concentration: N.A. |
L-Glutamine | Sigma | G7513 | Working concentration: 1% |
Micro-manager software | Open imaging | Check last update | Working concentration: N.A. |
Motorized x/y stage | PRIOR Scientific | Proscan II | Working concentration: N.A. |
NIS Elements Software | Nikon | NIS Elements AR 4.60.00 64-bit (With Nikon jobs) | Working concentration: N.A. |
PBS (without Ca2+, Mg2+) | Sigma | D8537 | Working concentration: 1X |
PDMS Stencils | Alvéole | visit www.alveolelab.com | Working concentration: N.A. |
PEG-SVA | Laysan bio, Inc. | MPEG-SVA-5000-1g | Working concentration: 50 mg/ml |
Phalloidin 405 | Abcam | ab176752 | Working concentration: 1:1000 |
Photo-initiator (PLPP) | Alvéole | Classic PLPP | Working concentration: 14.5 mg/ml |
Photo-initiator (PLPP gel) | Alvéole | PLPP gel | Working concentration: 4.76% diluted in ethanol |
Plasma cleaner | Harrick Plasma | PDC-32G (115V) | PDC-32G-2 (230V) | Working concentration: N.A. |
PLL-PEG | SuSoS (also distributed by Alvéole) | www.alveolelab.com | Working concentration: 0.1 mg/ml (diluted in PBS) |
Poly-L-Lysine | Sigma | P4707 | Working concentration: 0.01% |
Primo equipment | Alvéole | www.alveolelab.com | Working concentration: N.A. |
Pen/Strep | Thermo Fisher | 15140122 | Working concentration: 1% |
Tubulin anti-alpha antibody | Abcam | DM1A | Working concentration: 1:1000 CAD cells |
Tubulin anti-beta 3 antibody | Sigma | T8660 | Working concentration: 1:500 DRG neurons |
UV adhesive | Norland Products | NOA81 | Working concentration: N.A. |
1 well glass bottom dish | Cellvis | D35-20-1.5-N | Working concentration: N.A. |
6 well glass bottom dish | Cellvis | P06-20-1.5-N | Working concentration: N.A. |
20x objective** | Nikon | no phase ring (check updated catalogue) | Working concentration: N.A. **Epifluorescence microscope: images were acquired and patterns were generated on an Eclipse Ti inverted microscope (Nikon), coupled to PRIMO micro-patterning equipment (Alvéole), using a 20x objective (0.75 S Plan Fluor (nophasering, Nikon). Nikon specific filter sets for GFP, mCherry and Cy5 were used and fluorescent light source was LED (Lumencor) although other fluorescence sources and filter sets can be used. The microscope has an automated x/y stage (PRIOR Scientific) for the printing of multi-field patterning and Nikon Perfect Focus to prevent focus drift. The images were collected using a Retiga R6 (Q-Imaging) camera. |