Summary

In Vivo Forward Genetic Screen to Identify Novel Neuroprotective Genes in Drosophila melanogaster In Vivo Forward Genetic Screen to Identify Novel Neuroprotective Genes in Drosophila melanogaster In Vivo Forward Genetic Screen to Identify Novel Neuroprotective Genes in Drosophila melanogaster In Vivo

Published: July 11, 2019
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Summary

Nous présentons un protocole utilisant une approche génétique avancée au dépiste pour des mutants présentant la neurodégénérescence dans le melanogaster de Drosophila. Il intègre un test d’escalade, l’analyse histologique, la cartographie des gènes et le séquençage de l’ADN pour finalement identifier de nouveaux gènes liés au processus de neuroprotection.

Abstract

Il y a beaucoup à comprendre au sujet de l’commencement et de la progression des maladies neurodegenerative, y compris les gènes sous-jacents responsables. Le dépistage génétique à l’aide de mutagènes chimiques est une stratégie utile pour cartographier les phénotypes mutants aux gènes de Drosophila et d’autres organismes modèles qui partagent des voies cellulaires conservées avec les humains. Si le gène muté d’intérêt n’est pas mortel dans les premiers stades de développement des mouches, un test d’escalade peut être effectué pour dépister les indicateurs phénotypiques de la diminution du fonctionnement du cerveau, tels que de faibles taux d’escalade. Par la suite, l’analyse histologique secondaire du tissu cérébral peut être exécutée afin de vérifier la fonction neuroprotective du gène en marquant des phénotypes de neurodégénérescence. Les stratégies de cartographie génique comprennent la cartographie méiotique et la carence qui s’appuient sur ces mêmes essais peuvent être suivies d’un séquençage de l’ADN pour identifier les changements possibles des nucléotides dans le gène d’intérêt.

Introduction

Les neurones sont pour la plupart post-mitotiques et incapables de diviser1,2. Chez la plupart des animaux, des mécanismes neuroprotecteurs existent pour maintenir ces cellules tout au long de la vie de l’organisme, en particulier à la vieillesse lorsque les neurones sont les plus vulnérables aux dommages. Les gènes sous-jacents à ces mécanismes peuvent être identifiés chez les mutants présentant une neurodégénérescence, un indicateur phénotypique de la perte de neuroprotection, à l’aide d’un protocole génétique avancé. Les écrans génétiques avancés utilisant des mutagènes chimiques tels que le méthane sulfonate éthylique (EMS) ou le N-éthyl-N-nitrosourea (ENU) sont particulièrement utiles en raison des mutations ponctuelles aléatoires qu’ils induisent, résultant en une approche intrinsèquement impartiale qui a mis en lumière de nombreuses fonctions génétiques dans les organismes modèles eucaryotes3,4,5 (en revanche, la mutagénèse des rayons X crée des ruptures d’ADN et peut entraîner un réarrangement plutôt que des mutations ponctuelles6).

La mouche commune des fruits Drosophila melanogaster est un sujet idéal pour ces écrans en raison de sa haute qualité, séquence du génome bien annoté, sa longue histoire en tant qu’organisme modèle avec des outils génétiques très développés, et surtout, son partagé histoire évolutive avec les humains7,8. Un facteur limitant dans l’applicabilité de ce protocole est la létalité précoce causée par les gènes mutés, ce qui empêcherait les tests à l’âge de9ans . Cependant, pour les mutations non létales, un test d’escalade, qui tire parti de la géotaxie négative, est une méthode simple, bien que vaste, de quantifier le fonctionnement moteur altéré10. Pour montrer une réactivité locomotrice suffisante, les mouches dépendent des fonctions neuronales pour déterminer la direction, sentir sa position et coordonner le mouvement. L’incapacité des mouches à grimper suffisamment en réponse à des stimuli peut donc indiquer des anomalies neurologiques11. Une fois qu’un phénotype d’escalade défectueux particulier est identifié, d’autres essais utilisant un écran secondaire tel que l’analyse histologique du tissu cérébral, peuvent être employés pour identifier la neurodégénérescence dans les mouches grimpantes-défectueuses. La cartographie génétique ultérieure peut ensuite être utilisée pour révéler la région génomique sur le chromosome porteur du gène neuroprotecteur défectueux d’intérêt. Pour réduire la région chromosomique d’intérêt, la cartographie méiotique utilisant des lignées de mouches mutantes portant des gènes marqueurs dominants avec des emplacements connus sur le chromosome peut être effectuée. Les gènes marqueurs servent de point de référence pour la mutation car la fréquence de la recombinaison entre deux loci fournit une distance mesurable qui peut être utilisée pour cartographier l’emplacement approximatif d’un gène. Enfin, le franchissement des lignes mutantes avec des lignes portant des déficiences équilibrées sur la région chromosomique méiotatiquement cartographiée d’intérêt crée un test de complémentaration dans lequel le gène d’intérêt peut être vérifié si son phénotype connu est exprimé5. Les séquences de nucléotides polymorphes dans le gène identifié, ce qui pourrait entraîner une modification des séquences d’acides aminés, peuvent être évaluées en séquençant le gène et en le comparant à la séquence du génome de Drosophila. La caractérisation ultérieure du gène d’intérêt peut inclure l’essai d’allèles mutants supplémentaires, des expériences de sauvetage de mutation et l’examen de phénotypes additionnels.

Protocol

1. Préparation et vieillissement des mouches Obtenir ou générer6 une collection de mutants Drosophila qui seront utilisés pour l’écran génétique. Ici, des lignes ENU-mutagénisées cartographiées au deuxième chromosome et équilibrées au-dessus de CyO sont employées. Amplifiez les lignées expérimentales de génotype dans un incubateur réglé à 25 oC, cycle de 12 h de lumière/obscurité sur le milieu de la mélasse de maïs. Recueillir…

Representative Results

Dans cet aerticle, nous présentons les étapes utilisées pour identifier la tumeur du cerveau gène (brat) comme jouant un rôle dans le maintien de l’intégrité neuronale (par exemple, la neuroprotection) chez les mouches adultes17; une méthodologie qui peut être utilisée pour identifier les gènes impliqués dans la neuroprotection. Nous avons utilisé une approche génétique avancée (la stratégie est décrite dans …

Discussion

Les écrans génétiques avancés dans Drosophila ont été une approche efficace pour identifier les gènes impliqués dans différents processus biologiques, y compris la neuroprotection dépendante de l’âge5,23,24, 25. En utilisant cette stratégie, nous avons réussi à identifier brat comme un nouveau gène neuroprotecteur17.

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Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous sommes particulièrement reconnaissants au Dr Barry Ganetzky, dans qui est le laboratoire de l’écran génétique a été effectué, permettant l’identification et la caractérisation de l’enfant comme un gène neuroprotecteur. Nous remercions le Dr Steven Robinow d’avoir gentiment fourni la collection de mouches mutagénaires ENU utilisées dans l’écran génétique présenté dans cet article. Nous remercions les membres du laboratoire Ganetzky, les Drs Grace Boekhoff-Falk et David Wassarman pour les discussions utiles pendant toute la durée de ce projet, Ling Ling Ho et Bob Kreber pour l’assistance technique, le Dr Aki Ikeda pour l’utilisation de son installation de microtome à la L’Université du Wisconsin et le Dr Kim Lackey et le Centre d’analyse optique de l’Université de l’Alabama.

Materials

Major equipment
Fume hood for histology
Light Microscope Nikon Eclipe E100 Preferred objective for imaging is X20
Imaging software Nikon
Microscope Camera Nikon
Thermal cycler Eppendorf
Fly pushing and climbing assay
VWR® Drosophila Vial, Narrow VWR 75813-160
VWR® General-Purpose Laboratory Labeling Tape VWR 89097-912
Standard mouse pad
Stereoscope Motic Model SMZ-168
CO2 anesthesia station (Blowgun, foot valve, Ultimate Flypad) Genesee Scientific 54-104, 59-121, 59-172 Doesn’t iinclude CO2 tank
Fine-Tip Brushes SOLO HORTON BRUSHES, INC.
Drosophila Incubator VWR 89510-750
Gene mapping
CantonS Bloomington Drosophila Stock Center 9517
w1118 Bloomington Drosophila Stock Center 5905
yw  Bloomington Drosophila Stock Center 6599
Drosophila line used for recombination mapping Bloomington Drosophila Stock Center 3227 Genotype: wg[Sp-1] J[1] L[2] Pin[1]/CyO, P{ry[+t7.2]=ftz/lacB}E3
CyO/sno[Sco]  Bloomington Drosophila Stock Center 2555 Drosophila balancer line used for recombination mapping
Deficiency Kit for chromosome 2L Bloomington Drosophila Stock Center DK2L Cook et al., 2012
Histology analysis
Ethanol, (100%) Thermo Fischer Scientific A4094
Chloroform Thermo Fischer Scientific C298-500
Glacial Acetic Acid Thermo Fischer Scientific A38-500
Fisherbrand™ Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Thermo Fischer Scientific 05-408-129
Histochoice clearing agent 1X VWR Life Sciences 97060-934
Harris Hematoxylin VWR 95057-858
Eosin VWR 95057-848
Thermo Scientific™ Richard-Allan Scientific™ Mounting Medium Thermo Scientific™ 4112 22-110-610 CyO/sna[Sco]
Unifrost Poly-L-Lysine microscope slides, 75x25x1mm, EverMark Select Plus Azer Scientific
Fisherbrand™ Cover Glasses: Rectangles Fisherbrand 12-545M Dimensions: 24×60 mm
Traceable timer VWR
Slide Warmer Barnstead International model no. 26025
Slide tray and racks DWK Life Sciences Rack to hold 20 slides
Fisherbrand™ General-Purpose Extra-Long Forceps Fisherbrand 10-316A
Kimwipes™ Kimberly-Clark™ Professional 
6 inch Puritan applicators Hardwood Products Company, Guilford, Maine 807-12
VWR® Razor Blades VWR 55411-050
Tupperware or glass containers for histology liquids 16 + 1 for running water
High Profile Coated Microtome Blades VWR 95057-834
Corning™ Round Ice Bucket with Lid, 4L Corning™
Beaker Or other container for ice water and cassettes
Tissue Bath Precision Scientific Company 66630
Microtome Leica Biosystems
Molecular analysis
Wizard® SV Gel and PCR Clean-Up System Promega A9282
Ex Taq DNA polymerase TaKaRa 5 U/μl
Invitrogen™ SYBR™ Safe™ DNA Gel Stain   Invitrogen™
UltraPure™ Agarose  Invitrogen™
1 Kb Plus DNA Ladder  Invitrogen™
ApE-A plasmid Editor software Available for free download
Statistical analysis
R software package
Further analysis
y[1] w[*]; wg[Sp-1]/CyO; Dr[1]/TM3, Sb[1] Bloomington Drosophila Stock Center 59967

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Diesen Artikel zitieren
Gevedon, O., Bolus, H., Lye, S. H., Schmitz, K., Fuentes-González, J., Hatchell, K., Bley, L., Pienaar, J., Loewen, C., Chtarbanova, S. In Vivo Forward Genetic Screen to Identify Novel Neuroprotective Genes in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (149), e59720, doi:10.3791/59720 (2019).

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