需要进行胚泡活检和保并口授,以便有效地进行植入前基因检测。一种方法,导致在授精后的第5-7天连续打开区域细胞和检索7-8个营养细胞,限制了所需的操作次数和胚胎在次优环境条件下的暴露。
在IVF周期内进行胚泡活检,通过植入前基因测试获得可靠的基因诊断。然后,理想的工作流程需要一个安全有效的牙化协议,由于诊断技术的周转时间,并在下面的自然周期中在生理子宫内膜上移植选定的胚胎。活检方法包括连续打开区域细胞和检索5-10个营养细胞(理想情况下为7-8)限制所需的操作数量和胚胎在次优环境条件下的暴露。经过适当的训练后,该技术在不同的操作者之间可重复活检的时间(±8分钟,根据每盘的胚胎数量进行活检3-22分钟),获得结论性诊断(+97.5%)和玻璃化加热的花体胚泡转移后活产率(>40%)。活检、硝化和变暖后的存活率高达99.8%。气候变暖后1.5小时的再膨胀率高达97%,主要取决于活检和抗化(理想情况下为±30分钟)、胚泡形态质量和活检日之间的时间。一般来说,最好对坍塌的胚泡进行压化;因此,在非PGT周期中,可以进行激光辅助人工收缩,以诱导胚胎在冷冻保存前崩溃。最有希望的未来观点是,在胚泡培养后对IVF培养基进行非侵入性分析,作为胚胎DNA的假定来源。然而,这种潜在的前卫仍在调查之中,还需要定义和验证一个可靠的协议。
现代人类胚胎学的主要目标是使每个刺激周期的活产数量最大化,并降低成本、时间和实现怀孕的努力。为了实现这一目标,应采用经验证的胚胎选择方法,在IVF周期中获得的一组胚胎中确定具有生殖能力的胚胎。根据最新证据,胚泡培养1结合全面的染色体检测和玻璃化加热的幼倍体胚胎移植(ET)是提高IVF效率的最有效框架2。显然,非倍体试验需要胚胎标本,目前主要代表从营养素(TE)中检索到的细胞,即囊胚中给予妊娠期间胚胎附件(例如胎盘)来源的部分.除了核类型分析,还可以从TE活检中评估单个基因突变,作为称为植入前基因测试的临床策略的一部分(PGT;-A用于非倍体,-SR用于结构染色体重组,-M用于单源性疾病)。其他卵母细胞/胚胎活检方法在过去几十年中已被进行解剖和临床采用,即极性身体活检和卵波粒活检。然而,现在减少了它们的使用,因为它们的程序性缺陷(例如,更高的工作量和生殖影响的风险)和诊断限制(例如单细胞分析问题)隐含地阻碍了成本、风险和好处(有关审查,请参阅3)。
在本文中,对TE活检的主要方案之一以及随后所需的保质化、加热和转移程序进行了详尽描述。此处概述的工作流非常适合繁忙的 PGT 单元。
如我们组4,5前面所述,该过程涉及完全扩张的胚泡的分子的连续打开和去除少数TE细胞(平均7-8)。与第3天激光辅助孵化为基础的胚泡活检方法6相比,这个程序可以简化IVF单元的日常时间表,其中必须及时执行诸如胚泡活检和葡萄光化等精细程序。一旦胚泡达到其完全膨胀,活检可以通过选择TE细胞进行去除,从而防止内细胞质量(ICM)的增生风险,否则会使手术具有挑战性。在文献中,也描述了胚泡活检的第三个方案,即一旦胚胎到达胚泡阶段,在手术5、7前几个小时进行激光辅助孵化。然而,这种方法更耗时,主要适合在经验有限的操作员手中实施TE活检的IVF单元,并且考虑到日工作量适中。
如果旨在进行IVF中的遗传分析,则细胞内体精子注射(ICSI)8应该是一种综合技术。同样,一个适当的培养系统,安全地将胚胎收获到胚泡阶段,对于实施TE活检策略也至关重要。足够数量的培养箱,以及使用低氧张力是这个目的的关键先决条件,不损害胚泡率9。同时,需要一个有效的冷冻保存程序来安全地管理PGT周期。在过去的十年中,牙化的实施提高了胚胎的存活率,甚至高达>99%10,11。这提供了足够的时间进行基因测试,并将胚胎移植推迟到下面的月经周期,在非刺激和可能更容易接受的子宫内膜12。
TE 活检和 Vitaita 化都是要求严格技能的任务,其有效性可能因经验不足的操作员而异。因此,在允许每个操作员临床执行这些程序之前,提倡一个特定的培训期;此外,应定期通过监测冷冻保存和活检程序的关键绩效指标(KPI)来评估操作人员技能的维持情况。每个IVF诊所应为此设置内部KPI,其中必须近似于国际财团公布的KPI和/或参考实验室公布的结果。
TE 活检、保质化加热和见证程序是我们部门验证的技术,这些技术已在之前三份出版物 11、13、14 中报告的所有操作员中标准化.
只有经验丰富的熟练胚胎学家谁完成了他们的训练期应进行TE活检和胚泡性牙菌。此外,需要证人监测程序,并保证在i期间有效追踪活检胚泡从活检盘(补充图1)到活检后盘的移动(补充图1)(补充图1)),然后到化板(补充图1),最后到硝化支持(补充图1);ii) 活检TE细胞从活检盘转移到PCR管(补充图1);iii) 诊断后的加热和转移步骤。有关所有见证步骤…
The authors have nothing to disclose.
AG 和 RM 收集了数据并起草了手稿。DC 分析数据,起草代表性结果,进行统计并修订稿件。FMU 和 LR 对结果和整个手稿进行了批判性讨论。
Equipment | |||
Cold tube rack | Biocision | XTPCR96 | |
Electronic pipette controller | Fisher Scientific | 710931 | |
Flexipet adjustable handle set | Cook | G18674 | Stripper holder |
Gilson Pipetman | Gilson | 66003 | p20 |
IVF Electronic Witness System | CooperSurgical Fertility & Genomic Solutions | RI Witness ART Management System | |
Inverted microscope | Nikon | Eclipse TE2000-U | |
Laminar Flow Hood | IVF TECH | Grade A air flow | |
Laser objective | RI | Saturn 5 | |
Microinjectors | Nikon Narishige | NT-88-V3 | |
Mini centrifuge for PCR tubes | Eppendorf | CSLQSPIN | for 0.2ml PCR tubes |
Stereomicroscope | Leica | Leica M80 | |
Thermostat | Panasonic | MCO-5AC-PE | |
Tri-gas incubator | Panasonic | MCO-5M-PE | 02/CO2 |
Consumables | |||
Biopsy pipette | RI | 7-71-30FB35720 | 30µm ID, flat 35°C |
Cryolock | Cryolock | CL-R-CT | |
CSCM complete | Irvine Scientific | 90165 | IVF culture medium supplemented with HSA |
Embryo Transfer Catheter | Cook | G17934 | |
Flexipet pipette | Cook | G26712 | 140µm stripping pipette tip |
Flexipet pipette | Cook | G46020 | 300µm stripping pipette tips |
Holding pipette | RI | 7-71-IH35/20 | 30µm ID, flat 35°C |
Human Serum Albumin | Irvine Scientific | 9988 | |
IVF One well dish | Falcon | 353653 | |
Mineral Oil for embryo culture | Irvine Scientific | 9305 | |
Modified HTF Medium | Irvine Scientific | 90126 | Hepes-Buffered medium |
Nuclon Delta Surface | Thermofisher scientific | 176740 | IVF dish 4-well plate with sliding lid |
Primaria Cell culture dish | Corning | 353802 | 60x15mm |
Reproplate | Kitazato | 83016 | |
Serological pipette | Falcon | 357551 | 10ml |
Sterile disposable Gilson tips | Eppendorf | 0030 075.021 | 200µl |
Tubing Kit | Provided by the genetic lab | PCR tubes (0.2mL), loading solution, biopsy washing solution | |
Vitrification media | Kitazato | VT801 | Equilibration and vitrification solutions |
Warming media | Kitazato | VT802 | Thawing and dilution solutions |