Summary

Sondear la estructura y dinámica de nucleosomas utilizando imágenes de microscopía de fuerza atómica

Published: January 31, 2019
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Summary

Aquí, presentamos un protocolo para caracterizar partículas nucleosoma en el nivel de una sola molécula mediante microscopía de fuerza atómica estática y Time-lapse (AFM) técnicas de imagen. El método de funcionalización de superficies descrito permite la captura de la estructura y la dinámica de los nucleosomas en alta resolución a escala nanométrica.

Abstract

La cromatina, que es una cadena larga de subunidades del nucleosoma, es un sistema dinámico que permite tales procesos críticos como la replicación del ADN y transcripción para tomar lugar en las células eucariotas. La dinámica de los nucleosomas proporciona acceso al ADN, por mecanismos de replicación y la transcripción y crítica contribuye a los mecanismos moleculares subyacentes a las funciones de la cromatina. Una sola molécula estudios tales como microscopia de fuerza atómica (AFM) la proyección de imagen han contribuido significativamente a nuestra comprensión actual del papel de la estructura del nucleosoma y dinámica. El actual protocolo describe los pasos que permite técnicas de imagen AFM alta resolución estudiar las propiedades estructurales y dinámicas de los nucleosomas. El protocolo es ilustrado por datos AFM obtenidos para los nucleosomas centrómero en la cual las histonas H3 se sustituye por su proteína de centrómero homólogo (CENP-A). El protocolo comienza con el ensamblaje de los nucleosomas mono usando un método de dilución continua. La preparación del substrato de mica funcionalizado con silatrane de aminopropil (APS-mica) que se utiliza para la proyección de imagen de nucleosoma es crítica para la visualización de AFM de nucleosomas que se describe y se proporciona el procedimiento para preparar el sustrato. Nucleosomas depositados sobre la superficie de la mica de la APS son reflejados primero usando estático AFM, que captura una instantánea de la población de nucleosoma. Del análisis de estas imágenes, estos parámetros como el tamaño del ADN envuelto alrededor de los nucleosomas se pueden medir y también se detalla este proceso. La AFM Time-lapse de procedimiento en el líquido se describe para el AFM de alta velocidad Time-lapse que puede capturar varios marcos de la dinámica de nucleosoma por segundo. Por último, el análisis de la dinámica del nucleosoma que permite la caracterización cuantitativa de los procesos dinámicos es descrito e ilustrado.

Introduction

En las células eucariotas, el ADN es altamente condensada y organizado en cromosomas. 1 el primer nivel de organización del ADN en un cromosoma es el conjunto de nucleosomas en que 147 PB de ADN se envuelve firmemente alrededor de un núcleo del octámero de histonas. 2 , 3 partículas nucleosoma montan en una larga molécula de ADN formando una matriz de cromatina que luego es organizada hasta que se forma una unidad muy compacta cromosoma. 4 el desmontaje de la cromatina proporciona el acceso para liberar ADN requerido por los procesos celulares críticos como gene transcripción genoma replicación y, lo que sugiere que la cromatina es un sistema altamente dinámico. 5 , 6 , 7 comprensión de las propiedades dinámicas del ADN en distintos niveles de cromatina es críticamente importante para dilucidar los procesos genéticos a nivel molecular donde los errores pueden conducir a muerte celular o el desarrollo de enfermedades como el cáncer. 8 una característica de la cromatina de gran importancia es la dinámica de los nucleosomas. 9 , 10 , 11 , 12 la alta estabilidad de estas partículas ha permitido la caracterización estructural mediante técnicas cristalográficas. 2 qué falta de estos estudios son los detalles dinámicos de nucleosomas como el mecanismo de ADN desenvolver desde el núcleo de histonas; la vía dinámica que se requiere para los procesos de transcripción y replicación. 7 , 9 , 13 , 14 , 15 , 16 además, proteínas especiales llamadas factores de remodelación se han demostrado para facilitar el desmontaje de partículas nucleosomal17; sin embargo, la dinámica intrínseca de los nucleosomas es el factor crítico en este proceso que contribuye al proceso de desmontaje todo. 14 , 16 , 18 , 19

Técnicas de una sola molécula como fluorescencia de una sola molécula19,20,21, captura óptica (pinzas)13,18,22,23 y AFM 10 , 14 , 15 , 16 , 24 , 25 , 26 han sido fundamentales en la comprensión de la dinámica de los nucleosomas. Entre estos métodos, el AFM se beneficia de varias características únicas y atractivas. AFM permite visualizar y caracterizar nucleosomas individuales así como los arreglos de discos más27. Imágenes de AFM, características importantes de la estructura del nucleosoma como la longitud del ADN enrollado alrededor del núcleo de histonas pueden ser medido 10,14,26,28; un parámetro fundamental para la caracterización de la dinámica desenvoltura nucleosoma. Más allá de AFM estudios han revelado los nucleosomas para ser sistemas altamente dinámicos y que espontáneamente puede Desempaquete el ADN desde el núcleo de histonas14. El desenvolver espontánea del ADN de los nucleosomas fue visualizado directamente por AFM operando en el modo time-lapse cuando la proyección de imagen se realiza en soluciones acuosas 14,26,29.

La llegada de la alta velocidad instrumentación de AFM (HS-AFM) lapso de tiempo posible visualizar el proceso de desembalaje de nucleosoma en el milisegundo de la escala de tiempo 14,15,24. HS-AFM 16,30 los estudios recientes de nucleosomas específicos centrómero revelado varias características novedosas de los nucleosomas en comparación con el tipo canónico. Nucleosomas de centrómero constituyen de un centrómero, una pequeña parte del cromosoma cromosoma segregación31críticamente importante. A diferencia de nucleosomas canónicos en cromatina a granel, el núcleo de histonas de nucleosomas centrómero contiene histonas de CENP-A en lugar de la histona H332,33. Como resultado de esta sustitución de las histonas, envoltura del ADN en los nucleosomas centrómero es de ~ 120 bp en lugar de los 147 ~ bp de nucleosomas canónicos; una diferencia que puede llevar a distintas morfologías de los centrómero y nucleosomas canónicos matrices34, sugiriendo que la cromatina del centrómero sufre más dinámica en comparación con el bulto uno. La dinámica novedosa de nucleosomas centrómero en estudios de30 16,HS-AFM ejemplifican la oportunidad proporcionada por esta técnica de una sola molécula para visualizar directamente las propiedades estructurales y dinámicas de nucleosomas. Ejemplos de estas características se discuten brevemente e ilustrados al final del documento. Avances debido al desarrollo de nuevos protocolos para la proyección de imagen de AFM de nucleosomas, así como las modificaciones de los métodos existentes. El protocolo aquí descrito pretende hacer accesible a cualquier persona que quisiera utilizar estas técnicas en sus investigaciones de cromatina estos emocionantes avances en estudios de nucleosoma AFM de una sola molécula. Muchas de las técnicas descritas son aplicables a problemas más allá del estudio de los nucleosomas y pueden ser utilizados para investigaciones de otras proteínas y ADN de interés. Algunos ejemplos de este tipo de aplicaciones pueden encontrarse en publicaciones35,36,37,38,39,40,41, 42,43,44,45,46,47,48,49 y las perspectivas de los estudios AFM de se dan varios sistemas biomoleculares en comentarios29,50,51,53,54.

Protocol

1. continua dilución Asamblea de Mono-nucleosomas Generar y purificar un sustrato de ADN aproximadamente 400 bp que contiene un nucleosoma de Widom 601 off centrado en la secuencia de posicionamiento. 55Nota: Para limitar la formación indeseada de di-nucleosomas, cada ‘brazo’ que flanquean la secuencia de colocación no debe exceder 150 ~ bp. Usar el plásmido pGEM3Z-601 junto con los cebadores diseñados y amplificar el ADN substrato usando PCR. Para el substrato de bp 423…

Representative Results

Mono-nucleosomas primero se prepararon para AFM imágenes experimentos utilizando un método de montaje de dilución continua (figura 1). Entonces se verificaron los nucleosomas preparados mediante SDS-PAGE discontinuo (figura 2). Una superficie de mica fue a continuación funcionalizada con APS, que captura los nucleosomas en la superficie manteniendo un fondo liso para la proyección de imagen de alta resolución (figura 3). Nucle…

Discussion

El protocolo descrito anteriormente es algo sencillo y proporcionan resultados altamente reproducibles, aunque algunos problemas se pueden acentuar. APS-mica funcionalizada es un sustrato clave para obtener resultados confiables y reproducibles. Una alta estabilidad de APS-mica es una de las características importantes de este sustrato que permite preparar el sustrato imágenes por adelantado para el uso que se puede utilizar al menos dos semanas después de ser preparado. 59 , <sup cl…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Las contribuciones del autor: AVP y MSD diseñan el proyecto; MSD montar nucleosomas. MSD y ZS realizaron análisis de experimentos y datos AFM. Todos los autores escribieron y editó el manuscrito.

Materials

Plasmid pGEM3Z-601 Addgene, Cambridge, MA 26656
PCR Primers IDT, Coralville, IA Custom Order (FP) 5'- CAGTGAATTGTAATACGACTC-3' (RP) 5'-ACAGCTATGACCATGATTAC-3'
DreamTaq polymerase ThermoFischer Scientific, Waltham, MA EP0701 Catalog number for 200 units
PCR purification kit Qiagen, Hilden, Germany  28104 Catalog number for 50 units
Tris base Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 10708976001 Catalog number for 250 g
EDTA ThermoFischer Scientific, Waltham, MA 15576028 Catalog number for 500 g
(CENP-A/H4)2, recombinant human EpiCypher, Durham, NC 16-0010 Catalog number for 50 ug
H2A/H2B, recombinant human EpiCypher, Durham, NC 15-0311 Catalog number for 50 ug
H3 Octamer, recombinant human EpiCypher, Durham, NC 16-0001 Catalog number for 50 ug
Slide-A-Lyzer MINI Dialysis Device Kit, 10K MWCO, 0.1 mL ThermoFischer Scientific, Waltham, MA 69574 Catalog number for 10 devices
Sodium Chloride Sigma-Aldrich, St. Louis, MO S9888-500G Catalog number for 500 mg
Amicon Ultra-0.5 mL Centrifugal Filters  Millipore-sigma, Burlington, MO UFC501008 Catalog number for 8 devices
HCl Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 258148-25ML Catalog number for 25 mL
Tricine Sigma-Aldrich, St. Louis, MO T0377-25G Catalog number for 25 g
SDS Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 11667289001 Catalog number for 1 kg
Ammonium Persulfate (AmmPS)  Bio-Rad, Hercules, CA 1610700 Catalog number for 10 g
30% Acrylamide/Bis Solution, 37.5:1 Bio-Rad, Hercules, CA 1610158 Catalog number for 500 mL
TEMED Bio-Rad, Hercules, CA 1610800 Catalog number for 5 mL
4x Laemmli protein sample buffer for SDS-PAGE Bio-Rad, Hercules, CA 1610747 Catalog number for 10 mL
2-ME Sigma-Aldrich, St. Louis, MO M6250-10ML Catalog number for 10 mL
ageRuler Prestained Protein Ladder  ThermoFischer Scientific, Waltham, MA 26616 Catalog number for 500 uL
Bio-Safe™ Coomassie Stain Bio-Rad, Hercules, CA 1610786 Catalog number for 1 L
Nonwoven cleanroom wipes: TX604 TechniCloth  TexWipe, Kernersvile, NC TX604
Muscovite Block Mica AshevilleMica, Newport News, VA Grade-1
Aminopropyl silatrane (APS) Synthesized as described in 22
HEPES Sigma-Aldrich, St. Louis, MO H4034-25G Catalog number for 25 g
Scotch Tape Scotch-3M, St. Paul, MN
TESPA-V2 afm probe (for static imaging) Bruker AFM Probes, Camarillo, CA
MSNL-10 afm probe (for standard time-lapse imaing) Bruker AFM Probes, Camarillo, CA
Aron Alpha Industrial Krazy Glue Toagosei America, West Jefferson, OH AA480 Catalog number for 2 g tube
MgCl2 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO M8266-100G Catalog number for 100 g
Millex-GP Filter, 0.22 µm Sigma-Aldrich, St. Louis, MO SLGP05010 Catalog number for 10 devices
BL-AC10DS-A2 afm probe (for HS-AFM) Olympus, Japan
Compound FG-3020C-20  FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan 
Compound FS-1010S135-0.5  FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan 
MultiMode Atomic Force Microscope Bruker-Nano/Veeco, Santa Barbara, CA
High-Speed Time-Lapse Atomic Force Microsocopy Toshio Ando, Nano-Life Science Institute, Kanazawa University, Kakuma-machi, Kanazawa, Japan

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Diesen Artikel zitieren
Stumme-Diers, M. P., Stormberg, T., Sun, Z., Lyubchenko, Y. L. Probing The Structure And Dynamics Of Nucleosomes Using Atomic Force Microscopy Imaging. J. Vis. Exp. (143), e58820, doi:10.3791/58820 (2019).

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