Aquí, presentamos un protocolo para caracterizar partículas nucleosoma en el nivel de una sola molécula mediante microscopía de fuerza atómica estática y Time-lapse (AFM) técnicas de imagen. El método de funcionalización de superficies descrito permite la captura de la estructura y la dinámica de los nucleosomas en alta resolución a escala nanométrica.
La cromatina, que es una cadena larga de subunidades del nucleosoma, es un sistema dinámico que permite tales procesos críticos como la replicación del ADN y transcripción para tomar lugar en las células eucariotas. La dinámica de los nucleosomas proporciona acceso al ADN, por mecanismos de replicación y la transcripción y crítica contribuye a los mecanismos moleculares subyacentes a las funciones de la cromatina. Una sola molécula estudios tales como microscopia de fuerza atómica (AFM) la proyección de imagen han contribuido significativamente a nuestra comprensión actual del papel de la estructura del nucleosoma y dinámica. El actual protocolo describe los pasos que permite técnicas de imagen AFM alta resolución estudiar las propiedades estructurales y dinámicas de los nucleosomas. El protocolo es ilustrado por datos AFM obtenidos para los nucleosomas centrómero en la cual las histonas H3 se sustituye por su proteína de centrómero homólogo (CENP-A). El protocolo comienza con el ensamblaje de los nucleosomas mono usando un método de dilución continua. La preparación del substrato de mica funcionalizado con silatrane de aminopropil (APS-mica) que se utiliza para la proyección de imagen de nucleosoma es crítica para la visualización de AFM de nucleosomas que se describe y se proporciona el procedimiento para preparar el sustrato. Nucleosomas depositados sobre la superficie de la mica de la APS son reflejados primero usando estático AFM, que captura una instantánea de la población de nucleosoma. Del análisis de estas imágenes, estos parámetros como el tamaño del ADN envuelto alrededor de los nucleosomas se pueden medir y también se detalla este proceso. La AFM Time-lapse de procedimiento en el líquido se describe para el AFM de alta velocidad Time-lapse que puede capturar varios marcos de la dinámica de nucleosoma por segundo. Por último, el análisis de la dinámica del nucleosoma que permite la caracterización cuantitativa de los procesos dinámicos es descrito e ilustrado.
En las células eucariotas, el ADN es altamente condensada y organizado en cromosomas. 1 el primer nivel de organización del ADN en un cromosoma es el conjunto de nucleosomas en que 147 PB de ADN se envuelve firmemente alrededor de un núcleo del octámero de histonas. 2 , 3 partículas nucleosoma montan en una larga molécula de ADN formando una matriz de cromatina que luego es organizada hasta que se forma una unidad muy compacta cromosoma. 4 el desmontaje de la cromatina proporciona el acceso para liberar ADN requerido por los procesos celulares críticos como gene transcripción genoma replicación y, lo que sugiere que la cromatina es un sistema altamente dinámico. 5 , 6 , 7 comprensión de las propiedades dinámicas del ADN en distintos niveles de cromatina es críticamente importante para dilucidar los procesos genéticos a nivel molecular donde los errores pueden conducir a muerte celular o el desarrollo de enfermedades como el cáncer. 8 una característica de la cromatina de gran importancia es la dinámica de los nucleosomas. 9 , 10 , 11 , 12 la alta estabilidad de estas partículas ha permitido la caracterización estructural mediante técnicas cristalográficas. 2 qué falta de estos estudios son los detalles dinámicos de nucleosomas como el mecanismo de ADN desenvolver desde el núcleo de histonas; la vía dinámica que se requiere para los procesos de transcripción y replicación. 7 , 9 , 13 , 14 , 15 , 16 además, proteínas especiales llamadas factores de remodelación se han demostrado para facilitar el desmontaje de partículas nucleosomal17; sin embargo, la dinámica intrínseca de los nucleosomas es el factor crítico en este proceso que contribuye al proceso de desmontaje todo. 14 , 16 , 18 , 19
Técnicas de una sola molécula como fluorescencia de una sola molécula19,20,21, captura óptica (pinzas)13,18,22,23 y AFM 10 , 14 , 15 , 16 , 24 , 25 , 26 han sido fundamentales en la comprensión de la dinámica de los nucleosomas. Entre estos métodos, el AFM se beneficia de varias características únicas y atractivas. AFM permite visualizar y caracterizar nucleosomas individuales así como los arreglos de discos más27. Imágenes de AFM, características importantes de la estructura del nucleosoma como la longitud del ADN enrollado alrededor del núcleo de histonas pueden ser medido 10,14,26,28; un parámetro fundamental para la caracterización de la dinámica desenvoltura nucleosoma. Más allá de AFM estudios han revelado los nucleosomas para ser sistemas altamente dinámicos y que espontáneamente puede Desempaquete el ADN desde el núcleo de histonas14. El desenvolver espontánea del ADN de los nucleosomas fue visualizado directamente por AFM operando en el modo time-lapse cuando la proyección de imagen se realiza en soluciones acuosas 14,26,29.
La llegada de la alta velocidad instrumentación de AFM (HS-AFM) lapso de tiempo posible visualizar el proceso de desembalaje de nucleosoma en el milisegundo de la escala de tiempo 14,15,24. HS-AFM 16,30 los estudios recientes de nucleosomas específicos centrómero revelado varias características novedosas de los nucleosomas en comparación con el tipo canónico. Nucleosomas de centrómero constituyen de un centrómero, una pequeña parte del cromosoma cromosoma segregación31críticamente importante. A diferencia de nucleosomas canónicos en cromatina a granel, el núcleo de histonas de nucleosomas centrómero contiene histonas de CENP-A en lugar de la histona H332,33. Como resultado de esta sustitución de las histonas, envoltura del ADN en los nucleosomas centrómero es de ~ 120 bp en lugar de los 147 ~ bp de nucleosomas canónicos; una diferencia que puede llevar a distintas morfologías de los centrómero y nucleosomas canónicos matrices34, sugiriendo que la cromatina del centrómero sufre más dinámica en comparación con el bulto uno. La dinámica novedosa de nucleosomas centrómero en estudios de30 16,HS-AFM ejemplifican la oportunidad proporcionada por esta técnica de una sola molécula para visualizar directamente las propiedades estructurales y dinámicas de nucleosomas. Ejemplos de estas características se discuten brevemente e ilustrados al final del documento. Avances debido al desarrollo de nuevos protocolos para la proyección de imagen de AFM de nucleosomas, así como las modificaciones de los métodos existentes. El protocolo aquí descrito pretende hacer accesible a cualquier persona que quisiera utilizar estas técnicas en sus investigaciones de cromatina estos emocionantes avances en estudios de nucleosoma AFM de una sola molécula. Muchas de las técnicas descritas son aplicables a problemas más allá del estudio de los nucleosomas y pueden ser utilizados para investigaciones de otras proteínas y ADN de interés. Algunos ejemplos de este tipo de aplicaciones pueden encontrarse en publicaciones35,36,37,38,39,40,41, 42,43,44,45,46,47,48,49 y las perspectivas de los estudios AFM de se dan varios sistemas biomoleculares en comentarios29,50,51,53,54.
El protocolo descrito anteriormente es algo sencillo y proporcionan resultados altamente reproducibles, aunque algunos problemas se pueden acentuar. APS-mica funcionalizada es un sustrato clave para obtener resultados confiables y reproducibles. Una alta estabilidad de APS-mica es una de las características importantes de este sustrato que permite preparar el sustrato imágenes por adelantado para el uso que se puede utilizar al menos dos semanas después de ser preparado. 59 , <sup cl…
The authors have nothing to disclose.
Las contribuciones del autor: AVP y MSD diseñan el proyecto; MSD montar nucleosomas. MSD y ZS realizaron análisis de experimentos y datos AFM. Todos los autores escribieron y editó el manuscrito.
Plasmid pGEM3Z-601 | Addgene, Cambridge, MA | 26656 | |
PCR Primers | IDT, Coralville, IA | Custom Order | (FP) 5'- CAGTGAATTGTAATACGACTC-3' (RP) 5'-ACAGCTATGACCATGATTAC-3' |
DreamTaq polymerase | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | EP0701 | Catalog number for 200 units |
PCR purification kit | Qiagen, Hilden, Germany | 28104 | Catalog number for 50 units |
Tris base | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 10708976001 | Catalog number for 250 g |
EDTA | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 15576028 | Catalog number for 500 g |
(CENP-A/H4)2, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 16-0010 | Catalog number for 50 ug |
H2A/H2B, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 15-0311 | Catalog number for 50 ug |
H3 Octamer, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 16-0001 | Catalog number for 50 ug |
Slide-A-Lyzer MINI Dialysis Device Kit, 10K MWCO, 0.1 mL | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 69574 | Catalog number for 10 devices |
Sodium Chloride | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | S9888-500G | Catalog number for 500 mg |
Amicon Ultra-0.5 mL Centrifugal Filters | Millipore-sigma, Burlington, MO | UFC501008 | Catalog number for 8 devices |
HCl | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 258148-25ML | Catalog number for 25 mL |
Tricine | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | T0377-25G | Catalog number for 25 g |
SDS | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 11667289001 | Catalog number for 1 kg |
Ammonium Persulfate (AmmPS) | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610700 | Catalog number for 10 g |
30% Acrylamide/Bis Solution, 37.5:1 | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610158 | Catalog number for 500 mL |
TEMED | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610800 | Catalog number for 5 mL |
4x Laemmli protein sample buffer for SDS-PAGE | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610747 | Catalog number for 10 mL |
2-ME | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | M6250-10ML | Catalog number for 10 mL |
ageRuler Prestained Protein Ladder | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 26616 | Catalog number for 500 uL |
Bio-Safe™ Coomassie Stain | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610786 | Catalog number for 1 L |
Nonwoven cleanroom wipes: TX604 TechniCloth | TexWipe, Kernersvile, NC | TX604 | |
Muscovite Block Mica | AshevilleMica, Newport News, VA | Grade-1 | |
Aminopropyl silatrane (APS) | Synthesized as described in 22 | ||
HEPES | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | H4034-25G | Catalog number for 25 g |
Scotch Tape | Scotch-3M, St. Paul, MN | ||
TESPA-V2 afm probe (for static imaging) | Bruker AFM Probes, Camarillo, CA | ||
MSNL-10 afm probe (for standard time-lapse imaing) | Bruker AFM Probes, Camarillo, CA | ||
Aron Alpha Industrial Krazy Glue | Toagosei America, West Jefferson, OH | AA480 | Catalog number for 2 g tube |
MgCl2 | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | M8266-100G | Catalog number for 100 g |
Millex-GP Filter, 0.22 µm | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | SLGP05010 | Catalog number for 10 devices |
BL-AC10DS-A2 afm probe (for HS-AFM) | Olympus, Japan | ||
Compound FG-3020C-20 | FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan | ||
Compound FS-1010S135-0.5 | FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan | ||
MultiMode Atomic Force Microscope | Bruker-Nano/Veeco, Santa Barbara, CA | ||
High-Speed Time-Lapse Atomic Force Microsocopy | Toshio Ando, Nano-Life Science Institute, Kanazawa University, Kakuma-machi, Kanazawa, Japan |