Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur Charakterisierung von Nukleosom Partikel auf der Einzelmolekül-Ebene mit statischen und Zeitraffer Rasterkraftmikroskopie (AFM) bildgebende Verfahren. Die Oberfläche Funktionalisierung beschriebene Methode ermöglicht die Erfassung der Struktur und Dynamik der Nukleosomen in hoher Auflösung im Nanobereich.
Chromatin, die eine lange Kette von Nukleosom Untereinheiten ist, ist ein dynamisches System, das für solche kritischen Prozesse ermöglicht, als DNA-Replikation und Transkription, nehmen in eukaryotischen Zellen. Die Dynamik der Nukleosomen ermöglicht den Zugriff auf die DNA von Replikation und Transkription Maschinen und kritisch zu den molekularen Mechanismen Chromatin Funktionen trägt. Einzelmolekül-Studien wie Rasterkraftmikroskopie (AFM) imaging trugen erheblich zur unser gegenwärtiges Verständnis der Rolle der Nukleosom Struktur und Dynamik. Das aktuelle Protokoll beschreibt die Schritte, die es ermöglicht hochauflösende AFM bildgebende Verfahren, die strukturelle und dynamische Eigenschaften der Nukleosomen zu studieren. Das Protokoll wird illustriert durch AFM Daten für das Zentromer Nukleosomen bei denen Histon H3 mit seinen Amtskollegen Zentromer Protein A (CENP-A) ersetzt wird. Das Protokoll beginnt mit der Montage der Mono-Nukleosomen mit einer kontinuierlichen Verdünnungsmethode. Die Vorbereitung des Glimmer Substrats funktionalisiert mit Aminopropyl Silatrane (APS-Glimmer), die für das Nukleosom-Bildgebung verwendet wird ist von entscheidender Bedeutung für die AFM-Visualisierung von Nukleosomen beschrieben und das Verfahren, das Substrat vorzubereiten wird erläutert. Nukleosomen hinterlegt auf der APS-Glimmer-Oberfläche werden zuerst abgebildet mit statischen AFM, die eine Momentaufnahme der Nukleosom Bevölkerung erfasst. Aus Analysen dieser Bilder Parameter wie die Größe der DNA umwickelt die Nukleosomen gemessen werden und dieser Prozess ist auch detailliert. Die Time-Lapse AFM bildgebende Verfahren in der Flüssigkeit ist für die High-Speed-Zeitraffer-AFM, die mehrere Frames erfassen können beschrieben Nukleosom Dynamik pro Sekunde. Schließlich ist die Analyse der Nukleosom Dynamik ermöglicht die quantitative Charakterisierung der dynamischen Prozesse beschrieben und illustriert.
In eukaryotischen Zellen ist DNA hoch verdichteten und in Chromosomen organisierte. 1 die erste Ebene der DNA-Organisation innerhalb eines Chromosoms ist die Versammlung der Nukleosomen welche 147 bp DNA ist ein Histon Octamer Kern fest umwickelt. 2 , 3 Nukleosom Partikel montieren auf einem langen DNA-Molekül bilden ein Chromatin-Array, dann organisiert wird, bis eine kompakte Chromosom Einheit gebildet wird. 4 die Demontage des Chromatins Zugriff auf kostenlose DNS durch wichtige zelluläre Prozesse wie gen-Transkription und Genom-Replikation, was darauf hindeutet, dass das Chromatin ist ein sehr dynamisches System. 5 , 6 , 7 die dynamischen Eigenschaften der DNA auf verschiedenen Ebenen von Chromatin zu verstehen ist von entscheidender Bedeutung für die Aufklärung der genetischen Prozesse auf molekularer Ebene, wo Fehler zu Zelltod oder die Entstehung von Krankheiten wie Krebs führen kann. 8 eine Chromatin-Eigenschaft von großer Bedeutung ist die Dynamik der Nukleosomen. 9 , 10 , 11 , 12 die hohe Stabilität dieser Teilchen hat für die strukturelle Charakterisierung von kristallographischen Techniken erlaubt. 2 was diese Studien-Mangel sind die dynamischen Details der Nukleosomen wie der Mechanismus der DNA aus dem Histon-Kern Auspacken; der dynamische weg davon ist erforderlich für die Transkription und Replikation. 7 , 9 , 13 , 14 , 15 , 16 darüber hinaus sind spezielle Proteine bezeichnet umgestaltet Faktoren gezeigt worden, die Demontage der nucleosomal Partikel17zu erleichtern; die innere Dynamik der Nukleosomen ist jedoch der entscheidende Faktor in diesem Prozess, der zur gesamten Demontage beiträgt. 14 , 16 , 18 , 19
Einzelmolekül-Techniken wie Einzelmolekül-Fluoreszenz19,20,21, optische fallen (Pinzette)13,18,22,23 und AFM 10 , 14 , 15 , 16 , 24 , 25 , 26 haben maßgeblich für das Verständnis der Dynamik der Nukleosomen. Unter diesen Verfahren profitiert AFM mehrere einzigartige und attraktive Features. AFM erlaubt es, zu visualisieren und zu charakterisieren, individuelle Nukleosomen sowie längere Arrays27. Von AFM Bilder können wichtige Merkmale der Nukleosom Struktur wie die Länge der DNA um die Histon-Kern gewickelt gemessenen 10,14,26,28; ein Parameter, der die Charakterisierung der Nukleosom Auspacken Dynamik im Mittelpunkt steht. Vorbei an AFM haben Studien ergeben Nukleosomen hochdynamische Systeme und DNA spontan aus dem Histon Kern14auspacken kann. Die spontane Auspacken der DNA von Nukleosomen wurde direkt von AFM Betrieb im Zeitraffer-Modus, wenn die Bildgebung in wässrigen Lösungen 14,26,29 erfolgtvisualisiert.
Das Aufkommen der High-Speed-Zeitraffer AFM (HS-AFM) Instrumentierung ermöglichte es den Nukleosom Auspacken Prozess um die Millisekunde Zeitskala 14,15,24zu visualisieren. HS-AFM 16,30 Studien von spezifischen Nukleosomen Zentromer offenbart einige Neuerungen die Nukleosomen im Vergleich mit den kanonischen Typ. Zentromer Nukleosomen bilden der Zentromer, ein kleiner Teil des Chromosoms für Chromosom Abtrennung31von entscheidender Bedeutung. Im Gegensatz zu kanonischen Nukleosomen in loser Schüttung Chromatin enthält der Histon-Kern des Centromers Nukleosomen CENP-A Histon statt Histon H332,33. Als Folge dieser Histon-Substitution ist DNA-Verpackung in Zentromer Nukleosomen ~ 120 bp statt der ~ 147 bp für kanonische Nukleosomen; ein Unterschied, der zu verschiedenen Morphologien der Zentromer und kanonische Nukleosomen führen kann arrays34, was darauf hindeutet, dass das Zentromer Chromatin höhere Dynamik im Vergleich mit der Masse eines erfährt. Die neuartige Dynamik angezeigt durch Zentromer Nukleosomen in HS-AFM16,30 Studien veranschaulichen die einmalige Gelegenheit von dieser Einzelmolekül-Technik zur Verfügung gestellt, die strukturelle und dynamische Eigenschaften direkt sichtbar zu machen Nukleosomen. Beispiele für diese Features werden kurz diskutiert und am Ende des Papiers dargestellt. Diese Fortschritte wurden durch die Entwicklung von neuartigen Protokolle für AFM Bildgebung der Nukleosomen sowie Änderungen bestehender Methoden. Das Ziel des hier beschriebenen Protokolls soll diese spannende Fortschritte in Einzelmolekül-AFM Nukleosom Studien für jedermann zugänglich zu machen, die diese Techniken in ihrer Chromatin-Untersuchungen nutzen möchten. Viele der beschriebenen Techniken gelten für Probleme über das Studium der Nukleosomen und eignet sich für Untersuchungen von anderen Proteinen und DNA-Systeme von Interesse. Ein paar Beispiele für solche Anwendungen finden Sie in Publikationen35,36,37,38,39,40,41, 42,43,44,45,46,47,48,49 und Perspektiven von AFM Studien verschiedene Biomolekulare Systeme gegeben in29,50,51,53,54Bewertungen.
Das oben beschriebene Protokoll ist eher einfach und hoch reproduzierbare Ergebnisse liefern, obwohl ein paar wichtige Themen hervorgehoben werden können. Funktionalisierten APS-Glimmer ist ein wichtiger Substrat für immer zuverlässige und reproduzierbare Ergebnisse. Eine hohe Stabilität der APS-Glimmer ist eines der wichtigsten Merkmale dieses Substrat, das ermöglicht eine bildgebende Substrat für den Einsatz vorbereiten, die mindestens zwei Wochen nach Zubereitung verwendet werden können. 59</s…
The authors have nothing to disclose.
Beiträge Autor: YLL und MSD entwickelt das Projekt; MSD montiert Nukleosomen. MSD und ZS durchgeführt AFM-Experimente und Daten-Analysen. Alle Autoren schrieb und das Manuskript bearbeitet.
Plasmid pGEM3Z-601 | Addgene, Cambridge, MA | 26656 | |
PCR Primers | IDT, Coralville, IA | Custom Order | (FP) 5'- CAGTGAATTGTAATACGACTC-3' (RP) 5'-ACAGCTATGACCATGATTAC-3' |
DreamTaq polymerase | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | EP0701 | Catalog number for 200 units |
PCR purification kit | Qiagen, Hilden, Germany | 28104 | Catalog number for 50 units |
Tris base | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 10708976001 | Catalog number for 250 g |
EDTA | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 15576028 | Catalog number for 500 g |
(CENP-A/H4)2, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 16-0010 | Catalog number for 50 ug |
H2A/H2B, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 15-0311 | Catalog number for 50 ug |
H3 Octamer, recombinant human | EpiCypher, Durham, NC | 16-0001 | Catalog number for 50 ug |
Slide-A-Lyzer MINI Dialysis Device Kit, 10K MWCO, 0.1 mL | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 69574 | Catalog number for 10 devices |
Sodium Chloride | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | S9888-500G | Catalog number for 500 mg |
Amicon Ultra-0.5 mL Centrifugal Filters | Millipore-sigma, Burlington, MO | UFC501008 | Catalog number for 8 devices |
HCl | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 258148-25ML | Catalog number for 25 mL |
Tricine | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | T0377-25G | Catalog number for 25 g |
SDS | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 11667289001 | Catalog number for 1 kg |
Ammonium Persulfate (AmmPS) | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610700 | Catalog number for 10 g |
30% Acrylamide/Bis Solution, 37.5:1 | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610158 | Catalog number for 500 mL |
TEMED | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610800 | Catalog number for 5 mL |
4x Laemmli protein sample buffer for SDS-PAGE | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610747 | Catalog number for 10 mL |
2-ME | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | M6250-10ML | Catalog number for 10 mL |
ageRuler Prestained Protein Ladder | ThermoFischer Scientific, Waltham, MA | 26616 | Catalog number for 500 uL |
Bio-Safe™ Coomassie Stain | Bio-Rad, Hercules, CA | 1610786 | Catalog number for 1 L |
Nonwoven cleanroom wipes: TX604 TechniCloth | TexWipe, Kernersvile, NC | TX604 | |
Muscovite Block Mica | AshevilleMica, Newport News, VA | Grade-1 | |
Aminopropyl silatrane (APS) | Synthesized as described in 22 | ||
HEPES | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | H4034-25G | Catalog number for 25 g |
Scotch Tape | Scotch-3M, St. Paul, MN | ||
TESPA-V2 afm probe (for static imaging) | Bruker AFM Probes, Camarillo, CA | ||
MSNL-10 afm probe (for standard time-lapse imaing) | Bruker AFM Probes, Camarillo, CA | ||
Aron Alpha Industrial Krazy Glue | Toagosei America, West Jefferson, OH | AA480 | Catalog number for 2 g tube |
MgCl2 | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | M8266-100G | Catalog number for 100 g |
Millex-GP Filter, 0.22 µm | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | SLGP05010 | Catalog number for 10 devices |
BL-AC10DS-A2 afm probe (for HS-AFM) | Olympus, Japan | ||
Compound FG-3020C-20 | FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan | ||
Compound FS-1010S135-0.5 | FluoroTechnology Co., Ltd., Kagiya, Kasugai, Aichi, Japan | ||
MultiMode Atomic Force Microscope | Bruker-Nano/Veeco, Santa Barbara, CA | ||
High-Speed Time-Lapse Atomic Force Microsocopy | Toshio Ando, Nano-Life Science Institute, Kanazawa University, Kakuma-machi, Kanazawa, Japan |