Denne protokollen beskriver en endothelial differensiering teknikk for cardiac progenitor celler. Det fokuserer spesielt på hvordan serum konsentrasjonen og celle-såing tetthet påvirker potensial endothelial differensiering.
CARDIAC progenitor celler (CPC) kan ha terapeutisk potensial for cardiac regenerasjon etter skade. I voksen pattedyr hjertet, iboende CPC er svært knappe, men utvidet CPC kan være nyttig for cellen terapi. En forutsetning for deres bruk er deres evne til å skille på en kontrollert måte i de forskjellige cardiac linjene bruker definerte og effektiv protokoller. I tillegg i vitro ekspansjon, CPC isolert fra pasienter eller prekliniske sykdom modeller kan tilby fruktbart forskningsverktøy for etterforskningen av sykdom mekanismer.
Aktuelle studier bruker forskjellige markører for å identifisere CPC. Men er ikke alle av dem uttrykt i mennesker, som begrenser translasjonsforskning virkningen av noen prekliniske studier. Differensiering protokoller som gjelder uansett isolasjon teknikk og markør uttrykket vil tillate standardisert ekspansjon og fylling av CPC for cellen terapi formål. Her beskriver vi at fylling av CPC under en lav fosterets bovin serum (FBS) konsentrasjon og lav celle tetthet forhold forenkler endothelial differensiering av CPC. bruke to forskjellige subpopulasjoner av mus og rotten CPC, viser vi at laminin er en mer egnet substrat enn fibronectin for dette formålet under følgende protokollen: etter dyrking for 2-3 dager i medium inkludert kosttilskudd som opprettholde multipotency og med 3,5% FBS, CPC er seeded på laminin på < 60% samløpet og kultivert i supplement-fri medium med lave konsentrasjoner av FBS (0,1%) for 20-24 timer før differensiering i endothelial differensiering medium. Fordi CPC er en heterogen befolkning, må serum konsentrasjonen og inkubasjon ganger justeres avhengig av egenskapene til de respektive CPC-subpopulasjon. Vurderer dette, teknikken kan brukes på andre typer CPC samt og gir en nyttig metode for å undersøke muligheter og mekanismer for differensiering og hvordan de påvirkes av sykdom ved CPC isolert fra respektive sykdom modeller.
Nyere studier støtter eksistensen av bosatt cardiac progenitor celler (CPC) i den voksne pattedyr hjerte1,2,3og CPC kan være en nyttig kilde for cellen terapi etter hjertestans skade4, 5. I tillegg utvidet CPC kan gi en fruktbar modell for narkotikarelaterte screening og etterforskning av sykdom mekanismer når isolert fra pasienter med sjeldne cardiomyopathies eller fra respektive sykdom modeller6,7.
CPC isolert fra voksen hjertet har stammen/stamfar celle egenskaper1,2,3,8 som de er multipotent, clonogenic, og har kapasitet for selvtillit fornyelse. Men er det mange forskjellige (sub) bestander av CPC viser forskjellige overflaten markør profiler, inkludert, for eksempel c-kit, Sca-1, og andre, eller hentet av ulike isolasjon teknikker (tabell 1). Flere kultur og differensiering protokoller har vært etablert1,2,8,9,10,11,12, 13,,14,,15,,16,,17,,18. Disse protokollene varierer hovedsakelig med hensyn til vekst faktor og serum innhold, som justeres etter dyrking og som kan føre til forskjellene i resultater og resultater, inkludert differensiering effektivitet.
Indikator-baserte isolasjon teknikker:
CPC kan isoleres basert på en bestemt overflaten markør uttrykk1,2,8,9,10,11,12,13 ,14,15,16,17,18. Tidligere studier tyder på at c-kit og Sca-1 kan være den beste markører isolere bosatt CPC1,11,14,19,20. Fordi ingen av disse markørene er virkelig gjelder CPC, brukes vanligvis kombinasjoner av ulike markører. For eksempel, mens CPC uttrykke lave nivåer av c-kit21, er c-kit også uttrykt ved andre celletyper, inkludert mastceller22og endotelceller23blodkreft stem/stamfar celler24. Et ytterligere problem er det faktum at ikke alle markører uttrykkes på tvers av alle arter. Dette er tilfelle for Sca-1, som uttrykker i mus, men ikke i menneskelig25. Derfor kan bruker protokoller som er uavhengige av isolasjon indikatorer være fordelaktig i lys av kliniske forsøk og studier med prøver fra mennesker.
Markør-uavhengig isolasjon teknikker:
Det er flere store teknikker CPC isolasjon, som primært uavhengig av overflaten markør uttrykk, men som kan være raffinert av påfølgende valg av bestemte markør-positive subfractions etter behov (se tabell 1). (1) side befolkningen (SP) teknikk har opprinnelig vært preget i primitive innbyggere blodkreft stamceller basert på evnen til å middelklasseinnbyggere DNA fargestoff Hoechst 3334226 av ATP-bindende kassett (ABC) transportører27. CARDIAC SP celler er isolert av ulike grupper og rapportert å uttrykke en rekke indikatorer med noen mindre forskjeller mellom rapporter2,8,13,14. (2) colony-forming enhet fibroblast celler (CFU-Fs) er opprinnelig definert basert på en mesenchymal stromal celle (MSC)-som fenotypen. Isolert MSCs er kultivert retter å skape koloni. Slike colony-forming MSC-lignende CFU-Fs kan isoleres fra voksen hjertet og er i stand til å skille ut cardiac overleveringslinjer15. (3) Cardiosphere-avledet celler (CDC) er avledet fra klynger av celler vokst fra vev biopsier enkeltceller eller explants28,29,30,31. Det ble nylig vist at det meste av CD105+/CD90–/c-kit– celle brøkdel utstillinger cardiomyogenic og regenererende potensielle32.
Her gir vi bruker SP-CPC isolert fra mus, en protokoll for effektiv induksjon av endothelial avstamning basert på en tidligere studie i rotte CPC og mus SP-CPC33. Protokollen inneholder spesifikke tilpasninger til kultur og utvidelse teknikk med hensyn til celle tetthet, serum innholdet i mediet, og underlaget. Det kan brukes ikke bare mus SP-CPC, men til ulike typer CPC for formålet å indusere en skjebne bytte fra en forsterke til en endothelial forpliktet CPC, det være seg i lys av transplantasjon av disse cellene eller bruk for mekanistisk i vitro studier.
Fordeler med denne protokollen:
Denne protokollen gir en endothelial differensiering teknikk av CPC. Vi fant at en lav serum konsentrasjonen og lav celle tetthet kan forbedre effektiviteten av endothelial differensiering, der LN viste seg for å være en mer passende substrat enn FN under disse forholdene. Vi brukte to forskjellige typer CPC: rotte CPC, som ble brukt på en celle linje-lignende måte, og musen SP-CPC, som var isolert og utvidet. Spesielt protokollen var gjelder for begge typene a…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne takker Vera Lorenz for hennes nyttig støtte under forsøkene og ansatte fra funksjonen Flow cytometri fra Institutt for biomedisin (DBM), University og University Hospital Basel. Dette arbeidet ble støttet av oppholdet på sporet skal fra universitet i Basel (Michika Mochizuki). Gabriela M. Kuster støttes av et stipend fra det sveitsiske National Science Foundation (gi nummer 310030_156953).
Culture medium | |||
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) | ThermoFisher | #12440 | |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)/Nutrient Mixture F12 Ham | Merck | #D8437 | |
Penicillin-Streptomycin (P/S) | ThermoFisher | #15140122 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Hyclone | #SH30071 | 3.5% (0.1% for lineage induction) |
L-Glutamine | ThermoFisher | #25030 | Final concentration 2 mM |
Glutathione | Merck | #G6013 | |
Recombinant Human Epidermal Growth Factor (EGF) | Peprotech | #AF-100-15 | |
Recombinant Basic Fibroblast Growth Factor (FGF) | Peprotech | #AF-100-18B | |
B27 Supplement | ThermoFisher | #17504044 | |
Cardiotrophin 1 | Peprotech | #250-25 | |
Thrombin | Diagontech AG, Switzerland | #100-125 | |
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) CaCl2(-), MgCl2(-) | ThermoFisher | #14170 | |
0.05 % Trypsin-EDTA | ThermoFisher | #25300 | |
T75 Flask | Sarstedt | #83.3911 | |
Endothelial differentiation | |||
Endothelial Cell Growth Medium (EGM)-2 BulletKit | Lonza | #CC-3162 | |
Ham's F-12K (Kaighn's) Medium | ThermoFisher | #21127 | |
Laminin | Merck | #L2020 | |
Fibronectin | Merck | #F4759 | Dilute in ddH2O |
6 Well Plate | Falcon | #353046 | |
Formaldehyde Solution | Merck | #F1635 | Diluite 1:10 in PBS (3.7% final concentration) |
Triton X-100 | Merck | #93420 | 0.1% in ddH2O |
Normal Goat Serum (10%) | ThermoFisher | #50062Z | |
Anti-von Willebrand Factor antibody | Abcam | #ab6994 | 1:100 in 10% goat serum |
Goat anti-Rabbit IgG, Alexa Fluor 546 | ThermoFisher | #A11010 | 1:500 in 10% goat serum |
4',6-diamidino-2-phenylindole, dihydrochloride (DAPI) | ThermoFisher | #62247 | 1:500 in ddH2O |
SlowFade Antifade Kit | ThermoFisher | #S2828 | |
BX63 widefield microscope | Olympus | ||
Tube formation | |||
96 Well Plate | Falcon | #353072 | |
5 ml Round Bottom Tube with Strainer Cap | Falcon | #352235 | |
Matrigel Growth Factor Reduced | Corning | #354230 | |
IX50 widefield microscope | Olympus | ||
Sca-1+/CD31- cardiac side population isolation34 | |||
Reagents | |||
Pentobarbital Natrium 50 mg/ml ad usum vet. | in house hospital pharmacy | #9077862 | Working solution: 200 mg/kg |
Phosphate Buffered Saline (PBS) CaCl2(-), MgCl2(-) | ThermoFisher | #20012 | |
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) CaCl2(-), MgCl2(-), phenol red (-) | ThermoFisher | #14175 | Prepare HBSS 500 mL + 2% FBS for quenching Collagenase B activity |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) 1g/L of D-Glucose, L-Glutamine, Pyruvate | ThermoFisher | #331885 | Prepare DMEM + 10% FBS + 25 mM HEPES+ P/S for Hoechst stanining |
Penicillin-Streptomycin (P/S) | ThermoFisher | #15140122 | |
HEPES 1 M | ThermoFisher | #15630080 | Final concentration 25 mM |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Hyclone | #SH30071 | |
RBC LysisBuffer (10X) | BioLegend | #420301/100mL | Dilute to 1X in ddH2O and filter through a 0.2 µm filter |
Collagenase B | Merck | #11088807001 | Final concentration 1 mg/mL in HBSS, filtered through a 0.2 µm filter |
bisBenzimide H33342 Trihydrochloride (Hoechst) | Merck | #B2261 | Prepare 1 mg/mL in ddH2O |
Verapamil-hydrochloride | Merck | #V4629 | Final concentration 83.3 µM |
APC Rat Anti-Mouse CD31 | BD Biosciences | #551262 | 0.25 µg/107cells |
FITC Rat Anti-Mouse Ly-6A/E (Sca-1) | BD Biosciences | #557405 | 0.6 µg/107cells |
7-Aminoactinomycin D (7-ADD) | ThermoFisher | #A1310 | 0.15 µg/106cells |
APC rat IgG2a k Isotype Control | BD Biosciences | #553932 | 0.25 µg/107cells |
FITC Rat IgG2a k Isotype Control | BD Biosciences | #554688 | 0.6 µg/107cells |
Material | |||
Needles 27G | Terumo | #NN-2719R | |
Needles 18G | Terumo | #NN-1838S | |
Single Use Syringes 1 mL sterile | CODAN | #62.1640 | |
Transferpipette 3.5 mL | Sarstedt | #86.1171.001 | |
Cell Strainer 40 µm blue | BD Biosciences | #352340 | |
Cell Strainer 100 µm yellow | BD Biosciences | #352360 | |
Lumox Dish 50 | Sarstedt | #94.6077.305 | |
Culture Dishes P100 | Corning | #353003 | |
Culture Dishes P60 | Corning | #353004 | |
Mouse | |||
Line | Age | Breeding | |
C57BL/6NRj / male | 12 weeks | in house | |
Product Name | Company | Catalogue No. | |
Reagents | |||
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) | ThermoFisher | #12440 | |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)/Nutrient Mixture F12 Ham | Merck | #D8437 | |
Penicillin-Streptomycin (P/S) | ThermoFisher | #15140122 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Hyclone | #SH30071 | |
L-Glutamine | ThermoFisher | #25030 | |
Glutathione | Merck | #G6013 | |
B27 Supplement | ThermoFisher | #17504044 | |
Recombinant Human Epidermal Growth Factor (EGF) | Peprotech | #AF-100-15 | |
Recombinant Basic Fibroblast Growth Factor (FGF) | Peprotech | #AF-100-18B | |
Cardiotrophin 1 | Peprotech | #250-25 | |
Thrombin | Diagontech AG, Switzerland | #100-125 | |
Endothelial Cell Growth Medium (EGM)-2 BulletKit | Lonza | #CC-3162 | |
Overview of medium compositions. Some of this infomation is identical with the one provided above, but sorted according to the composition of Media 1-3. | |||
Product Name | Medium 18 | Medium 2 | Medium 3 |
Reagents | Culture | Lineage induction | Endothelial diff. |
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) | 35% | 35% | |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)/Nutrient Mixture F12 Ham | 65% | 65% | |
Penicillin-Streptomycin (P/S) | 1% | 1% | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | 3.5% | ≤0.1% | |
L-Glutamine | 2 mM | 2 mM | |
Glutathione | 0.2 nM | 0.2 nM | |
B27 Supplement | 1.3% | ||
Recombinant Human Epidermal Growth Factor (EGF) | 6.5 ng/mL | ||
Recombinant Basic Fibroblast Growth Factor (FGF) | 13 ng/mL | ||
Cardiotrophin 1 | 0.65 ng/mL |