Summary

Digestão de proteínas, ultrafiltração e cromatografia de exclusão para otimizar o isolamento do Exosomes do Plasma de sangue humano e soro

Published: April 13, 2018
doi:

Summary

Aqui, apresentamos um protocolo para purificar exosomes do plasma e soro com reduzida co purificação de proteínas do sangue não-exosomal. O protocolo otimizado inclui ultrafiltração, tratamento com proteases e cromatografia de exclusão. Reforçada purificação de exosomes análises benefícios a jusante, incluindo a quantificação mais precisa de vesículas e caracterização proteômica.

Abstract

Exosomes, um tipo de nanovesicle liberado de todos os tipos de células, pode ser isolado de qualquer fluido corporal. O conteúdo de exosomes, incluindo proteínas e RNAs, é exclusivo para as células do qual eles são derivados e podem ser usados como indicadores de doença. Vários protocolos comuns de enriquecimento, incluindo ultracentrifugação, rendem exosomes carregado com contaminantes de proteína solúvel. Especificamente, nós encontramos que as proteínas mais abundantes no sangue muitas vezes co purificam com exosomes e podem confundir a jusante proteomic estudos, frustrar a identificação dos candidatos de biomarcador de baixa abundância. De preocupação adicional é a reprodutibilidade de quantificação de proteína exossomo devido inconsistente representação dos níveis de proteína não-exosomal. O protocolo detalhado aqui foi desenvolvido para remover as proteínas não-exosomal que purificam co juntamente com exosomes, adicionando o rigor do processo de purificação do exossomo. Cinco métodos foram comparados usando emparelhado plasma de sangue e soro de cinco doadores. Usando nanopartículas, acompanhamento, análise e ensaio de ácido da proteína de bicinchoninic micro a análise revelou que um protocolo combinado utilizando cromatografia de exclusão de ultrafiltração e tamanho rendeu o enriquecimento de vesículas ideal e remoção de proteína solúvel. Mancha ocidental foi utilizado para verificar que as proteínas do sangue abundante esperado, incluindo albumina e apolipoproteínas, foram esgotadas.

Introduction

Exosomes são nanovesicles (variando em tamanho de 30 nm a 150 nm) lançado por quase todas as células no corpo humano facilitar a comunicação célula a célula processa1,2. Curiosamente, a composição do exosomes muda dependendo das células de origem, bem como o estado de saúde do indivíduo3,4,5. Além disso, exosomes pode ser obtido em vários fluidos biológicos tais como: saliva, urina e de sangue2. Devido estas características, exosomes são considerados para ser uma boa fonte de biomarcadores da doença. Infelizmente, não há nenhum método padrão para a isolação de exosomes. Alguns laboratórios consideram centrifugação várias etapas, com uma etapa final de alta velocidade a 100.000 x g usando gradientes de densidade, como o método padrão-ouro para exossomo isolamento. No entanto, estudos recentes têm mostrado que ultracentrifugação induz agregação de exosomes com proteínas solúveis e outras exosomes, além de afetar a integridade do exossomo, ambos os quais podem dificultar a aplicações a jusante6,7 . Outros métodos comuns de isolamento do exossomo incluem, mas não estão limitados a: precipitação por comercial polietileno glicol (PEG) com base em reagentes, ultrafiltração centrífuga e cromatografia de exclusão-tamanho (SEC). Os reagentes comerciais usando polímeros de polietileno glicol (PEG) enriquecem exosomes, causando-lhes para precipitar e formar um pellet. Limitações de utilização deste polímero são contaminação residual polímero PEG e uma abundância de proteínas solúveis não-exosomal no produto final. Ultrafiltração utiliza centrifugação para purificar e concentrar-se vesículas usando uma membrana de celulose; exosomes são mantidos acima do filtro, enquanto as impurezas menores e outras proteínas atravessam a membrana7,8. Assim como outros métodos, ultrafiltração centrífuga tem uma capacidade limitada para purificar exosomes devido a manutenção de altos níveis de proteínas não-exosomal, incluindo agregados e complexos da proteína. Finalmente, purificação SEC usa resina porosa para separar moléculas por tamanho. SEC tem mostrado resultados promissores, superando a maioria dos problemas experientes com outros métodos, capturando a maioria das proteínas contaminantes e preservando a integridade exosomal, desde que o isolamento é baseado na gravidade ou sistemas de baixa pressão7, 9. No entanto, o isolamento co de proteínas maiores agregados e lipoproteínas10 durante o SEC afeta a pureza da preparação final exossomo. Enquanto alguns métodos foram testados para a purificação do exossomo de sobrenadantes de cultura de células e plasma7ou apenas plasma9,11, não há nenhuma informação sobre o desempenho dos métodos diretamente comparando o sangue plasma e soro do mesmo indivíduo.

Aqui, focalizamos a purificação do sangue exosomes, comparando uma variedade de fluxos de trabalho para determinar se as técnicas de enriquecimento de vesículas são traduzíveis entre plasma e soro. Nanopartículas, acompanhamento, análise e borrão ocidental foram usadas para quantificar as diferenças na composição de concentração, a pureza e a proteína exossomo em produtos finais. O método final, detalhado no presente protocolo, aumenta o número de vesículas e reduz os níveis de proteína não-exosomal. Importante, uma redução drástica das proteínas co precipitantes comuns, incluindo albumina e apolipoproteínas é demonstrada. A abundância destas duas proteínas no sangue e a frequência em que eles co purificam com exosomes causas inconsistências entre as amostras “purificadas”, desviando as análises a jusante. Este protocolo inclui o uso de uma resina SEC comercialmente disponível; a resina é composta de grânulos porosos em que proteínas menores que 700 kDa podem inserir os grânulos. Uma vez dentro, as proteínas são retidas por um ligante de octylamine. O eluato é composto de exosomes e moléculas maiores que 700 kDa12. Além disso, a fim de reduzir a proteína agregados e apolipoproteínas que evade armadilhas do grânulo, incluímos um protease digestão passo do fluxo de trabalho. Atualmente, não existe única técnica capaz de maximizar o rendimento do exossomo reduzindo co purificação proteínas não-exosomal. Este estudo mostra que um protocolo de purificação que combina um pré-tratamento de digestão de protease com vários métodos de purificação e recuperação pode ser usado para aumentar o rendimento do exossomo e pureza de sangue soro e plasma.

Protocol

Este trabalho foi determinado a não ser sujeito humano pesquisa sobre revisão inicial da Colorado State University institucional Review Board (IRB), como todas as amostras humanas foram obtidas como amostras de identificados da biorepositórios Bioreclamation IVT e foram recolhidos no âmbito de protocolos IRB aprovado. 1. preparação da amostra bruta (Plasma ou soro) por vesículas maior granulação e restos celulares Nota: Consideração de segu…

Representative Results

Os dados apresentados abaixo foram obtidos utilizando amostras de plasma e soro pareadas de cinco doadores de sangue saudáveis. Para determinar os efeitos de cada etapa de processamento, foram realizadas cinco variações do protocolo apresentado, e remoção de proteínas de recuperação e não-exossomo exossomo foram comparados. Os métodos julgados incluídos: 1) SEC 700 kDa + ultrafiltração 3 kDa; 2) ultrafiltração 100 kDa; 3) proteinase K + ultrafiltração 100 kDa; 4) SEC 700 …

Discussion

Um método otimizado para aumentar a pureza e o rendimento de exosomes de sangue irá aumentar a capacidade de precisão meu vesículas extracelulares como fonte de biomarcadores para várias doenças. O padrão métodos atualmente usados para isolar exosomes, especificamente, ultracentrifugação e métodos de precipitação, tem várias desvantagens incluindo exossomo agregação e granulação de proteínas solúveis7,17, 18

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta pesquisa foi apoiada por fundos internos da CSU (para KMD), ATCC contrato #2016-0550-0002 (um subcontrato de NIAID HHSN272201600013C) e a Fundação Bill e Melinda Gates (OPP1039688) (para KMD/NKG). Agradecemos a experiência de pesquisa do NSF para programa de Verão de alunos de graduação (REU) Universidade Estadual do Colorado para suporte adicional.

Materials

Nanosight Malvern NS300
Benchtop microcentrifuge  Thermo Legend Mico21
Benchtop centrifuge  Beckman Coulter Allegra 6R
Waterbath  Benchmark B2000-4
Microplate reader BIOTEK Epoch
Pierce BCA Protein Assay Kit THERMO 23227
Micro BCA Protein Assay Kit THERMO 23235
Phosphate buffered saline Corning 21-040-CV
96 well plate Corning 15705-066
Amicon Ultra-0.5 Centrifugal Filter Unit with Ultracel-100 membrane EMD-Millipore UFC510096
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Units EMD-Millipore UFC800324
Capto Core 700 GE Healthcare 17548103
Poly-Prep Chromatography Columns BIORAD 7311550
NuPAGE 4-12% Bis-Tris Protein Gels THERMO NP0323BOX
Nitrocellulose Membrane, Roll, 0.2 µm BIORAD 1620112
Proteinase K, Tritirachium album EMD-Millipore 539480
SimplyBlue SafeStain THERMO LC6065
SIGMAFAST BCIP/NBT Millipore-SIGMA B5655
4-Chloro-1-naphthol Millipore-SIGMA C6788
Anti-CD63 Antibody (rabbit anti-human) with goat anti-rabbit HRP secondary antibody SYSTEM BIOSCIENCES EXOAB-CD63A-1 Primary and secondary antibodies
ALB Antibody (F-10) SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY, INC. sc-271605 Primary antibody
apoB Antibody (C1.4) SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY, INC. sc-13538 Primary antibody
apoA-I Antibody (B-10) SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY, INC. sc-376818 Primary antibody

Referenzen

  1. Stoorvogel, W., Kleijmeer, M. J., Geuze, H. J., Raposo, G. The biogenesis and functions of exosomes. Traffic. 3 (5), 321-330 (2002).
  2. Raposo, G., Stoorvogel, W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends. J Cell Biol. 200 (4), 373-383 (2013).
  3. Schorey, J. S., Harding, C. V. Extracellular vesicles and infectious diseases: new complexity to an old story. J Clin Invest. 126 (4), 1181-1189 (2016).
  4. Taylor, D. D., Gercel-Taylor, C. Exosome platform for diagnosis and monitoring of traumatic brain injury. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 369 (1652), (2014).
  5. Nilsson, J., et al. Prostate cancer-derived urine exosomes: a novel approach to biomarkers for prostate cancer. Br J Cancer. 100 (10), 1603-1607 (2009).
  6. Linares, R., Tan, S., Gounou, C., Arraud, N., Brisson, A. R. High-speed centrifugation induces aggregation of extracellular vesicles. J Extracell Vesicles. 4, 29509 (2015).
  7. Lobb, R. J., et al. Optimized exosome isolation protocol for cell culture supernatant and human plasma. J Extracell Vesicles. 4, 27031 (2015).
  8. Vergauwen, G., et al. Confounding factors of ultrafiltration and protein analysis in extracellular vesicle research. Scientific Reports. 7 (1), 2704 (2017).
  9. Welton, J. L., Webber, J. P., Botos, L. A., Jones, M., Clayton, A. Ready-made chromatography columns for extracellular vesicle isolation from plasma. J Extracell Vesicles. 4, 27269 (2015).
  10. Sódar, B. W., et al. Low-density lipoprotein mimics blood plasma-derived exosomes and microvesicles during isolation and detection. Sci Rep. 6, 24316 (2016).
  11. de Menezes-Neto, A., et al. Size-exclusion chromatography as a stand-alone methodology identifies novel markers in mass spectrometry analyses of plasma-derived vesicles from healthy individuals. J Extracell Vesicles. 4, 27378 (2015).
  12. Corso, G., et al. Reproducible and scalable purification of extracellular vesicles using combined bind-elute and size exclusion chromatography. Scientific Reports. 7 (1), 11561 (2017).
  13. Diaz, G., Wolfe, L. M., Kruh-Garcia, N. A., Dobos, K. M. Changes in the Membrane-Associated Proteins of Exosomes Released from Human Macrophages after Mycobacterium tuberculosis Infection. Sci Rep. 6, 37975 (2016).
  14. Yuana, Y., Levels, J., Grootemaat, A., Sturk, A., Nieuwland, R. Co-isolation of extracellular vesicles and high-density lipoproteins using density gradient ultracentrifugation. J Extracell Vesicles. 3, (2014).
  15. Théry, C., Amigorena, S., Raposo, G., Clayton, A. Isolation and characterization of exosomes from cell culture supernatants and biological fluids. Curr Protoc Cell Biol. , (2006).
  16. Muller, L., Hong, C. S., Stolz, D. B., Watkins, S. C., Whiteside, T. L. Isolation of biologically-active exosomes from human plasma. J Immunol Methods. 411, 55-65 (2014).
  17. Böing, A. N., et al. Single-step isolation of extracellular vesicles by size-exclusion chromatography. J Extracell Vesicles. 3, (2014).
  18. Sweeney, P. J., Walker, J. M. Proteinase K (EC 3.4.21.14). Methods Mol Biol. 16, 305-311 (1993).
  19. Baranyai, T., et al. Isolation of Exosomes from Blood Plasma: Qualitative and Quantitative Comparison of Ultracentrifugation and Size Exclusion Chromatography Methods. PLoS One. 10 (12), e0145686 (2015).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Diaz, G., Bridges, C., Lucas, M., Cheng, Y., Schorey, J. S., Dobos, K. M., Kruh-Garcia, N. A. Protein Digestion, Ultrafiltration, and Size Exclusion Chromatography to Optimize the Isolation of Exosomes from Human Blood Plasma and Serum. J. Vis. Exp. (134), e57467, doi:10.3791/57467 (2018).

View Video