Summary

Profilage ADN calendrier de réplication à l’aide de poisson-zèbre comme un système de modèle In Vivo

Published: April 30, 2018
doi:

Summary

Poisson zèbre servaient récemment un système de modèle in vivo pour étudier la synchronisation de réplication ADN au cours du développement. Voici détaillées les protocoles d’utilisation des embryons de poisson-zèbre à synchronisation de réplication de profil. Ce protocole peut être facilement adapté pour étudier la synchronisation de la réplication en mutants, types de cellules individuelles, les modèles de maladies et d’autres espèces.

Abstract

Synchronisation de réplication de l’ADN est une caractéristique importante de cellulaire, présentant des relations significatives avec la structure de la chromatine, transcription et taux de mutation de l’ADN. Changements dans le calendrier de réplication se produisent pendant le développement et le cancer, mais la synchronisation de la réplication de rôle joue dans le développement et la maladie ne connaît pas. Poisson zèbre ont été récemment mis en place comme un système de modèle in vivo pour étudier la synchronisation de la réplication. Voici détaillée des protocoles permettant d’utiliser le poisson-zèbre pour déterminer le calendrier de réplication de l’ADN. Après le tri des cellules d’embryons et de poisson-zèbre adulte, haute résolution génome ADN réplication calendrier modèles peuvent être construits par la détermination des changements dans le nombre de copies d’ADN grâce à l’analyse des données de séquençage de génération suivante. Le système de modèle zebrafish permet d’évaluer les modifications de calendrier de réplication qui se produire in vivo au cours du développement et peut également être utilisé pour évaluer les changements dans les types de cellules individuelles, les modèles de maladies ou lignées mutantes. Ces méthodes permettront aux études portant sur les mécanismes et les déterminants de la création de synchronisation de la réplication et l’entretien pendant le développement, la synchronisation de la réplication de rôle joue dans les mutations et tumorigenèse et les effets de perturber synchronisation de réplication sur le développement et la maladie.

Introduction

Pour les cellules de diviser avec succès, ils doivent tout d’abord exactement et fidèlement reproduire leur génome entier. Duplication du génome se produit dans un modèle reproductible, appelé l’ADN réplication calendrier programme1. Synchronisation de réplication de l’ADN est en corrélation avec l’organisation de la chromatine, marques épigénétiques et gene expression2,3. Changements dans calendrier de réplication se produisent au cours du développement et sont significativement liés à la transcription des programmes et modifications de la chromatine marques et organisation4,5. En outre, synchronisation de réplication est corrélée avec des fréquences mutationnelles, et on observe des changements dans le calendrier dans divers types de cancer6,7,8. Malgré ces observations, les mécanismes et les déterminants de la création de synchronisation de la réplication et la réglementation sont encore largement inconnus et le rôle qu’elle joue dans le développement et la maladie n’est pas déterminée. En outre, jusqu’à récemment la réplication du génome calendrier des changements qui se produisent tout au long du développement des vertébrés avait seulement été examinée en modèles de culture de cellules.

Poisson-zèbre, Danio rerio, sont bien adaptés pour étudier la réplication calendrier in vivo au cours du développement, tel qu’un seul couple peut donner des centaines d’embryons qui se développent rapidement avec nombreuses similitudes avec le développement mammifère9, 10. En outre, tout au long du développement du poisson zèbre, il y a des changements pour le cycle cellulaire, organisation de la chromatine et transcriptionnelles programmes qui partagent des relations avec la réplication de l’ADN calendrier11. Poisson zèbre est aussi un excellent modèle génétique, car ils se prêtent particulièrement à la manipulation par transgénèse, mutagénèse et mutations ciblées, et écrans génétiques ont identifié de nombreux gènes requis pour le développement des vertébrés12. Par conséquent, poisson zèbre peut être utilisé pour identifier les gènes impliqués dans l’entretien et la création de synchronisation de réplication et d’observer les effets de la déréglementation “timing” réplication sur du développement des vertébrés. Les lignées transgéniques permet également d’évaluer la synchronisation de la réplication de types de cellules individuelles isolées à différents points du développement ou dans des conditions de maladie. Ce qui est important, il existe divers modèles de poisson-zèbre de maladie humaine qui peut être utilisé pour étudier le rôle de la synchronisation de la réplication en maladie la formation et la progression9,13,14.

Récemment, les profils de synchronisation de réplication premières proviennent du poisson-zèbre, établissant comme un système modèle pour étudier la réplication calendrier in vivo15. Pour ce faire, les cellules ont été prélevés des embryons de poisson-zèbre à plusieurs étapes de développement et dans un type de cellule isolée du poisson-zèbre adulte. Les cellules ont été ensuite triés par FACS (fluorescence-lancée de cellules tri) basée sur la teneur en ADN pour isoler des populations de phase G1 et S. Utilisez l’exemple de G1 comme un contrôle de nombre de copie, copie numéros variations dans les populations de phase S ont été déterminées et utilisées pour déduire la synchronisation de réplication relative16. Changements dans calendrier de réplication peuvent être directement comparés entre les différents échantillons de perfectionnement et de types de cellules, et cela a servi à déterminer au moment de la réplication des changements qui se produisent en vivo tout au long du développement des vertébrés. Cette méthode présente plusieurs avantages par rapport aux autres méthodes de la génomique, surtout qu’il ne nécessite pas d’étiquetage avec les analogues de la thymidine ou immunoprécipitation d’ADN4,6.

Voici détaillées les protocoles au point de la réplication de l’ADN profil Génome-large à haute résolution chez le poisson zèbre. Ces protocoles ont été utilisés pour déterminer les relations avec les caractéristiques génomiques et épigénétiques dans le génome du poisson-zèbre, ainsi que des changements dans ces relations qui se produisent au cours du développement de profilage. Ces protocoles sont également facilement adaptés pour étudier les changements dans le calendrier de réplication chez les souches mutantes de poisson-zèbre et dans des modèles de la maladie. En outre, ces méthodes fournissent une base qui peut être étendue à d’étudier le calendrier de réplication dans les cellules spécifiques, par un premier tri sur les types de cellules individuelles du poisson-zèbre. Le poisson-zèbre peut servir comme un excellent en vivo système modèle pour étudier la synchronisation de la réplication et de révéler au bout du compte les fonctions biologiques de ce caractère épigénétique important.

Protocol

Tous les animaux ont été traitées en stricte conformité avec les protocoles approuvés par le Comité de l’emploi et de Oklahoma Medical Research Foundation institutionnels animalier. 1. mise en place de poisson-zèbre adulte pour la reproduction Utilisez une grande cohorte d’adult poisson-zèbre, mâle et femelle, d’une seule souche d’élevage. Il y a de petites différences dans la composition génétique du poisson-zèbre de même une seule souche, utilisez une grande …

Representative Results

À l’aide de données de calendrier de réplication publiées, les profils de synchronisation de réplication représentatifs et des mesures de contrôle de la qualité sont fournis15. Les premières étapes de transformation impliquent en alignant les données de séquençage pour le génome, calculer la longueur de lecture et les statistiques de couverture du génome et le filtrage de faible qualité, impair et les lectures en double PCR. Statistiques de lectur…

Discussion

Poisson zèbre fournissent un système de modèle nouveau et unique le in vivo pour étudier la synchronisation de réplication de l’ADN. Quand chronométrés croisements sont effectués comme détaillé dans le présent protocole expérimental, des milliers d’embryons peuvent être rassemblées en une seule journée pour des expériences. Ces embryons se développent de façon synchrone par précisément chronométrés et nettement caractérisées des stades de développement. Poisson zèbre peut être faci…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par National Institute of General Medical Sciences de la National Institutes of Health à travers accorde 5P20GM103636-02 (avec le support de base Flow Cytometry) et 1R01GM121703, ainsi que des prix depuis le centre de l’Oklahoma pour les cellules souches adultes Recherche.

Materials

NaCl Fisher Scientific BP358-10
KCl Fisher Scientific P217-500
CaCl2 Fisher Scientific C79-500
MgSO4 EMD Millipore MMX00701
NaHCO3 Fisher Scientific BP328-500
Pronase Sigma 10165921001 protease solution
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma D1408
Ethanol (EtOH) KOPTEC V1016
Bovine serum albumin (BSA) Sigma A9647-100G
Propidium Iodide (PI) Invitrogen P3566
Tris-HCl Fisher Scientific BP153-500
EDTA Sigma E9844
SDS Santa Cruz sc-24950
Proteinase K NEB P8107S
Phenol:Chloroform Sigma P3803-100ML
Sodium acetate J.T.Baker 3470
Glycogen Ambion AM9510
RNase A Thermo Scientific EN0531
Quanit-iT Invitrogen Q33130 Reagents for fluorescence-based DNA quantification
Covaris AFA microTUBE Covaris 520045 specialized tube for sonication
Covaris E220 Sonicator Covaris E220 focused ultrasonicator
Agilent 4200 Tapestation Agilent G2991AA automated electrophoresis machine
D1000 ScreenTape Agilent 5067-5582 Reagents for automated electrophoresis machine
NEBNext Ultra DNA Library Prep Kit for Illumina NEB Cat#E7370L DNA library preparation kit
NEBNext Multiplex Oligos Kit for Illumina (Index Primers Set 1) NEB Cat#E7335S multiplex oligos for DNA library preparation kit
NEBNext Multiplex Oligos Kit for Illumina (Index Primers Set 2) NEB Cat#E7500S additional multiplex oligos for DNA library preparation kit
NEBNext Library Quant Kit for Illumina NEB E7630L quantification kit for library preparation
Agencourt AMPure XP beads Beckman Coulter A63882 magnetic beads
Illumina HiSeq 2500 Illumina SY–401–2501 next generation DNA sequencing platform
40 µm Falcon Nylon Cell Strainer Fisher Scientific 08-771-1
VWR Disposable Petri Dish 100 x 25 mm VWR 89107-632
6.0 mL Syringe for Nichiryo Model 8100 VWR 89078-446
Posi-Click Tubes, 1.7 mL, Natural Color Denville Scientific C2170 (1001002) Dnase/Rnase free
Vortex Genie 2 Scientific Industries SI-0236
Wash Bottles VWR 16650-022 Low-Density Polyethylene, Wide Mouth
Strainer VWR 470092-440 6.9 cm, fine mesh
Corssing tank Aquaneering ZHCT100 individual breeding tank
iSpawn Techniplast N/A large breeding tank
FACSAria II BD biosciences N/A cell sorting machine
Wild M5a steromicroscope Wild Heerbrugg N/A dissecting microscope
Qubit 3 Fluorometer Thermo Scientific Q33216 quantitative fluorescence-based method for determining DNA concentration
Matlab Mathworks version 2017a
Matlab Statistics Toolbox Mathworks version 11.1
Matlab Curve Fitting Toolbox Mathworks version 3.5.5

Referenzen

  1. Rhind, N., Gilbert, D. M. DNA replication timing. Cold Spring Harb Perspect Biol. 5 (8), a010132 (2013).
  2. Pope, B. D., et al. Topologically associating domains are stable units of replication-timing regulation. Nature. 515 (7527), 402-405 (2014).
  3. Rivera-Mulia, J. C., et al. Dynamic changes in replication timing and gene expression during lineage specification of human pluripotent stem cells. Genome Res. 25 (8), 1091-1103 (2015).
  4. Hiratani, I., et al. Global reorganization of replication domains during embryonic stem cell differentiation. PLoS Biol. 6 (10), e245 (2008).
  5. Hiratani, I., et al. Genome-wide dynamics of replication timing revealed by in vitro models of mouse embryogenesis. Genome Res. 20 (2), 155-169 (2010).
  6. Koren, A., et al. Differential relationship of DNA replication timing to different forms of human mutation and variation. Am J Hum Genet. 91 (6), 1033-1040 (2012).
  7. Ryba, T., et al. Abnormal developmental control of replication-timing domains in pediatric acute lymphoblastic leukemia. Genome Res. 22 (10), 1833-1844 (2012).
  8. Sima, J., Gilbert, D. M. Complex correlations: replication timing and mutational landscapes during cancer and genome evolution. Curr Opin Genet Dev. 25, 93-100 (2014).
  9. Veldman, M. B., Lin, S. Zebrafish as a developmental model organism for pediatric research. Pediatr Res. 64 (5), 470-476 (2008).
  10. Link, B. A., Megason, S. G. Zebrafish as a Model for Development. Sourcebook of Models for Biomedical Research. , 103-112 (2008).
  11. Siefert, J. C., Clowdus, E. A., Sansam, C. L. Cell cycle control in the early embryonic development of aquatic animal species. Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. 178, 8-15 (2015).
  12. Hill, A. J., Teraoka, H., Heideman, W., Peterson, R. E. Zebrafish as a model vertebrate for investigating chemical toxicity. Toxicol Sci. 86 (1), 6-19 (2005).
  13. Dooley, K., Zon, L. I. Zebrafish: a model system for the study of human disease. Curr Opin Genet Dev. 10 (3), 252-256 (2000).
  14. Santoriello, C., Zon, L. I. Hooked! Modeling human disease in zebrafish. J Clin Invest. 122 (7), 2337-2343 (2012).
  15. Siefert, J. C., Georgescu, C., Wren, J. D., Koren, A., Sansam, C. L. DNA replication timing during development anticipates transcriptional programs and parallels enhancer activation. Genome Res. 27 (8), 1406-1416 (2017).
  16. Koren, A., et al. Genetic variation in human DNA replication timing. Cell. 159 (5), 1015-1026 (2014).
  17. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203 (3), 253-310 (1995).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Siefert, J. C., Clowdus, E. A., Goins, D., Koren, A., Sansam, C. L. Profiling DNA Replication Timing Using Zebrafish as an In Vivo Model System. J. Vis. Exp. (134), e57146, doi:10.3791/57146 (2018).

View Video