נתאר כאן טכניקה המשלבת מוטגנזה מכוונת transposon עם תפוקה גבוהה רצף כדי לזהות ולכמת transposon מוטציות leptospiral ברקמות לאחר אתגר של אוגרים. פרוטוקול זה יכול לשמש המוטנטים מסך עבור הישרדות והפצה בבעלי חיים, ניתן להחיל גם על מחקרים במבחנה .
כתב יד זה, אנו מתארים transposon של רצף (Tn-Seq) טכניקה כדי לזהות ולכמת מוטציות Leptospira interrogans משתנה בכושר במהלך זיהום של אוגרים סוריים הזהב. Tn-Seq משלב מוטגנזה מכוונת transposon אקראיים עם הכוח של טכנולוגיה רצף תפוקה גבוהה. חיות מאותגרים עם בריכה של מוטציות transposon (בריכה קלט), ואחריו לקצירת של דם ורקמות כמה ימים מאוחר יותר כדי לזהות ולכמת את מספר מוטציות כל איבר (פלט בריכות). הבריכות פלט מושווים למאגר הקלט כדי להעריך את כושר ויוו של כל מוטציה. גישה זו מאפשרת הקרנת בריכה גדולה של מוטציות במספר מוגבל של בעלי חיים. עם שינויים מזעריים, פרוטוקול זה יכול להתבצע עם כל במודל חיה של לפטוספירוזיס, מאגר מודלים מארח כגון חולדות ומודלים זיהום אקוטי כמו אוגרים, כמו גם מחקרים במבחנה . Tn-Seq מספק כלי רב עוצמה למסך מוטנטים בעלי מומים כושר ב- vivo ו- in vitro לקשרי .
זיהוי של גנים התקפה אלימה של חיידקים מסוימים, כגון Leptospira spp., קשה בגלל מספר מוגבל של גנטי הכלים הזמינים. גישה אחת נפוץ הוא יצירת אוסף של מוטציות על-ידי transposon אקראיים מוטגנזה מכוונת ואחריו הזיהוי של האתר הכניסה כל מוטציה ובדיקות התקפה אלימה של מוטציות transposon בודדים במודל חיה. גישה זו היא גוזלת זמן יקר, ודורש מספר גדול של בעלי חיים.
כאשר מוטגנזה מכוונת אקראי פותחה לראשונה על המחלה Leptospira interrogans, גנים המעורבים התקפה אלימה אותרו על-ידי בדיקת מוטציות בודדות המודל החייתי1. מוטציות נבחרו על סמך קריטריונים של תפקידיהם פוטנציאליים איתות או תנועתיות או שלהם החזוי הממברנה החיצונית או מיקום משטח. כמו ברוב חלקי leptospiral גנים קידוד חלבונים היפותטי של פונקציה לא מוכרות2, בחירת מוטציות בהתבסס על מגבלות קריטריונים אלה היכולת לגלות leptospiral הרומן גנים התקפה אלימה.
לאחרונה, בריכות של ל’ interrogans transposon מוטציות הוקרנו על infectivity של אוגר ועכבר מודלים3. כל בעל חיים היה אתגר עם בריכה של מוטציות עד 10. Infectivity של מוטציה היה הבקיע חיובי אם זה זוהה על ידי ה-PCR של תרבויות המתקבל דם וכליות. בדיקת PCR היה מפרך כי זה נדרש לתגובה PCR נפרדים עבור כל מוטציה בבריכה. בגלל התדירות של כל מוטציה בתרבויות לא הייתה לכמת, הגישה היה מוטה לטובת זיהוי של מוטציות הקלוש ביותר.
אנו מתארים transposon של רצף (Tn-Seq) טכניקה, כאסטרטגיה למסך בצורה יעילה יותר עבור גנים התקפה אלימה. Tn-seq מורכב היצירה של ספריה של מוטציות על ידי מוטגנזה מכוונת transposon ואחריו רצף מקביל מסיבי4,5,6. בקצרה, מוטציות transposon איחדו, מחוסן חיות, התאוששה מאוחר יותר איברים שונים (פלט בריכות). ה-DNA של הבריכות פלט חילוץ, מתעכל עם אנזימי הגבלה או לכסנתם על ידי sonication. שני סיבובים של PCR פילוח של צמתים של האתרים ההכנסה transposon מבוצעות. שלב זה מאפשר התוספת של מתאמים הצורך עבור הרצף. המוצרים PCR וכתוצאה מכך הם נותחו על ידי רצף תפוקה גבוהה לזיהוי האתר הכניסה transposon של כל מוטציה של הבריכה יחד עם שפע היחסי שלהם, אשר הוא לעומת ההרכב הראשוני של הבריכה של מוטציה.
היתרון העיקרי של גישה זו היא היכולת למסך בו זמנית מספר רב של מוטציות עם מספר קטן של בעלי חיים. Tn-Seq אינו דורש ידע מוקדם של האתרים ההכנסה transposon אשר מגדיל את הסיכויים של גילוי חדש Leptospira-גנים ספציפיים המעורבים התקפה אלימה עם פחות זמן ויעילות רבה יותר. כי נטל leptospiral ברקמות הוא גבוה יחסית מכרסם מודלים זיהום רגישים קטלני (בדרך כלל 104 108 חיידקים/גרם של רקמת)7,8,9 באותה מידה כמו מאגר המארחים 10,11, רקמות ניתן לנתח ישירות ללא צורך תרבות, צמצום הטיות עקב הצמיחה במבחנה .
במחקרים Tn-Seq עם רוב פתוגנים חיידקיים שתוארו עד כה, התדר של מוטגנזה מכוונת insertional מותרים זיהום עם בריכות גדולות המכיל מוטציות קולקטיבי שיש הוספות המרווחות מקרוב transposon מרובות בתוך כל ג’ין4 ,12,13,14. Tn-Seq גם פותחה עבור חיידק אשר תדירות מוטגנזה מכוונת היא נמוכה יותר,6. עם Leptospira, ספרייה של מוטציות transposon יכול להיווצר על ידי החדרת את transposon על פלסמיד mobilizable על-ידי ההטיה כפי שתואר על ידי Slamti et al15. עם זאת, התדירות של מוטגנזה מכוונת transposon של ל’ interrogans הוא נמוך. כאשר transposon Himar1 הוצג על פלסמיד conjugative, תדירות transconjugant דווחה רק 8.5 x 10-8 לכל נמען תא עם המתח לאי של ל’ interrogans16 , סביר להניח שתהיה מסכן באופן דומה עם רוב זנים אחרים של ל’ interrogans. פרוטוקול המתואר כאן הוא בחלקו מבוסס על שפותחה עבור Borrelia burgdorferi, שבו תדירות מוטגנזה מכוונת insertional transposon היא גם נמוכה6.
עבור שלנו פיילוט עם פרוטוקול ה-17, ערכנו מוטגנזה מכוונת transposon עם ל’ interrogans serovar Manilae זן L495 בגלל ההצלחה של קבוצות אחרות לבודד מוטציות ההכנסה transposon בנימה זו יחד עם שלה נמוך LD50 (מנה קטלנית) התקפה אלימה1. אנו מוקרן מוטציות 42 על ידי Tn-Seq, זיהו כמה מועמדים מוטציה פגומה בהתקפה אלימה, כולל שני עם הוספות בגן אדנילאט cyclase המועמד. בדיקה אישית של המוטציות שני באוגרים אישר כי הם היו בנכונותם התקפה אלימה17.
למרות תוצאות שלנו פיילוט עבור hamster תיגר intraperitoneally עם מוטציות ל’ interrogans 42 מוצגים17, אנו מצפים כי בריכות גדולות יותר של מוטציות יכולים להיות מוקרן על ידי Tn-תת סעיף. בגלל התדירות של transconjugants הוא נמוך (100-200 transconjugants/הזדווגות), מספר matings נחוצים ליצור מספר מספיק של מוטציות לניסויים Tn…
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה על ידי פרס הצטיינות לענייני חיילים משוחררים (עד D.A.H.), המכון הלאומי לבריאות להעניק R01 AI 034431 (D.A.H.).
Kanamycin sulfate from Streptomyces kanamyceticus | Sigma-Aldrich | K4000 | |
2,6-diaminopimelic acid | Sigma-Aldrich | D1377 | |
Spectinomycin dihydrochloride pentahydrate | Sigma-Aldrich | S4014 | |
Axio Lab A1 microscope with a darkfieldcondenser | Zeiss | 490950-001-000 | |
DNeasy blood and tissue kit | Qiagen | 69504/69506 | |
MinElute PCR Purification | Qiagen | 28004/28006 | |
QIAquick PCR purification kit | Qiagen | 28104/28106 | |
Model 505 Sonic Dismembrator | Fisher Scientific | FB-505 | |
2.5" Cup horn | Fisher Scientific | FB-4625 | |
Bead Ruptor 24 | Omni International | 19-010 | Step 3.1.2.4 |
Terminal deoxynucleotidyl transferase | Promega | M828C | |
Master mix Phusion | Thermo Scientific | F531 | Preparation of genomic libraries, step 3.4. |
DreamTaq Master Mix | Thermo Scientific | K9011/K9012 | Identification of the transposon insertion site, step 1.2. |
dCTP | Thermo Scientific | R0151 | |
ddCTP | Affymetrix/ USBProducts | 77112 | |
T100 Thermal cycler | BioRad | 1861096 | |
Qubit 2.0 fluorometer | Invitrogen | Q32866 | step 3.6. |
Qubit dsDNA HS assay kit | Invitrogen | Q32851/Q32854 | step 3.6. |
Qubit assay tubes | life technologies | Q32856 | step 3.6. |
PBS pH 7.2 (1X) | Gibco | 20012-027 20012-050 | |
Disposable scalpel No10 | Feather | 2975#10 | |
Plastic K2 EDTA 2 ml tubes | BD vacutainer | 367841 | |
syringe U-100 with 26G x ½” needle | BD vacutainer | 329652 | IP challenge, step 2.2.1. |
3 mL Luer-Lok tip syringe | BD vacutainer | 309657 | Cardiac puncture, step 2.4.2. |
25G X 5/8” needle | BD vacutainer | 305901 | Cardiac puncture, step 2.4.2. |
25 mm fritted glass base with stopper | EMD Millipore | XX1002502 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
25 mm aluminum spring clamp | EMD Millipore | XX1002503 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
15 ml borosilcate glass funnel | EMD Millipore | XX1002514 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
125 ml side-arm Erlenmeyer flask | EMD Millipore | XX1002505 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
Acetate-cellulose filter VVPP (pore size 0.1 mm; diameter 25 mm) | EMD Millipore | VVLP02500 |