Hier beschrijven we een techniek die transposon mutagenese met hoge gegevensdoorvoer sequencing combineert te identificeren en kwantificeren van transposon leptospiral mutanten in weefsels na een uitdaging van hamsters. Dit protocol kan worden gebruikt voor scherm mutanten voor overleving en verspreiding in dieren en kan ook worden toegepast op in vitro studies.
In dit manuscript beschrijven we een transposon sequencing (Tn-Seq) techniek om te identificeren en kwantificeren van Leptospira interrogans mutanten gewijzigd in fitness tijdens infectie van Golden Syrische hamsters. Willekeurige transposon mutagenese combineert TN-Seq met de kracht van high-throughput sequencing technologie. Dieren worden uitgedaagd met een pool van transposon mutanten (ingang zwembad), gevolgd door het oogsten van bloed en weefsels een paar dagen later te identificeren en kwantificeren van het aantal mutanten in elk orgaan (uitgang zwembaden). De uitvoer zwembaden worden vergeleken met de ingang zwembad te beoordelen van de geschiktheid in vivo van elke mutant. Deze aanpak maakt het mogelijk screening van een groot zwembad van mutanten in een beperkt aantal dieren. Met kleine aanpassingen, kan dit protocol worden uitgevoerd met elke diermodel van leptospirose, reservoir host zoals ratten en acute infectie modellen zoals hamsters, evenals in vitro studies. TN-Seq biedt een krachtige tool om scherm voor mutanten met in vivo en in vitro fitness defecten.
Identificatie van virulentiegenen voor sommige bacteriën, zoals Leptospira spp., is moeilijk vanwege het beperkte aantal genetische tools beschikbaar. Een veel gebruikte aanpak is het creëren van een collectie van mutanten door willekeurige transposon mutagenese, gevolgd door de identificatie van de site van de invoegpositie in elke mutant en virulentie testen van individuele transposon mutanten in een dierlijk model. Deze aanpak is tijdrovend, duur, en vereist een groot aantal dieren.
Wanneer willekeurige mutagenese werd voor het eerst ontwikkeld voor het pathogene agens Leptospira interrogans, werden genen die betrokken zijn in virulentie geïdentificeerd door het testen van afzonderlijke mutanten in een dierlijk model1. Mutanten werden geselecteerd op basis van criteria zoals hun potentiële rol in de signalering beweeglijkheid of hun voorspelde buitenmembraan of oppervlakte locatie. Als de meerderheid van de leptospiral genen coderen hypothetische proteïnen van onbekende functie2, selecteren mutanten op basis van deze criteria de mogelijkheid om te ontdekken van nieuwe leptospiral virulentiegenen.
Meer recentelijk, zwembaden van L. interrogans transposon mutanten waren gescreend voor infectiviteit in de hamster en muis modellen3. Elk dier werd aangevochten met een pool van maximaal 10 mutanten. Infectiviteit van een mutant werd gescoord als positief als het werd ontdekt door PCR van culturen verkregen uit bloed en de nieren. PCR testen was moeizaam, omdat het een individuele PCR reactie nodig voor elke mutant in het zwembad. Omdat de frequentie van elke mutant in de culturen was niet gekwantificeerd, was de aanpak bevooroordeeld naar identificatie van zeer verzwakte mutanten.
We beschrijven een transposon (Tn-Seq) techniek, als een strategie om efficiënter scherm voor virulentiegenen te rangschikken. TN-seq bestaat uit het creëren van een bibliotheek van mutanten door transposon mutagenese gevolgd door massale parallelle sequencing4,5,6. Kort, transposon mutanten zijn gebundeld, geënt in dieren, en later teruggevonden uit verschillende organen (uitgang zwembaden). Het DNA van de zwembaden van de uitvoer is geëxtraheerd en verteerd met enzymen van de beperking of geschoren met het ultrasoonapparaat. Twee rondes van PCR gericht op de kruispunten van de transposon invoeging sites worden uitgevoerd. Deze stap kan de toevoeging van de adapters nodig voor de sequencing. De resulterende PCR producten worden geanalyseerd door hoge gegevensdoorvoer sequentiebepaling te identificeren van de site transposon invoeging van elke mutant van het zwembad samen met hun relatieve overvloed, die wordt vergeleken met de oorspronkelijke samenstelling van de pool van mutant.
Het belangrijkste voordeel van deze aanpak is de mogelijkheid om gelijktijdig scherm een groot aantal mutanten met een klein aantal dieren. TN-Seq hoeft niet de voorkennis van de transposon invoeging sites die de kansen verhoogt van het ontdekken van nieuwe Leptospira-specifieke genen die betrokken zijn in virulentie met minder tijd en meer efficiëntie. Omdat leptospiral last in weefsels is relatief hoog in knaagdier modellen vatbaar voor dodelijke infectie (meestal 104 tot 108 bacteriën/g weefsel)7,8,9 zo goed zoals in reservoir hosts 10,11, weefsels kunnen rechtstreeks worden geanalyseerd zonder de behoefte aan cultuur, vermindering van vooroordelen als gevolg van in vitro groei.
In Tn-Seq studies met de meeste bacteriële pathogenen beschreven tot nu toe, de hoge frequentie van dat mutagenese toegestaan infectie met grote zwembaden met mutanten collectief hebben meerdere nauw-spaced transposon invoegingen binnen elk gen4 ,12,13,14. TN-Seq heeft ook ontwikkeld voor een bacterie waarvoor de mutagenese frequentie veel lagere6 is. Met Leptospira, kan een bibliotheek van transposon mutanten worden gegenereerd door de invoering van de transposon op een inzetbare plasmide door vervoeging zoals beschreven door Slamti et al.15. De frequentie van transposon mutagenese van L. interrogans is echter laag. Wanneer de Himar1 transposon werd geïntroduceerd op een conjugative plasmide, werd de frequentie van de transconjugant gemeld dat enige 8,5 x 10-8 per ontvanger cel met de Lai stam van L. interrogans16 en dreigt te worden ook arme met de meeste andere stammen van L. interrogans. Het protocol hier beschreven is in deel op basis van die ontwikkeld voor Borrelia burgdorferi, waarin ook de frequentie van transposon dat mutagenese lage6.
Voor onze pilot experiment met het protocol17voerden we transposon mutagenese met L. interrogans serovar Manilae stam L495 vanwege het succes van andere groepen in het isoleren van transposon insertiemutanten in de stam samen met de lage LD50 (letale dosis) voor virulentie1. We 42 mutanten door Tn-Seq gescreend en verschillende mutant kandidaten defect in virulentie, waaronder twee met invoegingen in een kandidaat-adenylaat cyclase gen geïdentificeerd. Individuele testen van de twee mutanten in hamsters bevestigd dat zij tekort aan virulentie17waren.
Hoewel uit onze proefproject voor hamster uitgedaagd intraperitoneally met 42 L. interrogans mutanten17 resultaten zijn, verwachten we dat grotere zwembaden van mutanten kunnen worden gescreend door Tn-Seq. Omdat de frequentie van transconjugants laag is (100-200 transconjugants/paring), verschillende verparingen zijn noodzakelijk voor het genereren van een voldoende aantal mutanten voor grote Tn-Seq experimenten. Onderhouden van een groot aantal mutanten in vloeibare culturen biedt logis…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd gesteund door een veteranen zaken Merit Award (aan D.A.H.) en een National Institute of Health toekennen R01 AI 034431 (D.A.H.).
Kanamycin sulfate from Streptomyces kanamyceticus | Sigma-Aldrich | K4000 | |
2,6-diaminopimelic acid | Sigma-Aldrich | D1377 | |
Spectinomycin dihydrochloride pentahydrate | Sigma-Aldrich | S4014 | |
Axio Lab A1 microscope with a darkfieldcondenser | Zeiss | 490950-001-000 | |
DNeasy blood and tissue kit | Qiagen | 69504/69506 | |
MinElute PCR Purification | Qiagen | 28004/28006 | |
QIAquick PCR purification kit | Qiagen | 28104/28106 | |
Model 505 Sonic Dismembrator | Fisher Scientific | FB-505 | |
2.5" Cup horn | Fisher Scientific | FB-4625 | |
Bead Ruptor 24 | Omni International | 19-010 | Step 3.1.2.4 |
Terminal deoxynucleotidyl transferase | Promega | M828C | |
Master mix Phusion | Thermo Scientific | F531 | Preparation of genomic libraries, step 3.4. |
DreamTaq Master Mix | Thermo Scientific | K9011/K9012 | Identification of the transposon insertion site, step 1.2. |
dCTP | Thermo Scientific | R0151 | |
ddCTP | Affymetrix/ USBProducts | 77112 | |
T100 Thermal cycler | BioRad | 1861096 | |
Qubit 2.0 fluorometer | Invitrogen | Q32866 | step 3.6. |
Qubit dsDNA HS assay kit | Invitrogen | Q32851/Q32854 | step 3.6. |
Qubit assay tubes | life technologies | Q32856 | step 3.6. |
PBS pH 7.2 (1X) | Gibco | 20012-027 20012-050 | |
Disposable scalpel No10 | Feather | 2975#10 | |
Plastic K2 EDTA 2 ml tubes | BD vacutainer | 367841 | |
syringe U-100 with 26G x ½” needle | BD vacutainer | 329652 | IP challenge, step 2.2.1. |
3 mL Luer-Lok tip syringe | BD vacutainer | 309657 | Cardiac puncture, step 2.4.2. |
25G X 5/8” needle | BD vacutainer | 305901 | Cardiac puncture, step 2.4.2. |
25 mm fritted glass base with stopper | EMD Millipore | XX1002502 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
25 mm aluminum spring clamp | EMD Millipore | XX1002503 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
15 ml borosilcate glass funnel | EMD Millipore | XX1002514 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
125 ml side-arm Erlenmeyer flask | EMD Millipore | XX1002505 | Filtration unit system, step 1.1.7. |
Acetate-cellulose filter VVPP (pore size 0.1 mm; diameter 25 mm) | EMD Millipore | VVLP02500 |