Qui descriviamo una metodologia per ottenere una popolazione pura di mioblasti umani dal tessuto muscolare adulto. Queste cellule sono utilizzate per studiare la differenziazione muscolare scheletrica in vitro e, in particolare, per studiare le proteine coinvolte nella segnalazione Ca 2+ .
Le cellule satellitari (SC) sono cellule staminali muscolari situate tra la membrana plasmatica delle fibre muscolari e la lamina basale circostante. Sono essenziali per la rigenerazione muscolare. A seguito di lesioni, che si verificano spesso nei muscoli scheletrici, vengono attivati SC. Si proliferano come mioblasti e si differenziano per riparare le lesioni muscolari. Tra molti eventi che si verificano durante la differenziazione muscolare, i segnali citocholic Ca 2+ sono di grande importanza. Questi segnali Ca 2+ derivano da Ca 2+ rilascio dalla interne Ca 2 + negozi, nonché da Ca 2+ voce dallo spazio extracellulare, in particolare il negozio azionato Ca 2+ entrata (Soče). Questo documento descrive una metodologia utilizzata per ottenere una pura popolazione di mioblasti umani provenienti da campioni muscolari raccolti dopo la chirurgia ortopedica. Il tessuto viene digerito meccanicamente ed enzimatico e le cellule vengono amplificate e poi ordinate mediante citometria a flusso in funzione della presenza di speciMarcatori a membrana fic. Una volta ottenuto, i mioblasti umani si espandono e si impegnano a differenziarsi rimuovendo i fattori di crescita dal mezzo di coltura. I livelli di espressione di fattori specifici di trascrizione e di immunofluorescenza in vitro vengono utilizzati per valutare il processo di differenziazione miogenica nelle condizioni di controllo e dopo la silenziazione delle proteine coinvolte nella segnalazione Ca 2+ . Infine, abbiamo dettagliato l'uso di Fura-2 come una sonda ratiometrica Ca 2+ che fornisce misure affidabili e riproducibili di SOCE.
I muscoli scheletrici umani sono composti da gruppi di fibre muscolari contrattili e multinucleate derivanti dalla fusione di cellule precursori miogeniche. I muscoli scheletrici hanno la capacità di rigenerarsi dopo lesioni grazie alla presenza di SC, le cellule staminali del muscolo scheletrico situate tra la membrana plasmatica delle miofibere (sarcolemma) e la lamina basale. Nel muscolo non sinistro, gli SC sono prevalentemente presenti in uno stato quiescente. In risposta a stress meccanici o lesioni, le SC si attivano (myoblasti), si proliferano e subiscono differenze per formare nuove miofibere o auto-rinnovamento per ricostituire il pool SC 1 , 2 . Nel corso degli anni sono state sviluppate diverse tecniche per isolare SC e la loro progenie, i mioblasti, dalle biopsie muscolari dello scheletro. Con la maggiore comprensione dei marker di superficie delle cellule espressi su queste cellule e la metodologia della classificazione delle cellule attivata con fluorescenza (FACS) 3, 4 , 5 , è ora possibile isolare popolazioni puro di mioblasti umane dai campioni muscolari.
La segnalazione del calcio regola lo sviluppo muscolare scheletrico, l'omeostasi e la rigenerazione. In particolare, la voce Ca 2+ attivata dopo l'esaurimento intracellulare del negozio, chiamata SOCE, è di grande importanza 6 per questi processi. Con la stimolazione cellulare, il livello Ca 2+ nel reticolo endo / sarcoplasmatico (ER / SR) diminuisce, che a sua volta attiva il canale Ca 2+ delle membrane plasmatiche che consentono l'ingresso di Ca 2+ per riempire l'ER / SR 7 . Le due principali proteine coinvolte nella SOCE sono la proteina di interazione stromale 1 (STIM1) ER / SR Ca 2+ e la membrana plasmatica Ca 2+ canale Orai1. Il muscolo scheletrico esprime abbondantemente queste due proteine, così come altre proteine delle stesse famiglie (STIM2 aNd Orai2-Orai3) 8 , 9 e diversi canali permeabili Ca 2+ della famiglia canonica potenziale recettoriale transiente (TRPC) 10 , 11 , 12 , 13 . La penetrazione Ca 2+ attraverso il percorso SOCE è di grande importanza per la formazione / rigenerazione muscolare 14 . Le mutazioni delle proteine STIM1 o Orai1 hanno effetti deleteri sulla funzione muscolare, determinando principalmente l'ipotonia muscolare 15 . Modelli animali con insufficienza SOCE mostrano anche ridotta massa muscolare e della forza, insieme con una maggiore affaticabilità 6, 16, 17. Come già accennato, altre proteine di STIM e Orai, così come molti canali TRPC, sono espresse in muscoli scheletrici, ei loro rispettivi ruoli non sono stati ancora determinati. Colpendo dPossiede il loro livello di espressione, è quindi possibile esaminare le loro implicazioni nella SOCE e nei loro ruoli durante la differenziazione muscolare scheletrica umana.
La misurazione SOCE può essere effettuata utilizzando due approcci diversi: registrazioni elettrofisiologiche di corrente e misurazioni Ca 2+ . L'elettrofisiologia è sicuramente un metodo più diretto, in quanto misura la corrente dell'interesse e la relativa firma elettrofisiologica. Tuttavia, questa tecnica è molto difficile applicarsi alle cellule muscolari, soprattutto a causa della grande dimensione delle cellule muscolari e della piccola dimensione della corrente SOCE endogena. L'imaging Cytosolic Ca 2+ è tecnicamente molto accessibile, ma la misura è più indiretta, poiché il livello Ca 2+ misurato nel citosol riflette sia l'ingresso di Ca 2+ che il riapprocco della cellula o nei negozi interni.
Una metodologia che prevede l'isolamento di mioblasti da piccoli pezzi di scafo umanoIl muscolo etale dopo la digestione enzimatica, l'amplificazione e la FACS è spiegato in questo articolo. Il processo di differenziamento muscolare e il protocollo immunofluorescenza per seguire l'espressione dei marcatori di differenziazione nel tempo sono descritti 18. Infine, si spiega la misurazione del SOCE e il ruolo dei differenti canali ionici nella distinzione del segnale di Ca 2+ e della differenziazione muscolare scheletrica.
L'isolamento e la cultura dei mioblasti umani dal muscolo scheletrico adulto offre un modello in vitro per studiare la differenziazione muscolare e la rigenerazione muscolare. In questo documento, forniamo un protocollo che consente la purificazione di elevate rese di mioblasti umane in modo semplice e costoso. Inoltre, questa tecnica fornisce risultati affidabili e riproducibili in termini di percentuale di mioblasti isolati e della loro efficacia di differenziazione myogen…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto dalla Fondazione nazionale svizzera della scienza (numero di sovvenzione 310030-166313), dalla "Fondazione Suisse pour la recherche sur les maladies musculaires", dalla "Fondazione Marcel Levaillant" e dalla Fondazione per la recherche ostéo-articulaire.
Ham’s F10 | ThermoFisher Scientific | 31550-023 | |
FCS | ThermoFisher Scientific | 10270-106 | Lot 41G5532K |
BSA | Sigma | O5482 | |
fetuin | Sigma | F3385 | |
EGF | Corning | 354001 | |
Dexamethansone | Sigma | D1756 | |
Insulin | Sigma | I9278 | |
Creatine | Sigma | 27900 | |
Pyruvate | Sigma | P4562 | |
Uridine | Sigma | U3003 | |
Gentamycin | ThermoFisher Scientific | 15710-049 | |
Trypsin-EDTA 0.05% | ThermoFisher Scientific | 25300-062 | |
70 μm cell strainer | Falcon | 352350 | |
40 μm cell strainer | Falcon | 352340 | |
Falcon 50 ml tube | Falcon | 352070 | |
Falcon 15 ml tube | Falcon | 352096 | |
Falcon 5 ml tube (FACS) | Falcon | 352058 | |
Culture medium: OPTI-MEM | ThermoFisher Scientific | 31985-047 | |
Transfectant reagnt: RNAiMax | ThermoFisher Scientific | 1756064 | |
PBS | ThermoFisher Scientific | 14190-094 | |
Mounting medium | Fluka | 10981 | |
Mouse anti-MyHC * | DSHB | MF20 | concentrate |
Mouse anti-myogenin | BD Pharmigen | 556358 | |
Rabbit anti-MEF2 | Santa Cruz Biotech | C-21 | |
Goat anti-mouse Alexa488 | ThermoFisher Scientific | A11029 | |
Goat anti-rabbit Alexa 546 | ThermoFisher Scientific | A11035 | |
Mouse anti human CD56-Alexa488 | BD Pharmingen | 557699 | |
Mouse anti human CD146-PECy7 | BD Pharmingen | 562135 | |
Mouse anti human CD45-PE-CF594 | BD Pharmingen | 562279 | |
Mouse anti human CD34-APC | BD Pharmingen | 345804 | |
Mouse anti human CD144-PE | BD Pharmingen | 560410 | |
Alexa Fluor 488 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 557702 | |
PECy7 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 557872 | |
PE-CF594 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 562292 | |
APC mouse IgG1k | BD Pharmingen | 550854 | |
PE mouse IgG1k | BD Pharmingen | 556650 | |
DAPI | Sigma | D9542 | CAUTION: toxic compound |
Paraformaldehyde | Fluka | 762400 | |
Fura-2 AM | ThermoFisher Scientific | F1201 | |
Pluronic F-127 | ThermoFisher Scientific | P3000MP | |
Thapsigargin | Sigma | T9033 | CAUTION : toxic compound |
Ratio imaging acquisition software: Metafluor 6.3 | Molecular Device | ||
* : MF 20 was deposited to the DSHB by Fischman, D.A. |