يستخدم حقن ميكروينجكتيون من البويضات الماوس لكل من ترانسجينيسيس الكلاسيكية ( أي التكامل العشوائي للجينات المحورة وراثيا) و كريسبر بوساطة استهداف الجينات. هذا البروتوكول يستعرض أحدث التطورات في ميكروينجكتيون، مع التركيز بشكل خاص على مراقبة الجودة واستراتيجيات التنميط الجيني.
وقد ساهم استخدام الفئران المعدلة وراثيا بشكل كبير في الدراسات على كل من الفسيولوجية والمرضية في عمليات الجسم الحي . حقن برونوكلار من التعبير الحمض النووي يبني في البويضات المخصبة لا يزال الأسلوب الأكثر شيوعا لتوليد الفئران المعدلة وراثيا ل أوفيركسريسيون. مع إدخال تكنولوجيا كريسبر لاستهداف الجينات، وقد تم تمديد حقن برونوكلار في البويضات المخصبة لتوليد كل من خروج المغلوب والفئران نوكين. ويصف هذا العمل إعداد الحمض النووي للحقن وتوليد أدلة كريسبر لاستهداف الجينات، مع التركيز بشكل خاص على مراقبة الجودة. إجراءات التنميط الجيني المطلوبة لتحديد المؤسسين المحتملين أمر بالغ الأهمية. وترد في هذا التقرير استراتيجيات مبتكرة للتنميط الجيني تستفيد من قدرات "تعدد الإرسال" في نظام كريسبر. كما يتم تحديد الإجراءات الجراحية. معا، فإن خطوات البروتوكول تسمح لتوليد جينالفئران المعدلة إيكاليا ولإنشاء لاحق من مستعمرات الماوس لمجموعة كبيرة من مجالات البحث، بما في ذلك علم المناعة، علم الأعصاب، والسرطان، وعلم وظائف الأعضاء، والتنمية، وغيرها.
وكانت النماذج الحيوانية، سواء في الفقاريات واللافقاريات، مفيدة لفحص الفيزيولوجيا المرضية للظروف البشرية مثل مرض الزهايمر 1 ، 2 . وهي أيضا أدوات لا تقدر بثمن للبحث عن معدلات المرض وتطوير استراتيجيات العلاج الجديدة في نهاية المطاف على أمل العلاج. على الرغم من أن كل نموذج له قيود جوهرية، واستخدام الحيوانات والنماذج النظامية بأكملها أمر حيوي للبحوث الطبية الحيوية. وذلك لأن البيئة الفسيولوجية الأيضية والمعقدة لا يمكن محاكاة تماما في زراعة الأنسجة.
حتى الآن، لا يزال الفأر أنواع الثدييات الأكثر شيوعا المستخدمة في التلاعب الجيني لأنه يتميز العديد من المزايا. يتم حفظ العمليات الفسيولوجية والجينات المرتبطة بالأمراض بشكل كبير بين الفئران والبشر. كان الفأر أول حيوان ثديي له تسلسله الكامل للجينوم (2002)، قبل سنة واحدة من الجين البشريلي (2003). وبصرف النظر عن هذه الثروة من المعلومات الوراثية، والفأر لديه قدرات تربية جيدة، دورة تنمية سريعة (6 أسابيع من الإخصاب إلى الفطام)، وحجم معقول. كل هذه المزايا، إلى جانب المؤشرات الفسيولوجية، مثل الألوان معطف متميزة (المطلوبة لاستراتيجيات عبور)، وجعل الماوس نموذجا جذابا للتلاعب الجيني. ومن الجدير بالذكر أنه في سن مبكرة جدا من علم الوراثة الحديثة، بدأ جريجور مندل العمل على الفئران قبل الانتقال إلى النباتات 3 .
وأسفرت تقنيات نقل الجينات عن توليد الفأرة المعدلة وراثيا الأولى على مدى ثلاثة عقود مضت 4 ، التي تم إنشاؤها في البداية باستخدام الولادة الفيروسية. ومع ذلك، سرعان ما أدرك الباحثون أن واحدة من التحديات الرئيسية للالترانزجينيس الماوس هو عدم القدرة على السيطرة على مصير الحمض النووي خارجي. لأن التسليم الفيروسي من الجينات المحورة في البويضات الماوس أدى إلى نسخ متعددة متكاملة بشكل عشوائي في الجينوم، و بوسيبيليتذ من إنشاء خطوط المعدلة وراثيا اللاحقة كان محدودا.
تم التغلب على أحد هذه القيود عندما غوردون وآخرون. ولدت أول خط الماوس المعدلة وراثيا بواسطة ميكروينجكتيون 5 ، 6 . بدأ هذا عصر تكنولوجيا الحمض النووي المؤتلف، والمعلمات التي تؤثر على نتائج جلسة ميكروينجكتيون وقد درست على نطاق واسع 7 . على الرغم من أن ميكروينجكتيون لا يسمح للسيطرة على موقع التكامل من التحوير (الذي يؤدي في نهاية المطاف إلى مستويات التعبير محددة لكل مؤسس الماوس)، والميزة الرئيسية لل ميكروينجكتيون برونوكلار يبقى تشكيل المحاور ( أي صفائف من نسخ متعددة من التحوير، مرتبطة في سلسلة) قبل التكامل الجيني 5 . وقد استخدمت هذه الخاصية على مر السنين لإنشاء الآلاف من خطوط الماوس المعدلة وراثيا التي أوفيركسريس الجين من الفائدة. ومنذ ذلك الحين، ترانسجينيسيس، والتعديل الجيني لجينوم الكائن الحي، وقد استخدم على نطاق واسع لتحديد دور الجينات واحدة في حدوث الأمراض.
تم تحقيق إنجاز رئيسي آخر في التلاعب الجينوم الماوس عندما ماريو كابيتشي تعطل بنجاح الجين واحد في الماوس، وفتح عصر الجينات استهداف 8 . ومع ذلك، ظهرت العيوب الرئيسية بسرعة من الخلايا الجذعية المستندة إلى الخلايا الجذعية المستقرة، بما في ذلك تحديات زراعة الخلايا الجذعية السرطانية، ودرجة متغير نوعا ما من الخيمرية، وطول العملية ( أي 12-18 شهرا، والحد الأدنى، للحصول على الماوس) .
في الآونة الأخيرة، ظهرت أوجه التقدم في التكنولوجيات الجديدة، مثل إندونوكليسيس المهندسة (على سبيل المثال، نوكليسيس الإصبع الزنك (زفن)، النسخ المنشط مثل نوكليسيس المستجيب (تالين)، وتجمعات منتظمة متداخلة قصيرة متداخلة قصيرة (كريسبر / Cas9)) كطرق بديلة ل وتسريع عملية استهداف الجينات في هيئة التصنيع العسكريe 9 ، 10 . يمكن حقن هذه إندونوكليس بسهولة في البويضات الماوس عن طريق ميكروينجكتيون، مما يسمح لتوليد الفئران المستهدفة الجينات في اقل من 6 أسابيع.
منذ التقرير الأول عن استخدام كريسبر لتحرير الجينوم 11 ، هذا الجهاز المناعي التكتيكي الجرثومي قد حل محل زفن و تالين بسبب العديد من المزايا، بما في ذلك سهولة التوليف والقدرة على استهداف موقع متعدد في وقت واحد (المشار إليها باسم "تعدد الإرسال "). تم استخدام كريسبر لأول مرة لاستهداف الجينات في الفئران 12 ومنذ ذلك الحين تم تطبيقها على عدد لا يحصى من الأنواع، من النباتات إلى البشر 13 ، 14 . وحتى الآن، لا يوجد تقرير عن نوع واحد مقاوم لتحرير الجينوم كريسبر.
اثنين من الخطوات الرئيسية المحددة لتوليد الفئران المعدلة وراثيا هي حقن البويضات وإعادة زرعمن هذه البويضات في الإناث الحوامل الزائفة. على الرغم من أن هذه التقنية قد وصفها لنا 15 وآخرون 16 ، والتحسينات التقنية الأخيرة في علم الأجنة الماوس وتقنيات نقل الجينات ثورة في عملية توليد الفئران المعدلة وراثيا. وسيتم وصف هذه التحسينات هنا.
خطوات حاسمة داخل البروتوكول
ومن المعروف أن توليد الفئران المعدلة وراثيا أن يكون تحديا من الناحية الفنية. ومع ذلك، فإن بروتوكول المقدمة هنا هو الأسلوب الأمثل والمبسط الذي يسمح لإتقان واستكشاف هذه التقنية في وقت قياسي. هناك خطوتان ?…
The authors have nothing to disclose.
ويشكر المؤلفون موظفي مرفق الحيوانات (برك) على دعمهم المستمر. وقد تم تمويل هذا العمل من قبل المجلس الوطني للصحة والبحوث الطبية ومجلس البحوث الأسترالي.
Micropipette 0.1-2.5 ul | Eppendorf | 4920000016 | |
Micropipette 2-20 ul | Eppendorf | 4920000040 | |
Micropipette 20-200 ul | Eppendorf | 4920000067 | |
Micropipette 100-1000 ul | Eppendorf | 4920000083 | |
Molecular weight marker | Bioline | BIO-33025 | HyperLadder 1kb |
Molecular weight marker | Bioline | BIO-33056 | HyperLadder 100 bp |
Agarose | Bioline | BIO-41025 | |
EDTA buffer | Sigma-Aldrich | 93296 | 10x – Dilute to 1x |
Ethidium bromide | Thermo Fisher Scientific | 15585011 | |
SYBR Safe gel stain | Invitrogen | S33102 | |
Gel extraction kit | Qiagen | 28706 | |
PCR purification kit (Qiaquick) | Qiagen | 28106 | |
Vacuum system (Manifold) | Promega | A7231 | |
Nuclease-free microinjection buffer | Millipore | MR-095-10F | |
Ultrafree-MC microcentrifuge filter | Millipore | UFC30GV00 | |
Cas9 mRNA | Sigma-Aldrich | CAS9MRNA | |
CRISPR expressing plasmid (px330) | Addgene | 42230 | |
Nuclease free water | Sigma-Aldrich | W4502 | |
Phusion polymerase | New England Biolabs | M0530L | |
T7 Quick High Yield RNA kit | New England Biolabs | E2050S | |
RNA purification spin columns (NucAway) | Thermo Fisher Scientific | AM10070 | |
ssOligos | Sigma-Aldrich | OLIGO STANDARD | |
Donor plasmid | Thermo Fisher Scientific | GeneArt | |
Hyaluronidase | Sigma-Aldrich | H3884 | |
KSOMaa embryo culture medium | Zenith Biotech | ZEKS-100 | |
Mineral oil | Zenith Biotech | ZSCO-100 | |
M2 Medium | Sigma-Aldrich | M7167 | |
Cytochalasin B | Sigma-Aldrich | C6762 | |
Mouthpiece | Sigma-Aldrich | A5177 | |
Glass microcapillaries | Sutter Instrument | BF100-78-10 | |
Proteinase K | Applichem | A3830.0100 | |
Dumont #5 forceps | Fine Science Tools | 91150-20 | |
Iris scissors | Fine Science Tools | 91460-11 | |
Vessel clamp | Fine Science Tools | 18374-43 | |
Wound clips | Fine Science Tools | 12040-01 | |
Clips applier | Fine Science Tools | 12018-12 | |
Micro-scissors | Fine Science Tools | 15000-03 | |
Cauterizer | Fine Science Tools | 18000-00 | |
Non-absorbable surgical sutures (Ethilon 3-0) | Ethicon | 1691H | |
5% CO2 incubator | MG Scientific | Galaxy 14S | |
Spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | Nanodrop 2000c | |
Thermocycler | Eppendorf | 6321 000.515 | |
Electrophoresis set up | BioRad | 1640300 | |
UV Transilluminator | BioRad | 1708110EDU | |
Thermocycler | Eppendorf | 6334000069 | |
Stereoscopic microscope | Olympus | SZX7 | |
Inverted microscope | Olympus | IX71 | |
2x Micromanipulators | Eppendorf | 5188000.012 | |
Oocytes manipulator | Eppendorf | 5176000.025 | |
Microinjector (Femtojet) | Eppendorf | 5247000.013 | |
Mice C57BL/6J strain | Australian BioResources | C57BL/6JAusb |