Işık levha bazlı floresan mikroskobu ile böcek embriyonlarından morfojenezini Görüntüleme tekniğin durumu haline gelmiştir. Bu protokol ana hatlarıyla ve Tribolium castaneum embriyolar için uygun üç montaj teknikleri karşılaştırır, canlı görüntüleme için uygun iki yeni ısmarlama transjenik çizgileri sunar, önemli bir kalite kontrol anlatılır ve mevcut deney sınırlamaları gösterir.
Kırmızı un böceği Tribolium castaneum gelişimsel genetik ve evrimsel gelişim biyolojisi önemli bir böcek model organizmadır haline gelmiştir. Işık levha bazlı floresan mikroskobu ile Tribolium embriyoların gözlemlenmiş olması alışılmış geniş alan ve konfokal floresan mikroskobu üzerinde sayıda avantajı vardır. Nedeniyle hafif bir levha bazlı mikroskop eşsiz özelliklerine göre, canlı örneklerin üç boyutlu görüntüler yüksek bir sinyal-gürültü oranına sahip kaydedilebilir ve önemli ölçüde çok sayıda son dönemlerde foto-ağartma yanı sıra birden fazla yön boyunca foto-düşük toksisiteye günler. Metodolojik gelişme ve verilerin sürekli artış fazla dört yıllık zaman Tribolium toplumda ışık levha teknolojisinin kullanımı için de böcek toplumda olduğu gibi geniş standart operasyon prosedürlerini kurmak için uygun görünüyor. Bu protokol, f uygun üç montaj teknikleri tarifya da farklı amaçlar, uzun süreli canlı görüntüleme için uygun olan iki yeni ısmarlama transgenik Tribolium hatları sunulur sabit embriyo, hücre içi yapıları etiket beş floresan boyalar önerir ve kaydedilen verilerin zamanında değerlendirilmesi için, veriler, post-işlem hakkında bilgi sağlar. Temsilci sonuçlar uzun süreli canlı görüntüleme, optik olarak kısımlara ve birden doğrultular boyunca aynı embriyonun gözlem konsantre. ilgili veri kümeleri indirilebilir bir kaynak olarak temin edilmiştir. Son olarak, protokol canlı görüntüleme deneyleri, güncel sınırlamalar ve diğer böcek türlerine özetlenen prosedürlerin uygulanabilirliği için kalite kontrollerini anlatılır.
Bu protokol öncelikle standart laboratuar ekipmanı daha iyi performans görüntüleme çözümleri aramak gelişimsel biyologlar için tasarlanmıştır. Bu geliştirmek ve Mikrolara rafine teknik odaklı laboratuarlar / topluluklar arasındaki boşluğu kapatmak için sürekli girişimde teşvikmetodolojik olarak kopyalamak ve teknik sorunlara 'tak-çalıştır' çözüm gerektiren yaşam bilimleri laboratuvarları / topluluklar. Ayrıca, ilgi merkezi haline biyolojik soruları hamle bir aksiyomatik yaklaşımını desteklemektedir.
Kara böceklerin büyük bir aile (Tenebrio) aittir kırmızı un böceği Tribolium castaneum, tarım ve yaşam bilimleri içinde uzun bir geçmişi vardır ve meyve sonra ikinci en iyi çalışılan model, böcek model organizma Drosophila melanogaster sinek olduğunu. Son dört yılda, bu çeşitli nedenlerle için embriyonik morfojenezinde, son yirmi yılda, evrimsel gelişim biyolojisi, gelişimsel genetiği güçlü ve popüler böcek model organizma haline geldi ve:
Drosophila ve Tribolium hem Holometabola aittir ama yaklaşık 300 milyon yıl önce 1, 2, 3, 4 sapmıştır. Yüksek türetilen Drosophila embriyonik gelişim yaygın olarak kabul edilmekle birlikte, Tribolium devel bir Atalara modu gösterirböcek türlerine 5, 6, 7, 8, 9 dikkate değer bir oranda bulunan opment. Onun ağız ve antenler embriyogenez 10, 11, 12, 13, 14, 15 boyunca ortaya çıkmakta, yani ilk olarak, Tribolium olmayan involuted baş geliştirme sergiler. İkinci olarak, Tribolium kısa tohumu geliştirme, örneğin, karın segmentleri germband uzama 16, 17, 18, 19 boyunca, arka büyüme bölgesinden ilave edilirler ilkelerini izler. Üçüncüsü, Tribolium geliştirmekte ve daha sonraki alçaltıriki ekstra-embriyonik zarlarını çok ventral embriyo kapsar amniyon, ve tamamen 20, 21, 22 embriyo saran serozası, yani. Her iki membranlar çok önemli bir morfogenetik 23 yanısıra mikroorganizmalar 24, 25 ve kuruması 26 karşı koruyucu bir rol oynar. Dördüncü olarak, embriyonik gelişmekte bacaklar larva yaşam safhasında tamamen işlevsel ve pupa başkalaşım 27, 28, 29, 30, 31 boyunca, yetişkin bacaklar için primordia olarak görev yapar.
Nedeniyle kendi küçük boyutları ve mütevazı talepleri, laboratuvarda Tribolium ekimi oldukça basittir. yabanıl tip Kültürler (WT) suşları veya transgenik çizgiler, tipik olarak yaklaşık 100-300 yetişkin oluşur ve tam tahıl buğday oluşur büyüme ortamı ile üç ila dört santimetre yüksek (yaklaşık 50 gr doldurulmuş bir litrelik bir cam şişe (ayak 80 cm2)) içinde tutulabilir un aktif kuru maya ile takviye edilmiştir. Bir su kaynağı gerekli değildir. Bu küçük veya orta ölçekli ticari olarak bulunabilen böcek kuluçka içinde böcek kültürlerinin onlarca tutmak için hatta küçük laboratuvarlar sağlar. Tribolium Daha sonra gelişim evreleri (larvalar sonra yaklaşık dördüncü safha, pupa ve yetişkin) kolayca eleme ile büyüme ortamından ayrılır. Senkronize embriyolar yumurtlama ortamı üzerinde kısa bir süre için yetişkin inkübe edilmesi ile elde edilir. stok tutma tipik 22-25 ° C'de gerçekleştirilir iken hızla gelişmesi için, böcek kültürleri, 32 ° C (kuşak başına yaklaşık dört hafta) tutulur (yaklaşık on hafta nesil başına).
Son on yıl içinde, birçok standart tecGelişen model organizmalar kitap 32 özetlenen hniques yavaş yavaş uyarlanmış ve Tribolium için optimize edilmiştir. Büyük önem embriyonik 33 gibi genetik yöntemler, larva 34, 35 ya da ebeveyn 36, 37 RNA interferans esaslı gen demonte ya piggyBac 38, 39 ya da Minos 40 transposaz sistemi ve CRISPR / Cas9 tabanlı genomu ile tohum çizgisi dönüşüm ilerletilirler mühendislik 41. Bundan başka, Tribolium genom on yıl önce 42 ile ilgili dizilenmiştir ve etkin ve genom kimlik ve genin 44. sistematik analiz sağlar düzeneği 43 serbest genomun üçüncü turda, şimdi </syukarı> ya da diğer genetik elemanlar 45, 46. Buna ek olarak, diğer dört koleopteran türlerinin genomlarının karşılaştırmalı genetik yaklaşımlar 47, 48, 49, 50 mevcuttur. Sekanslanmış genom ile bağlantılı olarak, iki büyük ölçekli genetik analizler bir araya sokma mutajenez ekran 51 ve sistematik bir RNA girişimi esaslı gen demonte ekran 52, 53, yani gerçekleştirilmiştir.
Geniş açılı, konfokal veya hafif levha bazlı mikroskobu (LSFM) ile floresan canlı görüntüleme çok boyutlu bir içerik (Tablo 1), zamanın bir fonksiyonu (örneğin, morfojenezi) halinde Tribolium embriyonik morfolojisi gözlemlenebilir. widefield ve konfokal floresan mikroskobu olarak, Excittirme ve emisyon ışık aynı objektif merceği içinden yönlendirilir. Her iki yaklaşımda da tüm numune her kaydedilen iki boyutlu düzlemde için aydınlatılmaktadır. Bu nedenle, numuneler çok yüksek enerji seviyesine tabi tutulmaktadır. LSFM olarak, odak düzlemi sadece flüoroforlar bağlı iki dikey yerleştirilmiş objektif lens (Şekil 1) kullanılarak aydınlatma ve saptama bir dekuplaj heyecan bulunmaktadır. Bir uçak ışıklandırma mikroskobu (SPIM) ve dijital taranmış lazer ışığı levha bazlı floresan mikroskobu (DSLM, Şekil 2) – – LSFM iki kanonik uygulamalarda gelir ve geleneksel yöntemlere göre birçok önemli avantajlar sunmaktadır: (i) iç optik kesit özelliği, (ii) iyi eksenel çözünürlüğü, (iii) foto-ağartma kuvvetli düşük bir seviyesi, (iv) çok düşük foto-toksisite, (v) yüksek sinyal-gürültü oranı, (vi), nispeten yüksek bir edinim hızı, (vii) görüntüleme birden fazla yönde ve (vi boyuncanedeniyle düşük sayısal açıklık aydınlatma objektifler 54, 55, 56 kullanımına ii) daha derin doku penetrasyonu.
LSFM zaten başarıyla neredeyse tüm embriyonik morfonogenezi 57 belgelemek ve dorsal kapatma 23 başında ekstra embriyonik membran rüptürü ilkelerini analiz etmek Tribolium içinde uygulanmıştır. Mikroskop bir kolaylığı olur nerede standart çalışma usulleri belirlemektir ve yöntemleri, protokolleri ve bir seviyeye kaynakların havuzu geliştirmek için büyük önem taşımaktadır, Tribolium toplumda ve genel olarak böcek bilimi için LSFM çekiciliğini artırmak için gelişimsel biyoloji laboratuvarlarında standart aracını -KULLANMA ve biyolojik sorular dikkat merkezinde kalmak.
Bu protokol Tribolium temelleri <ile başlar/ em> ekimi, yani bakım, üreme ve embriyo koleksiyonu. Daha sonra, iki deneysel stratejileri gösterilmiştir: (i) canlı ısmarlama transgenik hatların görüntüleme ve floresan boyalar (Tablo 2) ile boyanmıştır sabit embriyolar (ii) görüntüleme. (I) agaroz sütunu, (ii) agaroz hemisfer ve (iii) yeni örümcek ağı tutucu: Daha sonra, biraz daha farklı amaçlarla üç montaj teknikleri detaylı (Şekil 3 ve Tablo 3) açıklanmıştır. protokol daha sonra LSFM ile veri toplama işlemini açıklar. Görüntüleme Yöntemleri ve temel düşünceler özetlenmiştir. Son olarak, embriyo alma açıklanır ve temel veri işleme için öneriler ortaya konmuştur. Temsili sonuçlarda, canlı görüntü verileri iki yeni ısmarlama ve Glia mavisi 58 transjenik çizgi gösterilir ve karşılık gelen görüntü veri kümeleri indirilebilir bir kaynak olarak temin edilmiştir. Ayrıca, görüntüFloresan boyalar, çeşitli ile boyandı sabit embriyoların veriler sunulmaktadır. tartışma kalite kontrol, canlı görüntüleme yaklaşımının geçerli sınırlamalar ve diğer türlere protokolünün adaptasyonu odaklanır.
Protokol, bir numune haznesi ve tipik olarak bir çapa sahip bir metal, plastik ya da camdan yapılmış silindir şekilli elemanlar olan standart numune tutucuları 54, 59, 60, bir döner kelepçe mekanizması ile donatılmıştır ışık levha bazlı floresan mikroskobu için yazılmıştır milimetre aralığındadır. Protokol, her iki kanonik uygulamalarda örneğin, SPIM ve DSLM, aynı zamanda iki ya da daha fazla aydınlatma ve tespit kolları 61, 62, 63 ile kurulumları için uygundur. temsili sonuçlar, iki tayf kanalları verileri gösterir, yeşil (IL488 nm lazer, saptama bir geçiş filtresi bandpass 607/70 bir geçiş filtresi) ve kırmızı (bir 561 nm lazer ile aydınlatma, algılama bandpass 525/50), ancak protokol ile bir aydınlatma üç ya da dört spektral kanallara genişletilebilir.
Kalite kontrol
Canlı görüntüleme deneylerinde, hazırlanması ve kayıt prosedürü mekanik ve kimyasal işleme (numune tutucu üzerine monte toplanması, dechorionation,), ne de gözlem sırasında entegre enerji yükü de, yani örneğin yaşamını etkilemelidir, invazif olmayan olmalıdır. WT gelişimini karakterize çalışmalar için, embriyo başarıyla alınır, kayıt işleminden zarar ve sağlıklı erişkin hale hangi deneylerden tek kullanım verile…
The authors have nothing to disclose.
Biz teknik destek için Sven Plath teşekkür ederim. Glia-mavi transgenik çizgi Gregor Bucher (Göttingen, Almanya) bir tür hediye oldu. Araştırma Goethe Buchmann Moleküler Yaşam Bilimleri Enstitüsü (BMLS, yönetmen Enrico Schleiff) de EHKS kısmen verilen makromoleküler Tesisler (CEF-MC, EXC 115, hoparlör Volker Dötsch) için Frankfurt am Mükemmellik Frankfurt Küme tarafından finanse edildi Universität Frankfurt Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) tarafından am Main.
full grain wheat flour | Demeter e.V. | 1.13E+08 | US: whole wheat flour, UK: whole meal flour |
405 fine wheat flour | Demeter e.V. | 1.13E+08 | US: pastry flour, UK: soft flour |
inactive dry yeast | Flystuff / Genesee Scientific | 62-106 | |
phosphate-buffered saline (PBS), pH 7.4 | Thermo Fisher Scientific | 10010-023 | |
sodium hypochlorite, ~12% active Cl | Sigma Aldrich | 425044-250ML | Caution: sodium hypochlorite is corrosive |
low-melt agarose | Carl Roth | 6351.2 | |
6-well plate | Orange Scientific | 4430500 | |
24-well plate | Orange Scientific | 4430300 | |
glass capillaries, internal Ø 0.46 mm | Brand GmbH + Co KG | 7087 09 | |
SYTOX Green | Thermo Fisher Scientific | 57020 | Staining solution preparation is explained in Table 2 |
YOYO-1 Iodide | Thermo Fisher Scientific | Y3601 | Staining solution preparation is explained in Table 2 |
BOBO-3 Iodide | Thermo Fisher Scientific | B3586 | Staining solution preparation is explained in Table 2 |
Alexa Fluor 488 Phalloidin | Thermo Fisher Scientific | A12379 | Staining solution preparation is explained in Table 2 |
Alexa Fluor 546 Phalloidin | Thermo Fisher Scientific | A22283 | Staining solution preparation is explained in Table 2 |
sieve, 800 µm mesh size | VWR International | 200.025.222-051 | |
sieve, 710 µm mesh size | VWR International | 200.025.222-050 | for growth medium preparation (step 1.1) |
sieve, 300 µm mesh size | VWR International | 200.025.222-040 | |
sieve, 250 µm mesh size | VWR International | 200.025.222-038 | for egg laying medium preparation (step 1.2) |
glass dish, Ø 100 mm × 20 mm | Sigma Aldrich | CLS70165102 | |
cell strainer, 100 µm mesh size | BD Biosciences | 352360 | |
paint brush, head Ø 2 mm | VWR International | 149-2121 | |
syringe, 1.0 ml | B. Braun Medical AG | 9166017V | |
scintillation vials | Sigma Aldrich | M1152-1000EA | |
paraformaldehyde | Sigma Aldrich | 158127 | Caution: paraformaldehyde is toxic and corrosive |
n-heptane ≥ 99% | Carl Roth | 8654.1 | Caution: n-heptane is flammable and toxic |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | X100-100ML | Caution: Trition X-100 is corrosive |