Summary

Diferenciación in vitro de células madre pluripotentes humana en células trofoblásticas

Published: March 16, 2017
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Summary

Here, we present a protocol to efficiently generate human trophoblastic cells from human pluripotent stem cells using bone morphogenic protein 4 and inhibitors of the Activin/Nodal pathways. This method is suitable for the efficient differentiation of human pluripotent stem cells and can generate large quantities of cells for genetic manipulation.

Abstract

La placenta es el primer órgano de desarrollar durante la embriogénesis y es necesario para la supervivencia del embrión en desarrollo. La placenta está compuesto de varias células trofoblásticas que la diferencian de las células trophectoderm extra-embrionarias de blastocisto preimplantación. Como tal, nuestra comprensión de los eventos tempranos de diferenciación de la placenta humana es limitada debido a las restricciones éticas y legales sobre el aislamiento y la manipulación de la embriogénesis humana. Células madre pluripotentes humanos (hPSCs) son un sistema de modelo sólido para investigar el desarrollo humano y también pueden diferenciarse in vitro en células trofoblásticas que expresan marcadores de los diversos tipos de células trofoblásticas. A continuación, presentamos un protocolo detallado para la diferenciación en células trofoblásticas hPSCs utilizando la proteína morfogenética ósea 4 y los inhibidores de las vías de señalización de Activina / nodal. Este protocolo genera diversos tipos de células trofoblásticas que pueden ser transfectadas con siRNAspara la investigación de fenotipos de pérdida de función o pueden ser infectados con patógenos. Además, hPSCs pueden ser modificados genéticamente y luego diferenciarse en progenitores trofoblásticas para los análisis de ganancia de función. Este método de diferenciación in vitro para la generación de trofoblastos humanos a partir de hPSCs supera las restricciones éticas y legales de trabajar con embriones humanos tempranos, y este sistema se puede utilizar para una variedad de aplicaciones, incluyendo el descubrimiento de fármacos y investigación de células madre.

Introduction

Se requiere la placenta para el crecimiento y la supervivencia del feto durante el embarazo y facilita el intercambio de gases, nutrientes, productos de desecho y hormonas entre la circulación materna y fetal. El primer órgano formado durante la embriogénesis de mamíferos es la placenta, que comienza el desarrollo de 6-7 días después de la concepción en los seres humanos y 3.5-4.5 días en ratones 1, 2, 3, 4. Las células trofoblásticas son las células más importantes de la placenta, y estas células representan uno de los acontecimientos más tempranos de diferenciación del linaje del embrión de mamífero. Surgen de las células trophectoderm extra-embrionarias exteriores del blastocisto preimplantación. Nuestro conocimiento de las primeras etapas del desarrollo de la placenta está limitado por las restricciones éticas y logísticas en el modelado de desarrollo humano temprano.

Durante la implantación de embriones, los trofoblastosinvadir el epitelio materna y diferenciarse en células progenitoras especializados 5. Citrofoblastos (CTBS) son mononucleadas, progenitores no diferenciadas que se fusionan y se diferencian en sinciciotrofoblastos (SYN) y trofoblastos invasivos extravillous (EVT), que ancla la placenta al útero. SYN son multinucleadas, células diferenciadas terminales que sintetizan hormonas necesarias para sostener el embarazo. Los eventos que generan diferenciación temprana EVT y SYN son esenciales para la formación de la placenta, como alteraciones en las células trofoblásticas dan lugar a aborto involuntario, la preeclampsia, restricción del crecimiento intrauterino y 1. Los tipos de líneas de células trofoblásticas humanas que se han desarrollado incluyen CTBS y coriocarcinomas, que producen hormonas placentarias y propiedades invasivas de visualización 6 inmortalizados. células trofoblásticas primaria a partir de placentas de primer trimestre humanos se pueden aislar, pero las células rápidamente differentiate y detener la proliferación in vitro. Es importante destacar que, transformado y líneas celulares primarias tienen diferentes perfiles de expresión génica, lo que indica que las líneas celulares inmortalizadas trofoblásticas oncogénicas y pueden no representar con precisión los trofoblastos primaria 7. Además, estas líneas es poco probable que se asemejan a trofoblasto placentario progenitores de células madre, ya que se derivan de una etapa más avanzada primero a través de tercer trimestre.

Hay una necesidad de un sólido en el sistema de cultivo in vitro de trofoblastos humanos en fase inicial con el fin de estudiar los primeros eventos de la formación y la función de la placenta. Las células madre embrionarias humanas (hESCs), que comparten propiedades con la masa celular interna del embrión preimplantatorio, con frecuencia se utilizan para modelar el desarrollo humano temprano, incluyendo la formación de la placenta temprana. Tanto las células madre pluripotentes inducidas humanas (hESCs hiPSCs) y pueden diferenciarse en los trofoblastos in vitro usando hueso MorProtein phogenic 4 (BMP4) 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15. Esta conversión de las células pluripotentes a las células trofoblásticas usando BMP4 es específico para las células humanas y se utiliza ampliamente para estudiar el desarrollo de la placenta humana temprana, ya que no requiere acceso a los embriones humanos tempranos 9, 16. Recientemente, se descubrió que la adición de los inhibidores de A83-01 (A) y PD173074 (P), que bloquean las vías de señalización SMAD2 / 3 y MEK1 / 2, aumenta la eficiencia de diferenciación HPSC en progenitores trophectoderm-como, principalmente SYN y EVT, sin la extensa generación de mesodermo, endodermo, o células del ectodermo 9, 17 </sup>. El uso de estas condiciones del medio, CMEh diferenciado durante 12 días tienen perfiles de expresión de genes similares a los de las células trophectoderm aisladas de embriones en fase de blastocisto humanos y secretan varias hormonas de crecimiento placentario-específica, apoyando la validez de este sistema de modelo in vitro 9, 11. A continuación, presentamos un protocolo detallado para la diferenciación in vitro de células progenitoras en hPSCs trofoblásticas humanas usando BMP4 Un medio de cultivo / / P. Estas condiciones producen abundantes cantidades de células para una amplia variedad de aplicaciones, incluyendo la secuenciación de ARN, la alteración génica utilizando siRNAs, infecciones por patógenos, y la modificación genética usando transfección lipofección mediada.

Protocol

NOTA: Para la diferenciación de cualquiera de hESCs o hiPSCs en progenitores trofoblásticas, hPSCs cultivados en fibroblastos de embriones de ratón (MEFs) son la transición al alimentador libres condiciones para dos pasajes antes de iniciar la diferenciación con BMP4 / A / P. Este proceso elimina la contaminación MEF de células diferenciadas. A continuación, se presenta un protocolo para la diferenciación de células madre, y el mismo protocolo se puede aplicar a hiPSCs. 1. Cultura y recuperación de hESC…

Representative Results

Visión general de diferenciación in vitro de hPSCs Este protocolo de diferenciación in vitro comienza con hESCs indiferenciadas cultivadas en MEFs que están transición a alimentador libres condiciones para un paso (Figura 1A). Aunque hemos descrito la diferenciación de hESCs en este protocolo, se utilizó este protocolo para diferenciar con éxito hiPSCs en células trofoblásticas. La tra…

Discussion

Nosotros presentamos los pasos básicos para diferenciar hESCs en progenitores trofoblasto. Este protocolo ha sido recientemente optimizado para diferenciar rápidamente hESCs con la adición de inhibidores de la activina / señalización nodal, el aumento de la diferenciación a células trofoblásticas y evitando la generación de los progenitores mesodermo, que normalmente se observan con el tratamiento BMP4 solo. El sistema modelo BMP4 permite el examen de las primeras etapas de especificación trofoblasto linaje hu…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by a Pennsylvania Health Research Formula Fund.

Materials

DMEM/F12 Invitrogen 11330-057
Knock Out Serum Replacement Invitrogen 10828-028 This is referred to as "serum replacement" in this protocol.
NEAA Invitrogen 11140-050
FBS Invitrogen 16000-044
L-Glutamine Invitrogen 10828-028
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-155
2-Mercaptoethanol Sigma M-7522
B-FGF Millipore GF-003
DMEM Invitrogen 11965-118
Dispase Invitrogen 17105-041
Collagenase Type IV Invitrogen 17104-019
Rock inhibitor Y27632 Calbiochem 688000
Irradiated CF1 MEFs GlobalStem 6001G MEFs can be generated from embryonic day 13.5 embyos and irradiated.
0.22 um syringe filter Millipore SLGS033SS
Heracell 150i low oxygen incubator Heracell/VWR 89187-192 Any tissue culture incubator with capacity to regulate oxygen concentrations is sufficient.
BMP4 R&D Systems 314-BP-01M
A 83-01 R&D Systems 2939/10
PD173074 R&D Systems 3044/10
RNAiMax Invitrogen 13778150
Trizol ThermoFisher 15596026 Trizol is used to isolate total RNA.
X-tremeGENE 9 Roche 6365779001
Matrigel Corning 356231 This is referred to as "extracellular matrix" in this protocol.

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Wang, J., Anguera, M. C. In Vitro Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Trophoblastic Cells. J. Vis. Exp. (121), e55268, doi:10.3791/55268 (2017).

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