Hier präsentieren wir menschlicher pluripotenter Stammzellen (hPSC) Kultur Protokolle verwendet, um hPSCs in CD34 unterscheiden+ hämatopoetischen Vorläuferzellen. Diese Methode nutzt Bühne-spezifische Manipulation von kanonischer WNT signalisieren Zellen ausschließlich entweder die definitive oder primitive hämatopoetischen Programm angeben.
Eines der wichtigsten Ziele für die regenerative Medizin ist die Erzeugung und die Wartung von hämatopoetischen Stammzellen (HSCs) aus menschlicher pluripotenter Stammzellen (hPSCs). Bis vor kurzem haben Anstrengungen zur hPSCs in HSCs differenzieren überwiegend hämatopoetische Vorläuferzellen generiert, die fehlen, HSC-Potenzial, und stattdessen ähneln Dottersack Hämatopoese. Diese resultierenden hämatopoetischen Vorläuferzellen können Dienstprogramm für in-vitro- Krankheit Modellierung von verschiedenen Erwachsenen hämatopoetischer Erkrankungen, insbesondere der lymphatischen Linien beschränkt haben. Allerdings haben wir vor kurzem beschrieben Methoden zum Generieren von Erythro-Myelo-lymphatischen multilineage endgültige hämatopoetischer Vorläuferzellen aus hPSCs mit einem Stadium-spezifische gerichtete Differenzierung-Protokoll, die wir hier erläutern. Durch enzymatische Dissoziation des hPSCs auf Basalmembran Matrix-beschichtete Plasticware Embryoid Körper (EBs) gebildet. EBs unterscheiden sich um Mesoderm durch rekombinante BMP4, die anschließend von der GSK3β-Inhibitor, CHIR99021 zum endgültigen hämatopoetischen Programm angegeben ist. Alternativ wird primitive Blutbildung durch den PORCN-Inhibitor, IWP2 angegeben. Hämatopoese wird weiter durch die Zugabe von rekombinanten VEGF und unterstützende hämatopoetischen Zytokinen angetrieben. Die daraus resultierende hämatopoetischen Vorfahre generiert, mit dieser Methode haben das Potenzial für Krankheiten und Entwicklungsstörungen Modellierung, in Vitroverwendet werden.
Menschlicher pluripotenter Stammzellen (hPSCs) sind definiert als mit humanen embryonalen Stammzellen (HES) und menschlichen induzierten pluripotenten Stammzellen (HiPSCs) und haben die einzigartige Fähigkeit, nicht nur in der Selbsterneuerung unter geeigneten Wachstumsbedingungen, aber auch die Fähigkeit, sich in alle Zelltypen differenzieren abgeleitet aus den drei Mikrobeschichten: Entoderm, Mesoderm und Ektoderm1. Aufgrund dieser einzigartigen Fähigkeiten halten hPSCs große Verheißung für die regenerative Medizin, Krankheit Modellierung und zellbasierte Therapien2. Während mehrere Zelltypen erfolgreich von hPSCs unterschieden wurde, ist eine große Herausforderung der in-vitro- Spezifikation ausschließlich Erwachsenen-wie hPSC hämatopoetischen Stammzellen (HSCs) und definitive hämatopoetischen Vorläuferzellen.
Eine wahrscheinlich Hindernis für die Entwicklung der menschlichen HSCs aus hPSCs ist das Vorhandensein von mehreren hämatopoetischen Programmen innerhalb der menschlichen Embryos3. Das erste Programm, das entsteht, “primitive Hämatopoese,” bezeichnet, entsteht im Gewebe extraembryonic Dottersack und zeichnet sich durch seine vorübergehende Produktion von Erythroblast Vorfahren (EryP-CFC), Makrophagen und Megakaryozyten am besten. Vor allem, dieses Programm gibt keinen Anlass, HSCs, noch gibt es Anlass zu T- und B lymphoiden Vorläuferzellen. Allerdings der Dottersack vorübergehend eingeschränkt definitive hämatopoetischen Vorfahren, wie z. B. der Erythro-myeloischen Vorläuferzellen (EMP4,5,6,7,8) hervorrufen und die erythroiden-defizienten lymphatischen grundiert multipotenten Vorläuferzellen (LMPP9). Jedoch sind weder EMPs noch LMPPs, voll multipotenten oder HSC-ähnliche Engraftment in Erwachsenen Empfänger in der Lage. Im Gegensatz dazu wird später in der Entwicklung, das klassisch definierte “definitive” hämatopoetische Programm im Großraum Aorta-Gonade-Wachstum des Embryos richtige, was zu allen Erwachsenen hämatopoetischen Linien, einschließlich der HSC angegeben. Die Spezifikation dieser intra embryonalen definitive hämatopoetischen Zellen tritt in einer Kerbe-abhängigen Weise über eine endotheliale-hämatopoetischen Übergang von Hemogenic Endothel (er)3,10,11 ,12,13,14. Abgesehen von Rekonstitution Kapazität Multilineage potenzielle und Notch-Abhängigkeit von diesen Zellen lässt sich diese endgültige hämatopoetischen Vorläuferzellen aus der EMP und die LMPP (rezensiert in Referenzen3,13 unterscheiden ).
Verständnis der Mechanismen für primitiv und definitive hämatopoetischen Spezifikation von hPSCs dürfte für die reproduzierbare Produktion von definitive hämatopoetischen Vorläuferzellen über eine Vielzahl von hPSC Linien von entscheidender Bedeutung. Bis vor kurzem existierten hPSC Differenzierung Protokolle, die multipotente primitive und definitive hämatopoetische Vorläuferzellen trennen konnte nicht15,16,17,18, 19,20,21,22,23,24,25. Viele Ansätze mit fetalen bovine Serum (FBS) und/oder Stromazellen Kokultur zuerst umrissen der hämatopoetische Potenzial der hPSC Differenzierung, mit einer Mischung aus primitiven und endgültige hämatopoetischen potenzielle15,16, 17,19,22,23,25. Weitere, viele serumfreien hämatopoetischen Protokolle haben die Signal-Anforderungen für die Spezifikation von Mesoderm aus hPSCs, die blutbildenden potenzielle18,20,21, birgt beschrieben 24. wie diese Methoden noch heterogene Mischungen beider Programme hervorbrachte, deren Einsatz in klinische Anwendungen und Entwicklungsmechanismen Verständnis kann jedoch begrenzt.
Wir haben vor kurzem auf diesen Studien aufgebaut haben skizziert die Bühne-spezifische Signal Anforderungen an ACTIVIN/NODAL und WNT signalisieren in primitive und endgültige hämatopoetischen Spezifikation vom hPSC abgeleitet Mesoderm18,26 . Letzteres war besonders einzigartig, da die Nutzung der Bühne-spezifische WNT Signalmanipulation für die Spezifikation von ausschließlich primitiv oder ausschließlich endgültige hämatopoetischen Vorläuferzellen26ermöglicht. Während Mesoderm-Spezifikation, die Hemmung der kanonischen WNT signalisieren mit dem PORCN-Inhibitor IWP2 führt bei der Spezifikation von CD43+ EryP-CFC und myeloischer Vorläuferzellen mit kein nachweisbar lymphoide Potenzial. In scharfem Kontrast, Stimulation der kanonischen WNT-Signal mit dem GSK3β-Inhibitor, CHIR99021, in der gleichen Phase der Differenzierung führte in die völlige Abwesenheit von nachweisbaren CD43+ EryP-CFC, während gleichzeitig führt zu den Spezifikation der CD34+CD43− HE. Diese Bevölkerung besaß myeloische, HBG-erythroiden und T-lymphatischen Potenzial zum Ausdruck bringt. Spätere Analysen identifiziert, das er als Ausdruck CD7327,28 und CD18428und sein hämatopoetischen Potential fehlt Kerbe-abhängige28war. Weitere, einzellige klonale Analysen gezeigt, dass diese endgültige hämatopoetischen Linien von multipotenten Einzelzellen28abgeleitet werden können. Zusammen genommen, zeigen diese Studien, dass die Bühne-spezifische WNT signalisieren Manipulation pur primitive hämatopoetischen Vorläuferzellen oder multipotenten Kerbe-abhängige definitive hämatopoetischen Vorläuferzellen angeben kann.
Hier beschreiben wir unsere Differenzierungsstrategie, die ausschließlich primitive oder endgültige hämatopoetischen Stammväter, durch Manipulation der kanonischen WNT signalisieren während mesodermalen Musterung und ihre nachgelagerten hämatopoetischen Linie Assays ergibt. Dieses Protokoll ist von großem Wert für die Ermittler, die die Produktion von entweder primitiv oder endgültige hämatopoetischen Vorläuferzellen aus hPSCs für regenerative Medizin Anwendungen interessiert sind.
Dieses Protokoll beschreibt eine rasche, Serum-frei, Stroma Methode für die Differenzierung von primitiven oder definitive hämatopoetischen Vorläuferzellen. Mesodermalen Spezifikation der primitiven oder definitive hämatopoetischen Vorläuferzellen kann zuverlässig mit unserem Protokoll, welches eindeutig niedermolekularer Hemmer der kanonischen WNT signalisieren nutzt erreicht werden. Bühne-spezifische WNT Aktivierung durch den GSK3β-Inhibitor CHIR9902133 gibt Anlass zu endgültigen hämat…
The authors have nothing to disclose.
Diese Arbeit wurde von der Abteilung für Innere Medizin, Abteilung Hämatologie, Washington University School of Medicine unterstützt. CD wurde von T32HL007088 von der National Heart, Lung and Blood Institute unterstützt. CMS wurde von einer amerikanischen Gesellschaft von Hämatologie Scholar Award unterstützt.
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMD) | Corning | 10-016 | |
Fetal Bovine Serum (FBS), ES cell rated | Gemini Bioproducts | 100-500 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Hyclone | SH30396.03 | |
L-glutamine, 200 mM solution | Life Technologies | 25030-081 | |
Penicillin-streptomycin | Life Technologies | 15070-063 | |
0.25% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25200056 | |
0.05% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25300054 | |
Gelatin, porcine skin, Type A | Sigma-Aldrich | G1890 | |
Alpha-MEM | Life Technologies | 12000-022 | |
DMEM-F12 | Corning | 10-092-CV | |
Knock-out serum replacement | Life Technologies | 10828028 | "KOSR" |
Non-essential amino acids (NEAA) | Life Technologies | 11140050 | |
b-mercaptoethanol, 55 mM solution | Life Technologies | 21985023 | |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | H1758 | |
Fraction V, Bovine Serum Albumin | Fisher Scientific | BP1605 | |
Ham's F12 | Corning | 10-080 | |
N2 supplement | Life Technologies | 17502048 | |
B27 supplement, no vitamin A | Life Technologies | 12587010 | |
Stempro-34 (SP34) | Life Technologies | 10639011 | "SP34" |
Growth factor reduced Matrigel | Corning | 354230 | "MAT" |
L-absorbic acid | Sigma-Aldrich | A4403 | |
Human serum transferrin | Sigma-Aldrich | 10652202001 | |
Monothioglycerol (MTG) | Sigma-Aldrich | M6145 | |
Collagenase B | Roche | 11088831001 | |
Collagenase II | Life Technologies | 17101015 | |
DNaseI | Calbiochem | 260913 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Life Technologies | 14190144 | |
bFGF | R&D Systems | 233-FB | |
BMP4 | R&D Systems | 314-BP | |
Activin A | R&D Systems | 338-AC | |
VEGF | R&D Systems | 293-VE | |
SCF | R&D Systems | 255-SC | |
IGF-1 | R&D Systems | 291-G1 | |
IL-3 | R&D Systems | 203-IL | |
IL-6 | R&D Systems | 206-IL | |
IL-7 | R&D Systems | 207-IL | |
IL-11 | R&D Systems | 218-1L | |
TPO | R&D Systems | 288-TP | |
EPO | Peprotech | 100-64 | |
Flt-3 ligand (FLT3-L) | R&D Systems | 308-FK | |
CHIR99021 | Tocris | 4423 | |
IWP2 | Tocris | 3533 | |
Angiotensin II | Sigma-Aldrich | A9525 | |
Losartan Potassium | Tocris | 3798 | |
CD4 PerCP Cy5.5 Clone RPA-T4 | BD Biosciences | 560650 | Dilution 1:100; T cell assay |
CD8 PE Clone RPA-T8 | BD Biosciences | 561950 | Dilution 1:10; T cell assay |
CD34 APC Clone 8G12 | BD Biosciences | 340441 | Dilution 1:100; EHT assay |
CD34 PE-Cy7 Clone 8G12 | BD Biosciences | 348801 | Dilution 1:100; Hemogenic endothelium |
CD43 FITC Clone 1G10 | BD Biosciences | 555475 | Dilution 1:10; Hemogenic endothelium |
CD45 APC-Cy7 Clone 2D1 | BD Biosciences | 557833 | Dilution 1:50; T cell assay |
CD45 eFluor450 Clone 2D1 | BD Biosciences | 642284 | Dilution 1:50; EHT assay |
CD56 APC Clone B159 | BD Biosciences | 555518 | Dilution 1:20; T cell assay |
CD73 PE Clone AD2 | BD Biosciences | 550257 | Dilution 1:50; Hemogenic endothelium |
CD184 APC Clone 12G5 | BD Biosciences | 555976 | Dilution 1:50; Hemogenic endothelium |
4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | BD Biosciences | 564907 | Dilution 1:10,000; T cell assay |
OP9 DL4 cells | Holmes, R. and J.C. Zuniga-Pflucker. Cold Spring Harb Protoc, 2009. 2009(2): p. pdb prot5156 | ||
MethoCult H4034 | Stemcell Technologies | 4034 | "MeC" |
Milli-Q water purification system | EMD Millipore | ||
5% CO2 incubator | Set at 37 C | ||
Multigas incubator | Set at 37 C, 5% CO2, 5% O2 | ||
6 well tissue culture plate | Corning | 353046 | |
24 well tissue culture plate | Corning | 353226 | |
6 well low-adherence tissue culture plate | Corning | 3471 | |
24 well low-adherence tissue culture plate | Corning | 3473 | |
35 mm tissue culture dishes | Corning | 353001 | |
Blunt-end needle, 16 gauge | Corning | 305198 | |
3 cc syringes | Corning | 309657 | |
5 mL polypropylene test tube | Corning | 352063 | |
5 mL polystyrene test tube | Corning | 352058 | |
15 mL polypropylene conical | Corning | 430791 | |
50 mL polypropylene conical | Corning | 430921 | |
2 mL serological pipette | Corning | 357507 | |
5 mL serological pipette | Corning | 4487 | |
10 mL serological pipette | Corning | 4488 | |
25 mL serological pipette | Corning | 4489 | |
Cell scrapers | Corning | 353085 | |
2.0 mL cryovials | Corning | 430488 | |
5 mL test tube with 40 µM cell strainer | Corning | 352235 | |
40 µM cell strainer | Corning | 352340 | |
Cell culture centrifuge | |||
Biosafety hood | |||
FACS AriaII or equivalent | |||
LSRii or equivalent | |||
FlowJo software | TreeStar | ||
Water bath | Set at 37 C | ||
0.22 µM filtration system | Corning | ||
Autoclave | |||
4 C refrigerator | |||
-20 C Freezer | |||
-80 C Freezer |