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Biologie

Aislamiento y caracterización de microvesículas de la sangre periférica

Published: January 06, 2017
doi:
10.3791/55057
, , , ,
1Department of Hematology/Medical Oncology,University Medical Center Göttingen

Summary

Extracellular vesicles present in blood have been suggested as novel biomarkers for various diseases. Here, we present a protocol for the isolation of large plasma membrane-derived microvesicles from peripheral blood samples and their subsequent analysis by conventional flow cytometry and Western Blotting.

Abstract

La liberación de vesículas extracelulares (EVs), incluidas las pequeñas exosomas derivados de endosomal (Exos, diámetro <100 nm) y microvesículas de membrana derivada de plasma grande (VM, diámetro> 100 nm) es un proceso celular fundamental que se produce en todas las células vivas. Estas proteínas de transporte de vesículas, lípidos y ácidos nucleicos específicos para su célula de origen y en estudios in vitro han puesto de relieve su importancia como mediadores de la comunicación intercelular. Vehículos eléctricos se han aislado con éxito de diversos fluidos corporales y, especialmente, los vehículos eléctricos en la sangre han sido identificados como prometedores biomarcadores para el cáncer o enfermedades infecciosas. Con el fin de permitir el estudio de las subpoblaciones de MT en la sangre, se presenta un protocolo para el aislamiento normalizado y caracterización de MVs a partir de muestras de sangre periférica. MVs se sedimentan a partir de muestras de plasma EDTA anticoagulada por centrifugación diferencial y típicamente poseen un diámetro de 100 – 600 nm. Debido a su mayor tamaño, que puedenfácilmente ser estudiadas por citometría de flujo, una técnica que se utiliza de manera rutinaria en el diagnóstico clínico y disponible en la mayoría de los laboratorios. se darán varios ejemplos para los ensayos de control de calidad de las MVs aisladas y se presentarán los marcadores que se pueden utilizar para la discriminación de las diferentes subpoblaciones de MT en la sangre.

Introduction

En los últimos años, muchos estudios in vitro han demostrado que las vesículas extracelulares (EVs) juegan un papel importante en la comunicación intercelular. Las células vivas excretan constantemente vesículas que difieren en tamaño, contenido y la biogénesis. Los vehículos eléctricos mejor estudiados son los exosomas que se originan en el sistema endosomal en el que se almacenan como vesículas intraluminales en los cuerpos multivesiculares. Una vez que éste se fusionan con la membrana plasmática, las vesículas se liberan contenidos como exosomas (Exos, diámetro de 30 – 100 nm 1). Una segunda población de EV que ha ganado una creciente atención en los últimos años son grandes microvesículas (MVs, diámetro 100 – 1000 nm), que brotan fuera directamente de la membrana plasmática 2.

Ambos tipos de vesículas están rodeados por una bicapa lipídica y contienen ácidos nucleicos, por ejemplo, ADN, ARNm o miARN 3-5, y una gran cantidad de proteínas que pueden transferir a la vecina cells. Si bien en general la composición de proteína de las vesículas refleja el estado de la célula de origen, algunas proteínas parecen ser dirigidos y enriquecido en vehículos eléctricos 1 de forma selectiva. Una gran interés la investigación es la caracterización de los vehículos eléctricos a partir de células anormales y enfermas con el fin de definir las firmas EV específicos que podrían permitir el uso de los vehículos eléctricos como nuevos biomarcadores. Especialmente en el cáncer, en el que a menudo el tumor en sí mismo no es fácilmente accesible, biopsias líquidas dirigidas a los vehículos eléctricos específicos de tumores en la sangre pueden permitir el seguimiento de las respuestas de terapia o ayudar a caracterizar el tumor primario sin la necesidad de procedimientos invasivos 6.

De hecho, los vehículos eléctricos ya se han aislado con éxito de varios fluidos corporales, incluyendo la orina 7, 8 CSF, la leche materna o la sangre 9 10. Varios estudios identifican los cambios en los recuentos de EV y la composición de diferentes enfermedades humanas. Por ejemplo, en pacientes con sepsis el número de MVs pro-coagulante seaumentado de manera significativa en comparación con los individuos sanos 11. También en pacientes con malaria cerebral grave un aumento en el total de las VM en la sangre puede ser observado y cargos de las VM derivados de las plaquetas se correlaciona con la profundidad coma y trombocitopenia 12. Otros estudios informan de números elevados de vesículas derivados del endotelio en pacientes con lupus eritematoso sistémico o la insuficiencia cardíaca y en el caso de este último, esto se correlaciona con una mayor probabilidad de eventos cardiovasculares 13,14.

Especialmente en el cáncer, los vehículos eléctricos en la sangre se discuten actualmente como nuevos biomarcadores con valor diagnóstico y pronóstico. Los niveles de MVs que expresan proteínas asociadas a tumores, tales como MUC1, EGFR o FAK parecen ser elevados en la sangre de pacientes con cáncer de mama 15,16. También para Exos, estudios recientes han demostrado que los Exos derivados de la sangre que llevan antígenos específicos de tumores tales como Glipicano-1 de cáncer de páncreas o Del-1 de cáncer de mama permite temprana de la enfermedad deprotección con una alta especificidad y sensibilidad 17,18. Además, tumor derivado del suero Exos puede contener ADN que se puede utilizar para la detección de mutaciones, tales como KRAS y p53 que sugiere su uso para la predicción de la terapia 19. Los avances recientes han demostrado que el análisis de Exos en la sangre de los pacientes de glioblastoma utilizando un chip de microfluidos específico permite la monitorización de la terapia 20. Tomados en conjunto, estos resultados implican que el análisis de subpoblaciones específicas de la enfermedad de vesículas da valiosa información sobre el diagnóstico, el pronóstico, así como opciones terapéuticas y el éxito.

Sin embargo, el aislamiento y el análisis de Exos de la sangre es que consume tiempo, requiere un equipo especial de laboratorio y por lo tanto todavía no es adecuado para el diagnóstico clínico de rutina. Por el contrario, MVs pueden aislarse mucho más rápido y, debido a su mayor tamaño, se puede analizar fácilmente mediante citometría de flujo sin la necesidad de ellos par a perlas de látex, ya que es necesario para Exos 18, 21. Por lo tanto, aquí se presenta un protocolo que se puede utilizar para el aislamiento normalizado de MVs de muestras de sangre y la posterior caracterización de subpoblaciones de MT por citometría de flujo. Este protocolo permitirá que el estudio y la caracterización de los perfiles de profundidad de media tensión en grandes grupos de pacientes que serán necesarios con el fin de utilizar las variedades modernas para el diagnóstico clínico de todos los días.

Protocol

Todos los experimentos que incluyen sujetos humanos han sido aprobados por el comité de ética local (aprobación no. 02.03.14). Para la elección de los pacientes hay que señalar que varios factores tales como la edad, el sexo, los regímenes de tratamiento actuales y muchos más pueden influir en la composición de MT en la sangre y por lo tanto deben ser tomados en consideración antes de la recogida de muestras 22,23. 1. Preparación de muestras de plasma Dibuje 1 – 2 tubos de sangre por donante a través de una aguja de mariposa de calibre 21 en un tubo de recogida de sangre Vacutainer que contiene EDTA (1,6 mg / ml de sangre). Asegúrese de invertir los tubos (s) varias veces para garantizar la anticoagulación de la sangre eficiente. Nota: El volumen recomendado de sangre para su posterior citometría de flujo y análisis de Western Blot es de 5 – 15 ml. Con el fin de evitar la degradación y pérdida MV, muestras de sangre deben ser manejados <30 min después de la retirada de la sangre. Preparar muestras de plasma por centrifugación de las muestras durante 15 minutos a 1200 xgatemperatura ambiente (RT). Aplicar un filtro de la válvula con el fin de ayudar a la separación de plasma (= capa superior) a partir de células sanguíneas (= capa inferior) restante. Transferir el plasma en un tubo de 15 ml. Centrifugar durante 15 min a 1.500 xg, RT para sedimentar los restos celulares más grandes y eliminar las plaquetas restantes. Transferir el sobrenadante a un tubo de 15 ml y proceder directamente con muestras de aislamiento o almacenar MV para un máximo de 6 meses a -20 ° C. NOTA: El protocolo presentado también se puede utilizar para aislar MVs (y Exos) de sobrenadantes de cultivo celular. Con el fin de hacerlo, cultivar las células a 60 – 80% de confluencia durante 24 – 48 h en medio de cultivo suplementado con FCS vesículas empobrecido, y luego recoger el sobrenadante. Centrifugar durante 5 min a 750 xg, 4 ° C para agotar las células flotantes residuales, llenar el sobrenadante en un nuevo tubo y se centrifuga de nuevo 15 ml durante 5 minutos a 1500 xg, 4 ° C para sedimentar los residuos celulares más grande. Este sobrenadante se puede entonces utilizar para el aislamiento de MVscomo se describe en el Paso 2.1 a 2.16. 2. Aislamiento de las VM La transferencia de la muestra de plasma en un tubo de centrifugación adecuado. Si es necesario, llenar el tubo con PBS con el fin de diluir la muestra y evitar el colapso de los tubos de pared delgada durante el procedimiento de centrifugación. Se centrifuga durante 35 min a 14.000 xg, 4 ° C. Decantar el sobrenadante, mantienen los tubos se volvieron al revés y ponen sobre una toalla de papel. Espere 3-5 min hasta que todo el sobrenadante restante se ha empapado en la toalla y por lo tanto extraído de la muestra. Resuspender el precipitado en MV 1.000 l de PBS, transferir a un tubo de centrífuga y 1,5 ml durante 35 minutos a 14.000 xg, 4 ° C en una centrífuga de mesa. Aspirar el sobrenadante. Resuspender el precipitado en MV 50-500 l de PBS, dependiendo del tamaño de la pastilla. Alternativamente, lyse MVs directamente, por ejemplo, en tampón RIPA (NaCl 150 mM / 0,1% SDS / 0,5% de Na-desoxicolato / 1% de Triton X-100 / Tris 50 mM, pH 7,2)para su posterior análisis de Western Blot. MV almacenar a -20 ° C. Ellos permanecerán estables durante varios meses, pero evite la congelación-descongelación ciclos repetidos. Opcional: Determinar la concentración de proteínas MV con un ensayo de proteínas (por ejemplo, Bradford o el método de Lowry) a fin de evaluar los rendimientos de MT o la dosis MVs para experimentos posteriores. Si Exos adicionales han de ser aislado de las muestras de plasma, se decanta el sobrenadante del paso 2.3 en un tubo de ultracentrifugación y centrifugar durante 2 horas a 110.000 xg, 4 ° C. Decantar el sobrenadante como se describe en el paso 2.3, resuspender Exo pellet en 1000 l de PBS y transferir en pequeños (1,5 ml) tubos de ultracentrifugación. Ultracentrífuga durante 2 horas a 110.000 xg, 4 ° C, el sobrenadante aspirado y resuspender Exo pellet en 50 a 75 l de PBS o tampón RIPA. 3. Caracterización de las VM por Citometría de Flujo Transferencia de 15 l de PBS + 1% de vesículas empobrecido de suero de ternera fetal (FCS) en un tubo de citometría de flujo. NOTA: empobrecido en vesículas FCS se prepara por centrifugación inactivado por calor (30 min a 56 ° C) de FCS durante 18 horas a 110.000 xg y filtrando el sobrenadante a través de un filtro de 0,2 micras como se describió anteriormente 24. Se añaden 5 g (en el caso de los bajos rendimientos de 3 mg) también son de aplicación de las VM en PBS. Incubar las muestras durante 30 minutos a RT con el fin de bloquear los sitios de unión no específica en la superficie MV y con ello reducir la tinción de fondo. Añadir un anticuerpo marcado con fluorescencia contra el interés de la proteína. Valorar la cantidad de anticuerpo usado para la tinción antes de su uso con el fin de determinar la concentración óptima y garantizar una ración de bajo señal a ruido. Asegúrese de incluir también un tubo con VM sin teñir como control negativo y un tubo de las VM teñidas con el anticuerpo de control de isotipo coincidente con la misma concentración (por ejemplo, si se usa 1 mg de anticuerpo, también utilizar 1 g del un control de isotipotibody) para cuantificar la tinción de fondo. NOTA: También es posible llevar a cabo el flujo multicolor citometría mediante la adición de varios anticuerpos acoplados a diferentes fluorocromos. Incubar durante 20 min a TA en la oscuridad. Añadir 250 l de PBS y proceder con la medida de la muestra utilizando un citómetro de flujo. En caso de que las muestras no se pueden medir inmediatamente, añadir 150 l de PBS y 50 l 4% de paraformaldehído (PFA) para fijar las muestras y se almacena a 4 ° C. PRECAUCIÓN: PFA es tóxico. Usar guantes y equipo de protección personal adecuado. Reducir el umbral del citómetro de flujo al valor más bajo posible y la búsqueda de la población MV utilizando una dispersión frontal (FSC) frente a dispersión lateral trama (SSC) en escala logarítmica. Puerta de la población MV y evaluar la señal fluorescente en un histograma correspondiente. 4. Caracterización de MV por Western Blot Resuspender el precipitado en MV directamenteun tampón de lisis adecuado (por ejemplo, tampón RIPA). En caso de que el pellet MV ya se ha resuspendido en PBS, se diluye por lo menos 1: 1 en un tampón de lisis adecuado (por ejemplo, tampón RIPA). Determinar la concentración de proteína de la muestra MV, por ejemplo, por el ensayo de Lowry. Preparar 10 – 20 mg de las VM en 22,5 l de tampón RIPA. A continuación, añadir 7,5 l de 4x tampón de carga de Laemmli y el calor durante 5 minutos a 95 ° C. Cargar las muestras en un gel de poliacrilamida y realizar electroforesis e inmunotransferencia de acuerdo con protocolos estándar. Después de transferir las proteínas a la membrana, realizar una tinción de Ponceau como control de carga de acuerdo con protocolos estándar. membrana Destain en TBST durante 5 min a TA. Bloquear la membrana durante 30 minutos hasta 1 hora a temperatura ambiente en 5% de BSA en TBST. Incubar la membrana con el anticuerpo primario a 4 ° C durante la noche o durante 2 horas a RT. Se lava la membrana con TBST 3 x 5 min. Incubar la membrana con el anticuerpo secundario acoplado a HRP a una dilución de 1: 10.000 en 5% de BSA. Nota: En caso de altas señales de fondo, utilizar leche en polvo en lugar de BSA. Se lava la membrana con TBST 3 veces 5 min. Desarrollar membrana con un reactivo de detección ECL y detectar señales en películas de quimioluminiscencia o un sistema de imágenes de quimioluminiscencia. NOTA: Con el fin de discriminar las variedades modernas de Exos, proteínas como la tubulina, actinina-4 o mitofilin se puede utilizar, que deben ser presente principalmente en las variedades modernas 16,25. Prestar atención a que los anticuerpos más tetraspanin (por ejemplo, CD9, CD81), utilizados como marcadores para Exos, no funcionan en condiciones reductoras y por lo tanto deben estar preparados en tampón no reductor de carga seguido de calentamiento durante 10 minutos a 70 ° C.

Representative Results

Con el fin de cuantificar el rendimiento de las VM que se pueden aislar siguiendo el protocolo descrito, se calculó la cantidad de VM aisladas a partir de muestras de sangre de 10 donantes. El rendimiento MV, que fue evaluada en un ensayo de proteínas de Lowry, varió de 10 hasta 30 g con una media de 19,2 mg por ml de sangre MV (Tabla 1). La concentración de partículas se determinó por análisis de seguimiento de nanopartículas (NTA) varió de 1,66 x 10 9-2,36 x 10 10 con una media de 5,9 x 10 9 partículas por ml muestra de plasma (Tabla 2). Además de la caracterización de las variedades modernas de microscopía electrónica de transmisión reveló una población de vesículas con un diámetro> 100 nm, que estaban rodeados por una bicapa lipídica y no contenían ningún orgánulos celulares (Figura 1A). NTA confirmó que el tamaño de las MVs aislados varió desde 100 hasta 600 nm (Figura 1B) y el tamaño medio de MV fue 201nm (Figura 1C). La tinción para típicos de MT y Exo marcadores mediante transferencia de Western demostró que los MVs aislados fueron positivos para la tubulina y sólo mostró una ligera expresión de CD9 y CD81, mientras que Exos fueron negativos para la tubulina y enriquecido en CD9 y CD81 (Figura 2). Análisis de las MVs aislados por citometría de flujo (Figura 3A) reveló una población de vesículas definido que podría ser cerrada utilizando los mismos parámetros utilizados normalmente para MVs aisladas a partir de sobrenadantes de cultivo celular y que era claramente diferente de la señal de fondo obtenida por la medición de PBS + 1% vesículas con depleción de FCS sin adición de MVs (Figura 3B). Para el análisis de las diferentes poblaciones de MT presentes en la sangre, MVs se tiñeron con los marcadores establecidos para las diferentes poblaciones de células sanguíneas, por ejemplo, CD62P para MVS derivado de plaquetas, CD45 para MVs derivadas de leucocitos, CD235a paraMV y CD62E sangre roja derivado de células para MVS derivadas de células endoteliales (Figura 4). Esta caracterización mostró que el porcentaje de subpoblaciones de MT difería entre las muestras de sangre de donantes investigados, mientras que la mayoría de MVs parecía ser derramada por las plaquetas en todas las muestras. Figura 1: Distribución del Tamaño de las VM aisladas de la sangre periférica. A, MVs aisladas se visualizaron por microscopía electrónica de transmisión. B, el análisis de seguimiento de nanopartículas Representante (NTA) de las VM que ilustran la distribución del tamaño de las vesículas. C, El tamaño medio de 10 MV preparaciones independientes se midió por NTA (media). Haga clic aquí para ver la colArger versión de esta figura. Figura 2: Caracterización de las VM aisladas por el Western Blot. la expresión diferencial de proteínas en las MVs aislados y Exos de dos donantes se visualizó mediante transferencia Western. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. Figura 3: Análisis de las VM mediante citometría de flujo. A, MV se visualizan por primera vez el frontal (FSC) frente a dispersión lateral (SSC) parcelas de compuerta en la respectiva población MV. Posteriormente, estos MVs se caracterizan por el antígeno de interés por el uso de anticuerpos marcados con fluorescencia dirigidos contra el antígeno. B, FSC típica frente a las parcelas SSC para MVS aisladas del plasma de dos donantes. Como comparación, un gráfico típico para MVs derivadas de las células tumorales de las células de cáncer de pulmón A549 aisladas a partir de sobrenadante de cultivo celular, así como un control negativo usando sólo PBS + 1% de vesículas empobrecido FCS sin MVs se muestra a la derecha. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. Figura 4: Caracterización de las VM aislados por citometría de flujo. MVs de tres donantes se caracterizaron para la expresión de marcadores de células de sangre establecidos (rojo) por citometría de flujo. Los respectivos controles de isotipo se muestran en gris.http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55057/55057fig4large.jpg "target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura. Muestra MV / ml de sangre [g] # 1 29.4 # 2 10.3 # 3 15.2 # 4 31.1 # 5 18.8 # 6 22.7 # 7 19.1 # 8 18.7 # 9 15.0 # 10 11.9 Tabla 1: MV producción de proteína a partir de muestras de sangre periférica. </strong> que se muestra es la cantidad de VM por ml de sangre periférica que se ha elaborado a partir de 10 donantes. los rendimientos de MT se cuantificaron mediante el ensayo de Lowry. Muestra MV / ml de plasma [recuento de partículas] # 1 6.42E + 09 # 2 2.36E + 10 # 3 1.88E + 09 # 4 6.51E + 09 # 5 3.48E + 09 # 6 4.57E + 09 # 7 2.09E + 09 # 8 1.66E + 09 # 9 2.54E + 09 # 10 6.20E + 09 Tabla 2: Rendimiento MV de partículas de muestras de sangre periférica. </strong> MV fueron aisladas de muestras de plasma de 10 donantes y recuentos de partículas se determinaron por análisis de seguimiento de nanopartículas. Se muestra el valor medio de tres mediciones independientes.

Discussion

Los estudios recientes sobre los vehículos eléctricos en la sangre han demostrado que la composición EV y recuentos cambian durante la causa de varias enfermedades. Por lo tanto, el análisis y la caracterización adicional de estos vehículos eléctricos son de gran interés para evaluar más a fondo su potencial uso como biomarcadores de la enfermedad para el diagnóstico y el pronóstico o para evaluar las respuestas de terapia. El protocolo que aquí presentamos permite el aislamiento de vesículas con un diámetro de hasta 600 nm, que no contiene ningún orgánulos celulares. Estas observaciones están de acuerdo con la definición actual de las VM y no incluyen la presencia de cuerpos apoptóticos 2. El uso de Western Blot, hemos sido capaces de demostrar que las variedades modernas aisladas muestran una alta expresión de tubulina, mientras que los tetraspanins CD9 y CD81 que se utilizan a menudo como marcadores Exo se expresaron sólo ligeramente. Esto confirma que las variedades modernas difieren de Exos y se adapta a la reciente caracterización y comparación de ambas poblaciones EV en profundidad por la proteómica 25.

contenido "> Durante la adquisición de muestras de sangre, es fundamental para mantener el tiempo entre la punción venosa y la preparación de plasma lo más corta posible con el fin de prevenir la degradación de MV. Además, el almacenamiento prolongado de las muestras de sangre podría dar lugar a la activación de células de la sangre que causa una mayor MV vertimiento y en última instancia, la apoptosis que resulta en la liberación de cuerpos apoptóticos. Otra consideración importante para el aislamiento de MV es para evitar contaminaciones de preparaciones MV con las proteínas plasmáticas o Exos más pequeñas. por lo tanto, es fundamental para eliminar la mayor cantidad del sobrenadante como sea posible después de girar hacia abajo las MVs en 14.000 x g. Dado que el pellet es normalmente visible y fuertemente unido a la pared del tubo, el sobrenadante se puede quitar fácilmente con una punta de pipeta. En contraste con Exos que tienden a formar agregados durante la preparación mediante ultracentrifugación de alta velocidad y son a menudo difíciles de volver a suspender, este problema no se produce con MVS.

Nuestro estudio muestra que es posible para caracterizar subpoblaciones de MT presentes en la sangre por citometría de flujo. A pesar de que el límite de detección de la mayoría de los citómetros de flujo es de alrededor de 200 – 300 nm, VM se midieron de manera reproducible en el donante, así como muestras de cultivo celular con los mismos parámetros de análisis y puertas que permitían claramente su distinción de las señales de fondo. Es importante verificar antes de las mediciones que el PBS utilizado para los análisis no contiene partículas contaminantes que podrían causar un fondo alto durante citometría de flujo (Figura 3). Aunque algunas variedades modernas más pequeñas no pueden ser capturados en un enfoque de citometría de flujo, se han detectado las variedades modernas de las principales poblaciones de células sanguíneas (por ejemplo, plaquetas, glóbulos rojos, leucocitos, células endoteliales). En nuestro análisis hemos utilizado marcadores estándar para las diferentes células sanguíneas que se han encontrado previamente en las VM 26 – 29. Debe tenerse en cuenta que con el fin de obtener los mejores resultados posibles por citometría de flujo, tque cantidad y la concentración de todos los anticuerpos se debe ajustar en una muestra MV que expresa el antígeno de interés. Si subpoblaciones específicas de MT en la sangre serán identificados con mayor especificidad, es posible llevar a cabo la doble tinción contra dos antígenos diferentes presentes en los respectivos MVs y sólo considerar todas las MVs dobles positivos para análisis posteriores 23. Actualmente, se están realizando esfuerzos para definir una gama estándar de las subpoblaciones de MT en la sangre de individuos sanos 23,30. Estos estudios ya han demostrado que las variedades modernas derivados de las plaquetas constituyen la mayor población de las VM en la sangre que está en correspondencia con nuestras observaciones.

Una de las ventajas de la citometría de flujo para caracterizar muestras de MT es que este método ya está bien establecido con fines de diagnóstico en la mayoría de los centros clínicos que permitan el posible uso de las VM como biomarcadores en el diagnóstico clínico de todos los días. Estudios previos sobre los vehículos eléctricos en la sangre que tienen en su mayoría se centraned en Exos más pequeños, se basan en cualquiera de los procedimientos de clasificación específicos para analizar selectivamente la población objetivo Exo deseada 31,32 o requiere una (2 días) proceso de aislamiento que consume tiempo con acoplamiento de Exos a perlas de látex antes del análisis 18. Nuestras propias observaciones no publicadas sugieren que el análisis de citometría de flujo de MVs a partir de preparaciones de sangre completa incluso permite la detección de MVs como MVs derivadas de tumores sin ayuda de tales procesos de selección.

En su conjunto, el protocolo presentado aquí permite el aislamiento rápido de las VM a partir de muestras de sangre periférica con equipo de laboratorio estándar y su posterior caracterización mediante citometría de flujo y transferencia Western. Todo el proceso se puede realizar en alrededor de 2 h que facilitará los estudios futuros sobre los perfiles de MT en la sangre de los pacientes que se requieren para evaluar el potencial de MVs como biomarcadores de la enfermedad.

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors acknowledge Meike Schaffrinski for excellent technical assistance. We would like to thank the following people for their help in the collection of peripheral blood samples (all from University Medical Center Göttingen): Henrietta Vida (Dept. of Transfusion Medicine), Kia Homayounfar, Lena-Christin Conradi (Dept. of General, Visceral and Pediatric Surgery), Leila Siam, Bawarjan Schatlo (Dept. of Neurosurgery), Hendrik A. Wolff, Martin Canis (Dept. of Otorhinolaryngology, Head and Neck Surgery) as well as all employees of the interdisciplinary short-term oncology. We acknowledge Dirk Wenzel (Max Planck Institute for Biophysical Chemistry, Göttingen) for his help with the electron microscopy of MVs.

The study was funded by the German Ministry of Education and Research (BMBF) project MetastaSys (grant no. 0316173) as well as the German Cancer Aid (grant no. 109615).

Materials

butterfly needle (21 gauge) Hospira Deutschland GmbH 490P29201
Bovine serum albumin Fraction V Roth 8076.3 For 10x TBS weigh 24.2 g Tris base and 80 g NaCl, ad 1 L H2O and adjust pH to 7.6
For 1x TBS-T mix 100 mL 10x TBS with 900 mL H2O and add 1 mL Tween-20
CD235a-PE Beckman Coulter A07792 use 5µl for staining
CD45-FITC Beckman Coulter 7782 use 5µl for staining
CD62E-PE Biolegend 336008 use 0.8µg for staining
CD62P-PE Biolegend 304905 use 0.1µg for staining
CD81 antibody Biolegend 349501 1:2000 in 5%BSA in TBS-T; use non-reducing conditions for Western Blotting
CD9 antibody Immunotools 21270091 1:1000 in 5%BSA in TBS-T; use non-reducing conditions for Western Blotting
Chemiluminescence imager ImageQuant LAS-4000 Fujitsu Life Sciences
DC protein assay kit II Bio-Rad 5000112
ECL detection reagent GE Healthcare RPN2232
EDTA vacutainers for blood collection Sarstedt 01.1605.001
FACSCanto II BD Biosciences
fetal calf serum (FCS) Invitrogen 10091148 heat-inactivated (30 min, 56°C)
filter 0.22µm Sarstedt 83.1826.001
HRP-coupled anti-mouse secondary antibody santa cruz sc-2005 use 1:10,000 in 5% milk powder in TBS-T
HRP-coupled anti-rabbit secondary antibody santa cruz sc-2004 use 1:10,000 in 5% milk powder in TBS-T
4x Laemmli loading buffer, Roti-Load 1 Roth K929.1
microfuge SIGMA 1-15K Sigma Laborzentrifugen
milk powder (Blotting-Grade Blocker, nonfat dry milk) BioRad 170-6404
multifuge 3 L-R Heraeus
NanoSight LM10 NanoSight Ltd.
PBS, w/o Ca and Mg Pan biotech P04-36500
perfusor syringe 50 mL Braun 8728844F
Ponceau-S staining solution PanReac AppliChem A2935,0500
rotor Sw32.1 Ti for ultracentrifugation (6x 17 mL) Beckman Coulter
rotor TLA-120.2 for ultracentrifugation (10x 1.5 mL) Beckman Coulter
tubes for flow cytometry (5 mL, round-bottom) BD Biosciences 352054
tubes for ultracentrifugation (15 mL) Beckman Coulter 344061
tubes for ultracentrifugation (11* 34 mm) Beckman Coulter 343778
Tubulin antibody Millipore 05-829 1:5000 in 5%BSA in TBST
ultracentrifuge Optima L-80 XP Beckman Coulter
ultracentrifuge TL-100 Beckman Coulter
valve filter Seraplas V15 Sarstedt 53,428
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Referenzen

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Menck, K., Bleckmann, A., Schulz, M., Ries, L., Binder, C. Isolation and Characterization of Microvesicles from Peripheral Blood. J. Vis. Exp. (119), e55057, doi:10.3791/55057 (2017).
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