Summary

Yaratma<em> De Novo</em> Merkezli Hemichain retroviral transdüksiyonu ile antijen-özel insan T hücre reseptörleri

Published: October 25, 2016
doi:

Summary

Bu yazıda, mevcut bir TCR'nin TCRα ya TCRβ eşleştirme periferal T hücresi reseptör repertuvarının tamamlayıcı hemichain ile, ilgi konusu antijen spesifikliğini sahip antijen-spesifik T hücre reseptörleri (TCR'ler) oluşturmak için yeni bir metot açıklamaktadır. De novo oluşturulan TCRler afiniteye değişen antijen spesifikliğini muhafaza eder.

Abstract

T hücre reseptörleri (TCR'ler) immünoterapi gelecek vaat eden bir yöntem olarak tümör hedef T hücrelerinin özgüllük doğrudan klinikte kullanılmaktadır. Bu nedenle, çeşitli tümörle birleşmiş antijenler için spesifik klonlama TCRler birçok çalışma hedefi olmuştur. etkili bir T hücresi tepkisi ortaya çıkarmak için, TCR uygun afinite ile hedef antijeni tanımalıdır. Ancak, klonlama gibi TCR'ler bir meydan okuma ve birçok kullanılabilir TCR'ler olmuştur soydaş antijen sub-optimal yakınlığa sahip olmuştur. Bu protokol, hemichain flubelerde yararlanarak mevcut TCRler kullanılarak de novo, yüksek afinite antijen spesifik TCRlerin klonlanması için bir yöntem tarif eder. Bazı TCRler için, her TCRα ya TCRβ hemichain antijen tanınması eşit katkı anlaşılana ve baskın hemichain merkezli hemichain olarak adlandırılır. Biz orijinal karşı zincirinden farklı karşıt zincirleri ile merkezli hemichain eşleştirme, biz antijen s korumak mümkün olduğunu göstermiştirpecificity, aynı kökenli bir antijen için etkileşimi gücünü modüle ederken. Bu nedenle, belirli bir TCR'nin terapötik potansiyeli merkezli ve karşı hemichains arasında eşleşmeye optimize ederek arttırılabilir.

Introduction

T hücre reseptörleri (TCR'ler) bir TCRα ve TCRβ zinciri oluşan T lenfositler tarafından ifade heterodimerik adaptif bağışıklık reseptörleri vardır. Onlar HLA / peptit kompleksleri neredeyse sınırsız yapılandırmaları tanıyabilen oldukça çeşitli bir repertuar üreten V (D) J gen segmentlerinin, somatik düzenlenmesi yoluyla oluşturulur. Klinik olarak, tümörle birleşmiş antijenler için clonotypic TCR'ler spesifik ifade etmek üzere geliştirilen T hücreleri kanser 1 çeşitli etkinliğini göstermiştir. Bununla birlikte, bu amaç için klonlanmış bir çok TCRler terapötik uygulama sınırlayan ilgili antijen için yeterlidir afiniteye sahip değildir.

Burada, zincir merkezlilik yararlanarak mevcut TCRler için bu sınırlamayı aşmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu bir TCR hemichain hedef antijenin 2 tanınması daha baskın bir rol oynayabileceğini rapor edilmiştir, burada flubelerde olarak adlandırılan. Kristal yapı analizleri bu bir Centric göstermiştirBir TCR hemichain 3,4 karmaşık MHC / peptit üzerinde ayak izi çoğunluğu için hesap verebilir. Bu kavram kullanılarak, daha önce SIG35α TCRα TCRβ zincirlerinin farklı bir repertuar ile eşleşmeye ve HLA-A2 tarafından sunulan 5 MART1 27-35 peptide karşı reaktiflik muhafaza olduğunu göstermiştir. Benzer sonuçlar merkezli TCRβ hemichain çeşitli TCRα zincirleri ile eşleştirilmiş ve HLA-A24 6 tarafından sunulan WT1 235-243 peptit için reaktivite muhafaza TAK1 TCR ile elde edilmiştir. MART1 ve WT1 Hem tümör bağlantılı antijenler vardır. Zincir merkezlilik farklı Vβ11 TCRβ zincirleri 7 insan iNKT TCRlerin değişmeyen Vα24-Jα18 (Vα24i) TCRα zinciri eşleyerek, CD1d kısıtlamalı değişmeyen Doğal Katil (iNKT) TCRlerin antijen tanıma çalışma uygulanmıştır.

Tüm durumlarda, trans göre TCRlerin de novo repertuarı üretmek mümkünkişiye hemichain endojen TCRα ya TCRβ karşı zincirleri ile eşleştirilmiş periferal kan T-hücreleri, merkezli TCR hemichain ducing. Aslında, merkezi hemichain birlikte eşleştirilmiş ilgi antijen özelliği muhafaza TCRlerin oluşturur, ancak afinite değişen uygun bir karşı-zincirleri, belirlemek için kullanılabilecek bir yem olarak hizmet vermektedir. Bu yeni repertuarların, biz önceden varolan TCRler göre hedef antijene karşı iyileştirilmiş bir karşılıklı etkileşim gücü olan clonotypic TCRlerin izole mümkün. Bu nedenle, bu yöntemin klinik uygulama için en uygun TCRler belirlenmesi boru hattı hızlandıracak inanıyorum.

Protocol

1. retroviral İlgi Kodlama TCR Hemichain Construct hazırlanması takip eden adımda TCR geninin yerleştirilmesine imkan vermek için Pmx vektör linearize. 3 saat 37 ° C (Tablo 1), EcoRI ve Notl kısıtlama enzimleri ile plazmid DNA Digest 8. % 1.2 agaroz jeli üzerinde sindirilmiş plasmidin elektroforez yapın. Tüketim yaklaşık 4.500 baz çifti (bps) bant ve elute 30 ul steril su içinde ticari olarak temin edilebilen jel özütleme kitleri 9 kullanara…

Representative Results

Önceden bilgi sahibi olmadan bu hemichain arasında TCRα ve TCRβ zinciri ayrı klonlanabilir ve HLA-A24 / WT1 reaktif TAK1 TCR (Şekil 1) söz konusu yapıldı periferal kan T-hücreleri, transduse gerekmektedir, zincir-merkezlidir. TAK1β transdüksiyonu antijen-spesifik T hücrelerinin belirgin daha yüksek bir frekans elde edildi. Tersine, olmayan bir merkezli hemichain transdüksiyon de novo multimer pozitif T hücreleri, TAK1α zinciri ile görüldüğü…

Discussion

Bu yöntemin başarılı bir uygulama için ilk şartı ilgi hemichain birincil T hücrelerinin yeterli transdüksiyon verimliliği elde edilir. Deneyimlerimize göre, insan primer T hücrelerinde, katılan genin kararlı ve etkili ekspresyonu için retroviral vektör sonuçları gibi paketleme hücre hattı ve Pmx olarak PG13 kullanarak kombinasyon halinde. PG13 paketleme hücreleri transdüksiyon verimliliği artırmak için, yüksek titre ambalaj hücreleri seçmek için klonlanmış tek hücre olabilir. Bundan başk…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by NIH grant R01 CA148673 (NH); the Ontario Institute for Cancer Research Clinical Investigator Award IA-039 (NH); BioCanRX Catalyst Grant (NH); The Princess Margaret Cancer Foundation (MOB, NH); Canadian Institutes of Health Research Canada Graduate Scholarship (TG); Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada Postgraduate Scholarship (TG); Province of Ontario (TG, MA); and Guglietti Fellowship Award (TO). HLA and CD1d monomers were kindly provided by the NIH tetramer core facility.

Materials

0.05% Trypsin-EDTA Wisent Bioproducts 325-043-CL
293GPG cells Generated by Ory et al. (ref 8)
Agar Wisent Bioproducts 800-010-CG
Agarose Wisent Bioproducts 800-015-CG
Ampicillin sodium salt Wisent Bioproducts 400-110-IG
Chloroform BioShop CCL402
Deoxynucleotide (dNTP) Solution Mix New England Biolabs N0447L
DMEM, high glucose, pyruvate Life Technologies 11995065
EcoRI New England Biolabs R0101S
EZ-10 Spin Column DNA Gel Extraction Kit BS353
Fetal Bovine Serum Life Technologies 12483020
Ficoll-Paque Plus GE Healthcare 17-1440-02
Filter Corning 431220 0.45 mm pore SFCA membrane
FITC-conjugated anti-human CD271 (NGFR) mAb Biolegend 345104 clone ME20.4
FITC-conjugated anti-human CD3 mAb Biolegend 300440 clone UCHT1
Gentamicin Life Technologies 15750078
Gibson Assembly Master Mix New England Biolabs E2611L used for multi-piece DNA assembly
HLA-A2 pentamer Proimmune depends on antigenic peptide HLA-A2/MART1 multimer used here was purchased from Proimmune
HLA/CD1d monomers NIH Tetramer Core Facility multimerize monomers according to protocol provided by NIH tetramer core facility
Human AB serum Valley Biomedical HP1022
human CD3 microbeads Miltenyi Biotec 130-050-101
IOTest Beta Mark TCR V beta Repertoire Kit Beckman Coulter IM3497
Jurkat 76 cells Generated by Heemskerk et al. (ref 10)
LB Broth Wisent Bioproducts 800-060-LG
LS MACS column Miltenyi Biotec 130-042-401
NEB 5-alpha Competent E. coli New England Biolabs C2987I
NEBuffer 3.1 New England Biolabs B7203S used for EcoRI and NotI digestion
NotI New England Biolabs R0189S
NucleoBond Xtra Midi Macherey-Nagel 740410 used for plasmid purification
PC5-conjugated anti-human CD8 mAb Beckman Coulter B21205 clone B9.11
PG13 cells ATCC CRL-10686
Phusion HF Buffer Pack New England Biolabs B0518S
Phusion High-Fidelity DNA Polymerase New England Biolabs M0530L
pMX retroviral vector Cell Biolabs RTV-010
polybrene Sigma-Aldrich H-9268
Proleukin (recombinant human interleukin-2) Novartis by Rx only equivalent product can be purchased from Sigma-Aldrich
Purified anti-human CD3 antibody Biolegend 317301 clone OKT3, used for T cell stimulation
RPMI 1640 Life Technologies 11875119
SA-PE Life Technologies S866 used for multimerizing monomers from NIH tetramer core facility
SMARTer RACE 5'/3'  Kit Clontech 634858
Sterile water Wisent Bioproducts 809-115-LL
SuperScript III First-Strand Synthesis System Invitrogen 18080051 for cDNA synthesis
Syringe BD 301604 10 mL, slip tip
Tetracycline hydrochloride Sigma-Aldrich T7660
TransIT-293 Mirus Bio MIR 2700 used to transfect 293GPG cells
TRIzol Reagent Life Technologies 15596026

Referenzen

  1. Maus, M. V., et al. Adoptive immunotherapy for cancer or viruses. Annu. Rev. Immunol. 32, 189-225 (2014).
  2. Yokosuka, T., , ., et al. Predominant role of T cell receptor (TCR)-alpha chain in forming preimmune TCR repertoire revealed by clonal TCR reconstitution system. J.Exp.Med. 195, 991-1001 (2002).
  3. Rudolph, M. G., Stanfield, R. L., Wilson, I. A. How TCRs bind MHCs, peptides, and coreceptors. Annu. Rev. Immunol. 24, 419-466 (2006).
  4. Shimizu, A., et al. Structure of TCR and antigen complexes at an immunodominant CTL epitope in HIV-1 infection. Sci. Rep. 3, 3097 (2013).
  5. Nakatsugawa, M., et al. Specific roles of each TCR hemichain in generating functional chain-centric TCR. J. Immunol. 194 (7), 3487-3500 (2015).
  6. Ochi, T., et al. Optimization of T-cell Reactivity by Exploiting TCR Chain Centricity for the Purpose of Safe and Effective Antitumor TCR Gene Therapy. Cancer Immunol. Res. 3 (9), 1070-1081 (2015).
  7. Chamoto, K., et al. CDR3beta sequence motifs regulate autoreactivity of human invariant NKT cell receptors. J. Autoimmun. 68, 39-51 (2016).
  8. Grozdanov, P. N., MacDonald, C. C. Generation of plasmid vectors expressing FLAG-tagged proteins under the regulation of human Elongation Factor-1α promoter using Gibson Assembly. J. Vis. Exp. (96), e52235 (2015).
  9. Beshiri, M. L., et al. Genome-wide analysis using ChIP to identify isoform-specific gene targets. J. Vis. Exp. (41), e2101 (2010).
  10. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nat. Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  11. Johnson, D., et al. Expression and structure of the human NGF receptor. Cell. 47 (4), 545-554 (1986).
  12. Kim, J. H., et al. High cleavage efficiency of a 2A peptide derived from porcine teschovirus-1 in human cell lines, zebrafish and mice. PloS one. 6, e18556 (2011).
  13. Yang, S., et al. Development of optimal bicistronic lentiviral vectors facilitates high-level TCR gene expression and robust tumor cell recognition. Gene Ther. 15 (21), 1411-1423 (2008).
  14. Froger, A., Hall, J. E. Transformation of plasmid DNA into E. coli using the heat shock method. J. Vis. Exp. (6), e253 (2007).
  15. Birnboim, H. C., Doly, J. A rapid alkaline extraction procedure for screening recombinant plasmid DNA. Nucleic Acids Res. 7 (6), 1513-1523 (1979).
  16. Ory, D. S., Neugeboren, B. A., Mulligan, R. C. A stable human-derived packaging cell line for production of high titer retrovirus/vesicular stomatitis virus G pseudotypes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 93 (21), 11400-11406 (1996).
  17. Imataki, O., et al. IL-21 can supplement suboptimal Lck-independent MAPK activation in a STAT-3-dependent manner in human CD8(+) T cells. J. Immunol. 188 (4), 1609-1619 (2012).
  18. Davies, J. K., Barbon, C. M., Voskertchian, A. R., Nadler, L. M., Guinan, E. C. Induction of alloantigen-specific anergy in human peripheral blood mononuclear cells by alloantigen stimulation with co-stimulatory signal blockade. J. Vis. Exp. (49), e2673 (2011).
  19. Butcher, M. J., Herre, M., Ley, K., Galkina, E. Flow cytometry analysis of immune cells within murine aortas. J. Vis. Exp. (53), e2848 (2011).
  20. Butler, M. O., et al. Establishment of antitumor memory in humans using in vitro-educated CD8+ T cells. Sci. Transl. Med. 3 (80), 80ra34 (2011).
  21. Chomczynski, P., Sacchi, N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal. Biochem. 162 (1), 156-159 (1987).
  22. Peterson, S. M., Freeman, J. L. RNA isolation from embryonic zebrafish and cDNA synthesis for gene expression analysis. J. Vis. Exp. (30), e1470 (2009).
  23. Ying, S. Y., Ying, S. Y. Complementary DNA Libraries. Generation of cDNA Libraries: Methods and Protocols. 221, 1-12 (2003).
  24. Hirano, N., et al. Engagement of CD83 ligand induces prolonged expansion of CD8+ T cells and preferential enrichment for antigen specificity. Blood. 107 (4), 1528-1536 (2006).
  25. Scotto-Lavino, E., Du, G., Frohman, M. A. 5′ end cDNA amplification using classic RACE. Nat. Protoc. 1 (6), 2555-2562 (2006).
  26. Heemskerk, M. H., et al. Redirection of antileukemic reactivity of peripheral T lymphocytes using gene transfer of minor histocompatibility antigen HA-2-specific T-cell receptor complexes expressing a conserved alpha joining region. Blood. 102 (10), 3530-3540 (2003).
  27. Yan, H., et al. Magnetic cell sorting and flow cytometry sorting methods for the isolation and function analysis of mouse CD4+ CD25+ Treg cells. J. Zhejiang Univ. Sci. B. 10, 928-932 (2009).
  28. Padovan, E., et al. Expression of two T cell receptor alpha chains: dual receptor T cells. Science. 262 (5132), 422-424 (1993).
  29. Johnson, L. A., et al. transfer of tumor-reactive TCR confers both high avidity and tumor reactivity to nonreactive peripheral blood mononuclear cells and tumor-infiltrating lymphocytes. J. Immunol. 177 (9), 6548-6559 (2006).
  30. Chinnasamy, N., et al. A TCR targeting the HLA-A*0201-restricted epitope of MAGE-A3 recognizes multiple epitopes of the MAGE-A antigen superfamily in several types of cancer. J. Immunol. 186 (2), 685-696 (2011).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Guo, T., Ochi, T., Nakatsugawa, M., Kagoya, Y., Anczurowski, M., Wang, C., Rahman, M. A., Saso, K., Butler, M. O., Hirano, N. Generating De Novo Antigen-specific Human T Cell Receptors by Retroviral Transduction of Centric Hemichain. J. Vis. Exp. (116), e54697, doi:10.3791/54697 (2016).

View Video