Summary

Production à grande échelle de cardiomyocytes à partir pluripotentes humaines cellules souches en utilisant un petit protocole Différenciation Molecule-Based hautement reproductible

Published: July 25, 2016
doi:

Summary

Here, we present a robust, fast and scalable cardiomyocyte differentiation protocol for human pluripotent stem cells (hPSCs). Cardiomyocytes derived using this large-scale method can provide sufficient cell numbers for their effective use in human cardiovascular disease modeling, high-throughput drug screening, and potentially clinical applications.

Abstract

Maximiser le bénéfice de cellules souches pluripotentes humaines (hPSCs) pour la recherche, la modélisation des maladies, des produits pharmaceutiques et des applications cliniques nécessite des méthodes robustes pour la production à grande échelle de types de cellules fonctionnelles, y compris les cardiomyocytes. Ici, nous démontrons que la manipulation temporelle de WNT, le TGF-β, et les voies de signalisation SHH conduit à des lignes HPSC différenciation des cardiomyocytes très efficace de cellule unique à des passages à la fois la suspension statique et les systèmes de suspension de bioréacteurs agités. Employant cette stratégie a donné lieu à ~ 100% battant sphéroïdes, contenant toujours> 80% de troponine cardiaque des cellules T positives après 15 jours de culture, validés sur plusieurs lignes HPSC. Nous présentons également une variante de ce protocole d'utilisation avec des lignées cellulaires actuellement pas adaptés aux passages à cellule unique, dont le succès a été vérifiée dans 42 lignes HPSC. Cardiomyocytes générés en utilisant ces protocoles expriment des marqueurs spécifiques de la lignée et spectacle attendu electrophysfonctionnalités siologiques. Notre protocole présente une plate-forme simple, robuste et efficace pour la production à grande échelle de cardiomyocytes humains.

Introduction

Les cellules humaines pluripotentes de troncs (hPSCs), y compris les cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) et induites des cellules souches pluripotentes (de hiPSCs), ont la capacité d'auto-renouvellement et la capacité de se différencier en cellules des trois couches germinales embryonnaires 1,2. En raison de ces caractéristiques, hPSCs fournissent une source précieuse et illimité pour la production de génération et évolutive de types de cellules pathologiques pertinentes pour la modélisation de la maladie humaine 3-5, pour criblage à haut débit de la drogue et de toxicité des essais 6,7 et potentiellement pour des applications cliniques 8 . Génération de cardiomyocytes de hPSCs offre la possibilité d'étudier spécifiquement les mécanismes de maladies cardio-vasculaires humaines complexes et leurs traitements possibles, déjà au-delà de la portée de nos capacités en raison de l'absence de modèles animaux pertinents et / ou la disponibilité de tissus primaires touchés.

Toutes les applications précitées de hPSCs necessitate la production d'un nombre massif de cardiomyocytes hautement enrichis et fonctionnels. Ainsi, la disponibilité d'une manière efficace, reproductible et évolutive in vitro protocole de différenciation cardiaque approprié pour plusieurs lignes HPSC est crucial. Protocoles de différenciation des cardiomyocytes classiques ont utilisé différentes stratégies telles que la formation de corps embryoïdes 9, les techniques de co-culture 10, l' induction avec des cocktails de cytokines 11 et méthodes de protéine de transduction 12. En dépit des progrès réalisés dans ces techniques, qui souffrent le plus encore d'une mauvaise efficacité, exigent des facteurs de croissance coûteux, ou d'offrir l'universalité limitée lorsque l'on tente d'utiliser plusieurs lignes HPSC. À ce jour, ces défis ont fixé des limites à la production de cardiomyocytes HPSC dérivées pour les études de thérapie cellulaire dans des modèles animaux, ainsi que dans l'industrie pharmaceutique pour la découverte de médicaments 13. Par conséquent, le développement de techniques robustes et abordables pour les grandsproduction -scale de cardiomyocytes fonctionnels HPSC dérivés dans les systèmes de culture évolutive serait largement faciliter leurs applications commerciales et cliniques.

Dans ce manuscrit, nous rapportons le développement d'un système de différenciation cardiaque rentable et intégrée avec une grande efficacité, la reproductibilité et l'applicabilité de CSEh et hiPSCs générés à partir d'une variété de sources et des méthodes de culture, y compris une méthode pour la production à grande échelle de très populations enrichies de cardiomyocytes HPSC dérivées en utilisant un bioréacteur. De plus, nous avons optimisé ce protocole pour les lignes HPSC non adaptées à feeder culture cellulaire libre et / ou simple, comme hiPSCs nouvellement établies ou de grandes cohortes de lignes HPSC pertinentes à l'analyse du mécanisme de la maladie.

Protocol

1. Préparation de la Culture Media, Revêtement de culture cellulaire Plaques et entretien des indifférencié hPSCs Préparation des médias Note: Stériliser les médias en utilisant un dispositif de 0,22 um de filtration et conserver à 4 ° C à l' abri de la lumière jusqu'à 4 semaines. Noms de réactifs, les fournisseurs et les numéros de catalogue sont répertoriés dans le tableau des matériaux. <ol…

Representative Results

Afin d'établir une méthode simple pour la différenciation à grande échelle de cardiomyocytes de hPSCs, nous avons créé un protocole dans lequel les cellules ont été traitées d' abord avec un activateur WNT / β-caténine (CHIR99021) 16 et ensuite avec des inhibiteurs de la WNT / β- caténine et facteur de croissance transformant β de (TGF-β) des voies (16 IWP2 et SB431542 17, respectivement) et , enfin , un activateur du Sonic hedgeho…

Discussion

Cardiomyocytes dérivés de hPSCs sont une source extrêmement attrayante pour une utilisation dans la modélisation des maladies humaines, le dépistage dépistage des drogues / toxicité et, peut-être à l'avenir, les thérapies régénératives. L'un des principaux obstacles à l'utilisation de ces cellules cependant, est la capacité de fournir suffisamment de matériaux de haute qualité pour leur utilisation efficace. En utilisant notre protocole décrit, nous proposons une méthode qui surmonte cette…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This study was funded by grants provided from Royan Institute, Iranian Council of Stem Cell Research and Technology, the Iran National Science Foundation (INSF), the National Health and Medical Research Council of Australia (NHMRC; 354400), the National Heart Foundation of Australia/Heart Kids Australia (G11S5629), and the New South Wales Cardiovascular Research Network. HF was supported by a University International Postgraduate Scholarship from the University of New South Wales, Australia. RPH was supported by a NHMRC Australia Fellowship. The authors express their gratitude to the human subjects who participated in this research.

Materials

Knockout DMEM Life Technologies 10829018
Knockout Serum Replacement (KO-SR) Life Technologies 10828028
Glutamax Life Technologies 35050061
MEM Non-essential Amino Acids Life Technologies 11140-050
β-Mercaptoethanol Life Technologies 21985-023
Basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) Miltenyi Biotec 130-093-843
RPMI1640 Life Technologies 11875093
DPBS, no calcium, no magnesium Life Technologies 14190144
DPBS Life Technologies 14287072
Attachment Factor (AF) Life Technologies S006100
ECM Gel Sigma-Aldrich E1270
Laminin Invitrogen 23017-015
DMEM Life Technologies 11965-092                                                                                                       
Fatal Bovine Serum (FBS) Life Technologies 16140-071
B27 minus insulin Gibco A18956-01
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15070063
0.05% Trypsin/EDTA Life Technologies 25300-054
Collagenase Type IV Life Technologies 17140-019
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma-Aldrich C7902
Mitomycin C Bioaustralis BIA-M1183
CHIR99021 Miltenyi Biotec 130-104-172
IWP2 Miltenyi Biotec 130-105-335
SB431542 Miltenyi Biotec 130-095-561
Purmorphamine Miltenyi Biotec 130-104-465
ROCK inhibitor Y-27632 Miltenyi Biotec 130-104-169
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E6758
Poly Vinyl Alcohol (PVA) Sigma-Aldrich 363073
Gelatin Sigma-Aldrich G1890
Trypan Blue Bio-Rad 145-0013
Accumax  Innovative Cell Technologies Inc. AM105
Sigmacote  Sigma-Aldrich SL2 
CELLSPIN Integra Biosciences 183 001
Spinner flask with 1 pendulum, 100 ml  Integra Biosciences 182 023
Mouse Embryonic Fibroblasts (MEF) Prepared in-house (or commercially available)
Human pluripotent stem cell (hPSC) lines Prepared in-house (or commercially available)

Referenzen

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check_url/de/54276?article_type=t

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Diesen Artikel zitieren
Fonoudi, H., Ansari, H., Abbasalizadeh, S., Blue, G. M., Aghdami, N., Winlaw, D. S., Harvey, R. P., Bosman, A., Baharvand, H. Large-Scale Production of Cardiomyocytes from Human Pluripotent Stem Cells Using a Highly Reproducible Small Molecule-Based Differentiation Protocol. J. Vis. Exp. (113), e54276, doi:10.3791/54276 (2016).

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