Oligomerization of the ryanodine receptor, a homo-tetrameric ion channel mediating Ca2+ release from intracellular stores, is critical for skeletal and cardiac muscle contraction. Here, we present complementary in vivo and in vitro methods to detect protein self-association and determine homo-oligomer stoichiometry.
Oligomerization is often a structural requirement for proteins to accomplish their specific cellular function. For instance, tetramerization of the ryanodine receptor (RyR) is necessary for the formation of a functional Ca2+ release channel pore. Here, we describe detailed protocols for the assessment of protein self-association, including yeast two-hybrid (Y2H), co-immunoprecipitation (co-IP) and chemical cross-linking assays. In the Y2H system, protein self-interaction is detected by β-galactosidase assay in yeast co-expressing GAL4 bait and target fusions of the test protein. Protein self-interaction is further assessed by co-IP using HA- and cMyc-tagged fusions of the test protein co-expressed in mammalian HEK293 cells. The precise stoichiometry of the protein homo-oligomer is examined by cross-linking and SDS-PAGE analysis following expression in HEK293 cells. Using these different but complementary techniques, we have consistently observed the self-association of the RyR N-terminal domain and demonstrated its intrinsic ability to form tetramers. These methods can be applied to protein-protein interaction and homo-oligomerization studies of other mammalian integral membrane proteins.
İskelet ve kalp kası kasılma RYR aracılık sarkoplazmik retikulum Ca 2 + salınımı ile tetiklenir. dört aynı alt birimden oluşan fonksiyonel kanalı üç memeli RyR izoformu vardır. Her bir alt-birimi RyR büyük sitoplazmik düzenleme, N-terminal kısmı ve bir yüksek-iletkenliği Ca 2 + gözenek oluşturan transmembran içeren küçük bir C-ucu kısmı oluşmaktadır. Anormal içi ve arası altbirim etkileşimleri RyR kanal disfonksiyonu altında yatan ve nöromusküler ve kardiyak bozukluklar 1 sonuçlanır. RyR yapısı katılan belirli alanlar belirlenmesi ve karakterizasyonu: fonksiyon ilişkisinin RyR patofizyoloji anlaşılması için çok önemlidir.
Geleneksel biyokimyasal, protein-protein etkileşimi teknikleri genellikle bakterilerde üretilen saflaştırılmış proteinin büyük miktarlarda gerektirir. Bu RyR, çok büyük bir zar s durumunda mümkün değildirbunun yeniden bir araya fragmanları bakteriyel ekspresyon ve saflaştırma kolayca uygun değildir oysa rotein, ~ 5000 amino asitten oluşan. Bu nedenle, ökaryotik konakçı hücreleri içeren alternatif sentezleme sistemleri, memeli integral membran proteinleri için gereklidir. Daha önce hep birlikte N-terminal tetramerizasyon Üç memeli RyR 2,3 izoformları arasında muhafaza edilir yapısal özellik olduğunu göstermeye Y2H, CO-IP ve çapraz bağlama deneyleri kullanmışlardır. Daha da önemlisi, aritmojenik kalp hastalığı ile ilişkili tek bir nokta mutasyonu N-ucu kendi kendine birleşmesini ve işlevsiz RyR kanalı 4 sonuçları bozan bulduk. Ayrıca RyR sitoplazmik Cı-terminal kuyruğu 5 ve homolog hücre içi Ca2 + serbest bırakma kanalının N-terminalinde, inositol 1,4,5 trifosfat reseptörü 2 oligomerizasyon çalışmaları için bu teknikleri uyguladık.
Y2H deneyinde, etkileşimleri içinilgili arasında iki protein (X ve Y) bir fonksiyonel bir transkripsiyon faktörü (GAL4) ve raportör genlerin 6-9 ardından gelen aktivasyon yeniden oluşturulması ile ölçülür. DNA-bağlama alanını (DNA-BD) / protein X füzyon (yem) ve aktivasyon alanı (AD) / protein Hasılat: İki farklı klonlama vektörleri GAL4 iki fiziksel olarak ayrılamaz, bağımsız bir etki alanları ile test edilen iki protein füzyonları oluşturmak için kullanılan füzyon (hedef). Y2H bir protein GAL4 DNA BD aynı proteinin AD füzyonlarının üreterek kendisi ile etkileşime test etmek için de kullanılabilir. Genetiği Y2H suşları (GAL80 proteini GAL4 bir baskılayıcı olan) eksik GAL4 ve GAL80 modifiye yanı TRP1 ve yetersiz LEU2 olarak (sırasıyla, yem ve yem plazmidler beslenme seçim sağlamak için). Maya çekirdeğinde, yeniden birleştirici DNA, BD AD peptidler sadece füzyonları 'X ile hibrid GAL4 transkripsiyon faktörü üretme yakın fiziksel temas haline getirilir: Y interaction. Bu yaklaşım, raportör gen (β-galaktosidaz (β-Gal) için LacZ kodlama) ve kromojenik (bir histidin biyosentezi için gerekli enzim için HIS3 kodlayan) prototropik paralel transkripsiyonel aktivasyonu yoluyla protein-protein etkileşimlerini tespit etmek için hızlı bir genetik tarama sağlar. Y2H başlıca avantajı, daha zayıf ya da geçici protein-protein etkileşimlerini tespit in vivo deney olmasıdır. Ayrıca, saptama yem ve hedef proteinlerin saflaştırılması veya spesifik antikorların üretimi için gerek basit (ortam histidin olarak) bir büyüme seçimi kullanımını ya da bir kolorimetrik bölgesinin (β-Gal) deneyi içerir. Buna ek olarak, Y2H da kütüphane protein cDNA doğrudan erişim sağlayan bir yem protein yeni bağlanma ortakları, rasgele bilinmiyor klonlar (GAL4 AD kaynaşık cDNA kütüphanesi klon) oluşan bir koleksiyon taranması için kullanılabilir.
Y2H gözlemleri uzatmak için, independENT biyokimyasal teknikler kullanılabilir. Eş IP ve immunoblotting ile birlikte çapraz bağlama deneyleri karmaşık örnek karışımları protein ilişkilerini tespit etmek için kullanılan yöntemler, örneğin., Bütün hücre lizatları 10 vardır. Ana avantajları rekombinant proteinlerin kullanımını gerektiren diğer yöntemlerin aksine, doğal doku ile ilgili protein-protein etkileşimleri hakkında rapor olmasıdır. Yeniden birleştirici proteinler, genellikle kendi doğru konformasyonu ve post-translasyonel değişikliklere sahip olasıdır, memeli hücre hattı, hem de hücre içi lokalizasyonu ifade kullanılabilir. CO-IP ve çapraz bağlama vitro deneyler, homojenize hücrelerden yararlanılarak bulunmaktadır Bununla birlikte, iki protein ortakları sağlam hücre 11 içinde bir arada lokalize olmadığını teyit etmek için gereklidir. Rutin geçici kalsiyum fosfat çökeltme yöntemi 2 kullanılarak memeli integral membran ve sitosolik proteinleri ifade etmek için, memeli HEK293 hücrelerinin transfeksiyonu kullanma-4,12-14, Burada detaylı olarak tarif. Bu etkin bir hücre içinde plazmid DNA teslim için ucuz bir yöntemdir ancak, özellikle kullanılan hücre hattı ve hücre izdiham yanı sıra plasmid DNA 11,15 saflığına bağlıdır.
CO-IP deney farazi etkileşimi mümkün 10,16 eş saflaştırılmasını sağlayan denatüre edici olmayan koşullar altında, hücre lizatları ilgi doğal veya yeniden birleştirici proteinin izole edilmesini gerektirmektedir. İki farklı epitop ile iki farklı füzyonlarının üreterek, bir protein kendi etkileşim olmadığını test etmek için bu kullanılabilecek iki bağımsız antikorların kullanımını protein X izolasyonu için immüno-çökeltilmesinin antikor ve protein ortağı Y saptanması için immünoblot antikoru gerektiren etiketleri (örn., HA ve Myc'nin). immüno-çökeltilmesinin antikoru, Protein-A, Fc bölgesi vasıtasıyla bağlanmış (Protein-G, antikor, yükseltilmiş hayvan türlerine bağlı olarak ya da) olanagaroz (veya sefaroz) reçinesi konjuge edilir. Protein X antikoru ile çökeltilir: Protein-reçine, hücre lizatı Homojenleştirilmiş hücrelere, yani, deterjan çözünebilen fraksiyonu ile inkübasyonu takiben. Protein immüno-kompleksler tampon SDS-ihtiva eden ve daha sonra SDS-PAGE ile analiz edildi ve proteinin varlığını Y'nin 17 tespit etmek için bir antikor kullanılarak immün ile elüt edilmiştir. Eş IP fazla spesifik olmayan bağlanma bilmek deterjanda eriyen proteinler ile yapılmalıdır. Y'nin çift 10,16,18: deterjan ve konsantrasyonu seçimi, hem de yıkama sayısı, her bir X için optimize edilmelidir.
Çapraz bağlanma oligomerik protein kompleksi stokiyometri belirlemek için kullanılır. Bitişik etkileşim protomerlerin arasında kovalent bağlar oluşturmak için bir kimyasal reaksiyon göre, ve bu yüzden, SDS-PAGE ayrılması sırasında proteinin oligomerik durumunun korunmasını mümkün kılmaktadır. Çok sayıda çapraz bağlama reage varproteinler, tipik haliyle, birincil aminler, karboksilik veya tiol grupları üzerinde farklı reaktif grup hedefleyen çeşitli uzunluklarda ve kimya NTS. Burada, glutaraldehid kullanımını tarif (OHC (CH2) 3, CHO), lizin kalıntılarının 19,20 bulunan serbest amino grupları ile reaksiyona giren iki ucundaki iki aldehit grubu ile, bir homo-iki fonksiyonlu çapraz bağlayıcı. Çapraz bağlanma adükt oluşumu ile sonuçlanan bir konsantrasyon veya zaman bağımlı bir şekilde takip eder. Glutaraldehit Reaksiyon hidrazin (H 2 NNH 2) ve protein örnekleri daha sonra, SDS-PAGE ile analiz edildi ve bunların oligomerizasyon durumunu değerlendirmek için 17 immün edilir durdurulmuştur. Bu oligomerizasyon başlatmadığı da çapraz bağlama not ancak sadece önceden varolan protein kompleksleri arasında sabit köprüler dönüşmesine neden olabilir. Çapraz bağlama deneyleri gerçekleştirilmesi önemli hususlar çapraz bağlayıcı, konsantrasyonu ve reaksiyon süresi 19,20 seçimi bulunmaktadır.
Protein Homo-oligomer oluşumu transkripsiyon faktörleri, enzimler, iyon kanalları ve reseptörleriyle 25,26 aktivitesini düzenleyen bir temel biyolojik bir süreçtir. Önemlisi, protein oligomerizasyon da nörodejenerasyon ve aritmojenik kalp hastalığı 4,27 dahil patolojik etkileri vardır. Bu makalede açıklanan yöntemler, protein öz dernek ve oligomerizasyon aracılık etki-alanı etkileşimlerini tanımlamak için kullanılır. Aşağıda, her protokol dahilinde kritik adımlar işaret ve biz önemli hususlar, sınırlamalar ve sorun giderme tartışmak.
Y2H sistemi potansiyel etkileşimli protein nedeniyle nispeten yüksek verimli tarama ortakları, kullanım kolaylığı ve yüksek oranda yeniden üretilebilir sonuçlar taranması ilk olarak kullanılabilir. Y2H prosedürler standart (plaka veya çalkalayıcı) kuvöz ve oda çevreleme tesisleri ile bir mikrobiyoloji laboratuvarında yürütülmektedir. fr kullanımıβ-Gal deneylerinde iyi sonuçlar için, taze (eski 5 güne kadar) maya kolonileri yetiştirilen (adım 1.2.3) kullanılması gerektiğini, oysa eshly hazırlanan kompetan hücreler (adım 1.1.8), yüksek verim maya dönüşüm için kritik öneme sahiptir. GAL4 ve / veya ek / alternatif muhabir genler dışındaki transkripsiyon faktörlerine dayalı sistemler mevcuttur ve bu nedenle yem ve av plazmidler uygun Y2H suşu ile uyumlu olmalıdır.
Bazı türler HIS3 raportör geninin 7,8 herhangi konstitütif ekspresyonunu bastırmak için, 3-amino-1,2,4-triazol, HIS3 proteininin rekabetçi inhibitörün varlığında kültürlenen olmalıdır. Yem ve hedef füzyon proteinlerinin ekspresyonu 17 immunoblotting doğrulanmalıdır. durumda yem / av füzyon proteinleri, maya için toksik, daha kabul edilebilir protein seviyeleri yem / av sentezleme farklı promotör ile tahrik edilir, farklı vektörler içinde klonlanması ile elde edilebilir. Bundan başka, t sağlamak için gereklidirşapka yem / av füzyon proteinleri özerk bir raportör gen aktivitesini göstermek yok. Özerk raportör gen aktivasyonu ya da iki test edilen proteinlerin GAL4 DNA-BD ve AD füzyonlarının değiştirerek sorumlu bölgeyi kaldırmak için yapıyı değiştirerek tarafından kurtarıldı edilebilir. hücre içi membran bölümlerinde yanlış katlanmasına ya da füzyon proteinlerinin mislocalization neden olabilir, çünkü Ayrıca, zar-ötesi alanlar daha yem / av yapılardan atlanmıştır. Gerçekten de, Y2H sistemin en büyük dezavantajı yem ve hedef proteinler-yanlış pozitif ya da yanlış negatif etkileşimleri 6-9 sonuçlanan belirli bir post-translasyonel modifikasyonlar yoksun uzaklıkta fizyolojik hücre altı konumdan ve potansiyel olarak maya çekirdekte lokalize olmasıdır .
Memeli heterolog sentezleme sistemleri konformasyon, post-translasyonel modifikasyonlar ve hücre içi lokalizasyonu açısından memeli bütün zar proteinleri çalışma için daha uygundur.En yaygın olarak kullanılan hücre transfeksiyonu yöntemlerden biri esas olarak en az ekipman, kalsiyum fosfat çökeltme ve reaktifler 11,15 gerektirir. Alternatif yöntemler, yani elektroporasyon, lipozomlar, katyonik lipidler ve polimerleri, hücre hattına bağlı olarak daha yüksek transfeksiyon verimi elde ve kullanılmış oluşturabilirler. Genel olarak, transfeksiyon verimliliğini etkileyen başlıca faktörler plazmid DNA kalitesi ve hücre sağlığı / canlılığı bulunmaktadır. En yüksek saflıkta (arasında 260nm / 280nm absorbans oranı ~ 1.8) ve aktif olarak bölünen hücrelerin plazmid DNA kullanıldığında en iyi sonuçlar elde edilir. Yabancı DNA'yı alma yeteneği ortamı 11 maruz kalan hücre yüzey alanı ile ilgili olduğu için,% 70 izdiham (aşama 2.1.2) – Hücreler bu nedenle en fazla 60 transfekte olmalıdır. Ayrıca, transfeksiyon (aşama 2.1.3) süresince kültür ortamında antibiyotik dahil artan hücre ölümü 15 nedeniyle tavsiye edilmez.
Fkalsiyum fosfat 2x HBS çözeltisi (adım 2.1.1) özellikle dikkatli hazırlanması ve (tam 7.05 kadar) pH ayarlaması yağış ve plazmid DNA / kalsiyum / kuvvetli karıştırma (adım 2.1.5) ile fosfat komplekslerinin doğru oluşum ya da yüksek verimli transfeksiyon için kritik bir adım. Tipik olarak, 24 içinde geçici transfeksiyon zirveleri ile protein ekspresyonu – 72 saat.
Hücreler hasat edildikten sonra, daha sonraki işlemler proteaz aktivitesini azaltmak için 4 ° C sıcaklıkta yapılması gerekir, ve proteaz inhibitörlerinin ilave edilmesi tavsiye edilir. Hücre homojenleştirme kromozomal DNA solüsyonu viskozitesini arttırır ve spesifik olmayan geliştirmek çünkü, çekirdeklerini uzaklaştırmak üzere bir santrifüjleme aşaması takip edilmelidir. Bu durumda, bir izo-ozmotik bir tampon maddesi içinde mekanik yollarla homojenleştirme, genellikle (0.3 M) sükroz veya (150 mM) NaCl içinde tercih edilir. Genel olarak, sakroz-esaslı tamponlar, protein stabilitesini arttırmak ve potansiyel doğal olmayan bir protein agregasyonunu azaltmak için bilinen, ancak p nedeniyleProtein yüzeyinde başvuru hidrasyon, elektrostatik protein-protein etkileşimleri tercih edilmektedir. Bunun tersine, tuz bazlı tamponlar böylece daha fazla hidrofobik bazlı etkileşimleri 28 doğru bir eğilimi olan, proteinin yüzeyi üzerinde yüklü amino asit yan gruplarının net yükü etkilemektedir.
Eş IP özellikle doğal doku protein-protein etkileşimlerini belirlemek için en yaygın olarak kullanılan biyokimyasal deneyidir. Bu dezavantajı IP kullanımı ve 10,16,18 immün için geçerli son derece spesifik antikorlar için bir gerekliliktir. Bu nedenle, yeniden birleştirici proteinler, sıklıkla bir peptid epitopu ile etiketlenmiş, örn., Influenza hemaglutinin (YPYDVPDYA) ya da insan Myc'nin (EQKLISEEDL), bunun için yüksek affiniteli spesifik antikorlar ticari olarak temin edilebilmektedir. İstenirse, imüno antikor kimyasal ko-Çöken pr gizleyebilir immünoblotting aşamasında olan elüsyon ve algılama önlemek için Protein-A reçine üzerine konjuge edilebilirotein 16; Bunu başarmak için, biz başarılı kimyasal çapraz bağlayıcı 3,3'-ditiyobis (sulfosuccinimidylpropionate) 24 kullandık. Uygun bir deterjan IP tampon maddesi dahil edilir ve homojenize hücrelerin çözünmeyen malzeme spesifik olmayan bağlanma (aşama 3.1.3) en aza indirmek için, santrifüj ile çıkarılır zorunludur. esasen bağlayıcı olmayan spesifik azaltacaktır güçlü deterjanlar ve / veya yüksek konsantrasyonlarda değil, aynı zamanda X ortadan kaldırmak olabilir: seçim ve deterjan konsantrasyonu önemli konuları olan zayıf bir etkileşim görülebilir izin verebilir Y proteini etkileşim, düşük konsantrasyonlarda veya hafif deterjan oysa ama olabilir aşırı spesifik olmayan bağlanma ile sonuçlanabilir. .% 1 konsantrasyonda – orta derecede güçlü deterjanlar, örneğin Triton X-100 0.5 de tercih edilir. Bundan başka, spesifik olmayan bağlanma nötr protein azaltmak için (örneğin, 100 ug / ml'de inek serum albümini), IP tampon maddesi dahil edilebilir, ve / veya hücre lisatı-Cleare ön edilebilirsadece protein-bir reçine ile inkübasyondan önce d. yıkama sayısı X için optimize edilmelidir: Y çifti test, IP tampon (adım 3.1.9) ile tipik olarak üç 10 dakika yıkar. Her durumda, imüno antikoru olmayan bağışıklık IgG ile birlikte bir IP her zaman bu negatif kontrol olarak (aşama 3.1.6) hizmet paralel işlenmelidir.
Kimyasal zıt-bağlantı en önemli avantajı, protein homo-oligomer stoikiometrik bileşimine bilgilendirmesidir. Hiçbir özel ekipman gerektirir ve etkileşen proteinlerin 19,20 arasındaki termal ve kimyasal olarak dengeli çapraz bağlantılar oluşturur, çünkü Glutaraldehit yaygın olarak kullanılan bir çapraz bağlayıcıdır. bunlar kimyasal reaksiyonu söndürmek çünkü serbest amino grupları olan bileşikler tahlil tampon (aşama 3.2.1) ihmal edilmelidir. Glutaraldehit konsantrasyonu ve reaksiyon süresi de (aşama 3.2.4) Çevrede oligomerik protein kompleksi için optimize edilmelidir. Bu teknik, especi büyük dezavantajıbütün hücre preparatları üzerinde gerçekleştirilen ally zaman biyolojik önemi eksikliği yapay protein agregatları elde olabilir kimyasal reaksiyonun özgün olmaması yatmaktadır.
In vivo olarak alternatif (örn., Flüoresan rezonans enerji transferi, iki molekül flüoresan veya lüminesans tamamlama) ve in vitro teknikleri (örn., Boy dışlama kromatografisi, analitik ultrasantrifügasyon, izotermal titrasyon kalorimetrisi) proteini kendi içinde birleşmeye ve değerlendirme karakterizasyonu için kullanılabilir oligomerizasyon stokiyometri 29,30 arasında. Her yöntemin kendine özgü avantajları ve dezavantajları vardır, ve protein arıtma / kararlılık ve ekipmanlar / reaktif durumuna bağlı olarak özel bir protein çalışmaları için daha uygun olabilir. ayrıntılı olarak, yani Y2H, CO-IP ve çapraz bağlama burada tarif edilen üç tamamlayıcı yöntemler, RyR2 homo-oligomer için ikna edici bir kanıt sağlamak üzere kombinasyon halinde kullanılmaktadırizolasyon ve canlı bir hücrenin içinde r oluşumu.
The authors have nothing to disclose.
Bu çalışma SZ (FS / 08/063 ve FS / 15/30/31494) İngiliz Kalp Vakfı Bursu ile desteklenmiştir.
1. PART 1 yeast two-hybrid | |||
Plate incubator | Hereaus | B6120 | Used at 30°C |
Orbital shaker incubator | New Brunswick Scientific | INNOVA 4300 | Used at 30°C with shaking at 230-250 rpm |
Spectrophotometer | Perkin Elmer | Lambda Bio+ | To measure OD600 of yeast culture; to measure Absorbance at 420 nm in liquid b-Gal assay |
Matchmaker Two-Hybrid System 2 Kit | Takara Clontech | K1604-1 | Contains bait vector pGBKT7, prey vector pACT2 and yeast strain Y190 |
Yeast Nitrogen Base | Sigma-Aldrich | Y0626 | To prepare minimal SD growh medium |
Dropout supplement lacking leucine and tryptophan | Sigma-Aldrich | Y0750 | To prepare minimal SD growh medium |
Dropout supplement lacking leucine, tryptophan, histidine | Sigma-Aldrich | Y2001 | To prepare minimal SD growh medium |
Herring testes carrier DNA | Takara Clontech | 630440 | For yeast transformation |
Whatman filter paper Grade 5 | Sigma-Aldrich | WHA1005070 | for use in colony-lift filter paper b-Gal assay |
X-Gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside) | Sigma-Aldrich | B4252 | for use in colony-lift filter paper b-Gal assay |
ONPG (o-nitrophenyl-β-D-galactopyranoside) | Sigma-Aldrich | N1127 | for use in liquid b-Gal assay |
PART 2. Protein expression in a mammalian cell line | |||
HEK293 cell line | ATCC | ATCC® CRL-1573™ | |
Humidified incubator (5% CO2, 37 °C) | SANYO | MCO-18AIC | To culture mammalian cells |
DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's medium) | Invitrogen (ThermoFisher) | 41966 | To prepare growth medium for mammalian cells |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen (ThermoFisher) | 10500 | To prepare growth medium for mammalian cells |
Glass beads | Sigma-Aldrich | G8772 | To homogenise cells |
Needle 23G (0.6 x 30mm) | BD Microlance | 300700 | To homogenise cells |
Protease inhibitor cocktail (Complete) | Roche | 11873508001 | To prevent proteolysis |
PART 3. In vitro biochemical methods | |||
Mini-PROTEAN Tetra Cell (SDS-PAGE system) | Bio-Rad | 1658000EDU | For polyacrylamide gel electrophoresis |
Trans-Blot SD (Semi-dry transfer system) | Bio-Rad | 1703940 | For electrophoretic transfer |
Compact X-ray film processor | Xograph | X4 | For use in immunoblotting |
Glutaraldehyde | Sigma-Aldrich | G5882 | For use in chemical cross-linking |
Protein-A sepharose beads | GE Healthcare Life Sciences | 17-5280-01 | For use in co-IP assay |
Anti-HA (Y-11 rabbit polyclonal IgG) | Santa Cruz Biotechnology | sc-805 | For use in co-IP assay |
Non-immune rabbit IgG | Santa Cruz Biotechnology | sc-2027 | For use in co-IP assay |
Anti-cMyc (9E10 mouse monoclonal IgG) | Santa Cruz Biotechnology | sc-40 | For use in immunoblotting |
Anti-HA (16B12 mouse monoclonal IgG) | Covance | MMS-101P | For use in immunoblotting |
Anti-mouse IgG-HRP | Santa Cruz Biotechnology | sc-2005 | For use in immunoblotting |
Hyperfilm ECL | GE Healthcare Life Sciences | 28906836 | For use in immunoblotting |
ECL Western Blotting Substrate | Pierce (ThermoFisher) | 32106 | For use in immunoblotting |