غرس والتسجيلات مخطط كهربية اللاسلكية والجهد البصري المحرض في الجرذان واعية
Summary
وتبين لنا إجراءات الزرع وتسجيل جراحية لقياس الإشارات الكهربية البصرية من العين (مخطط كهربية) والدماغ (البصرية أثار المحتملة) في الفئران واعية، والتي هي أكثر مشابهة لحالة الإنسان حيث تجرى التسجيلات دون يفند التخدير.
Abstract
في مخطط كهربية كامل الحقل (أرج) وأثار احتمال البصرية (VEP) هي أدوات مفيدة لتقييم شبكية العين ووحدة المسار البصرية في كل من المختبرات والمرافق الصحية. حاليا، يتم تنفيذ القياسات أرج وVEP قبل السريرية مع التخدير لضمان مواضع الكهربائي مستقرة. ومع ذلك، فقد ثبت وجود جدا من التخدير لتلويث الاستجابات الفسيولوجية الطبيعية. للتغلب على هذه يفند التخدير، ونحن نطور منصة جديدة لفحص أرج وVEP في الفئران واعية. يتم زرع أقطاب كهربائية جراحيا دون conjunctivally على العين لفحص وأرج وepidurally على القشرة البصرية لقياس VEP. وهناك مجموعة من السعة وحساسية / ويعاير المعلمات توقيت لكل من أرج وVEP في زيادة الطاقات مضيئة. وتظهر إشارات أرج وVEP أن تكون مستقرة ويمكن تكرارها لمدة 4 أسابيع على الأقل زرع بعد الجراحة. هذه القدرة على تسجيل إشارات أرج وVEP بدون تخدير يفند في الصورة قبل السريريةيجب etting توفير الترجمة متفوقة على البيانات السريرية.
Introduction
وأرج وVEP هي مينيملي في أدوات الجسم الحي لتقييم سلامة مسارات شبكية العين والبصرية على التوالي في كل من مختبر وعيادة. في الميدان الكامل أرج غلة الموجي المميز الذي يمكن تقسيمها إلى مكونات مختلفة، مع كل عنصر يمثلون فئات مختلفة من الخلايا من 1،2 المسار الشبكية. يتكون الكلاسيكية كامل الحقل أرج الموجي من المنحدر الأولي السلبي (أ الموجة)، وهو ما ثبت لتمثيل مبصرة آخر نشاط ضوء التعرض 2-4. ويتبع الموجة من قبل الموجي ايجابي كبير (ب الموجة) والذي يعكس النشاط الكهربائي للشبكية العين المتوسطة، في الغالب الخلايا ON-القطبين 5-7. وعلاوة على ذلك، يمكن للمرء أن تختلف الطاقة مضيئة وبين التحفيز الفاصل الزمني لعزل مخروط من ردود قضيب 8.
فلاش VEP يمثل إمكانات الكهربائية من قشرة الدماغ والبصرية الجذعية ردا على التحفيز ضوء في شبكية العين9،10. هذا الموجي يمكن تقسيمها إلى مكونات المبكرة والمتأخرة، مع مكون في وقت مبكر مما يعكس نشاط الخلايا العصبية في مسار retino-geniculo مخططة 11-13 والراحل عنصر يمثلون معالجة القشرية التي أجريت في مختلف الصفائح V1 في الفئران 11،13. وبالتالي قياس وقت واحد من أرج وVEP بإرجاع تقييم شامل للهياكل المعنية في مسار البصرية.
حاليا، من أجل تسجيل الكهربية في الحيوانات، ويعمل التخدير لتمكين وضع مستقر من الأقطاب الكهربائية. وكانت هناك محاولات لقياس أرج وVEP في الفئران واعية 14-16 ولكن هذه الدراسات استخدمت الإعداد السلكية، التي يمكن أن تكون مرهقة وربما يؤدي إلى إجهاد الحيوان عن طريق تقييد حركة الحيوانات والسلوك الطبيعي 17. مع التطورات الحديثة في مجال التكنولوجيا اللاسلكية بما في ذلك تحسين التصغير وعمر البطارية، فمن الممكن الآن لتنفيذ نهج القياس عن بعد لأرج لد تسجيل VEP، وخفض الإجهاد المرتبطة التسجيلات السلكية وتحسين جدوى على المدى الطويل. وقد أثبتت زرع مستقرة داخليا بالكامل من تحقيقات القياس عن بعد لتكون ناجحة لرصد مزمن في درجة الحرارة وضغط الدم 18، النشاط 19 وكذلك كهربية 20. وهذا التقدم في التكنولوجيا تساعد أيضا مع التكرار والاستقرار التسجيلات واعية، وزيادة فائدة للمنبر للدراسات المزمنة.
Protocol
Representative Results
Discussion
ونظرا لطبيعة الغازية الحد الأدنى من الكهربية البصرية، وتجرى أرج وVEP التسجيلات في المرضى من البشر في ظل ظروف واعية وتتطلب سوى استخدام التخدير الموضعي لوضع قطب كهربائي. في المقابل، يجري الكهربية البصرية في النماذج الحيوانية التقليدية تحت التخدير العام لتمكين مستقر و?…
Offenlegungen
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
JC would like to acknowledge the David Hay Memorial Fund, The University of Melbourne for financial support in writing this manuscript. Funding for this project was provided by an ARC Linkage grant 100200129 (BVB, AJV, CTON).
Materials
| Bioamplifier | ADInstruments | ML 135 | Amplifies ERG and VEP signals |
| Carboxymethylcellulose sodium 1.0% | Allergan | CAS 0009000-11-7 | Maintain corneal hydration during surgery |
| Carprofen 0.5% | Pfizer Animal Health Group | CAS 53716-49-7 | Post-surgery analgesia, given with injectable saline for fluid replenishment |
| Chlorhexadine 0.5% | Orion Laboratories | 27411, 80085 | Disinfection of surgical instrument |
| Cyanoacrylate gel activator | RS components | 473-439 | Quickly dries cyanoacrylate gel |
| Cyanocrylate gel | RS components | 473-423 | Fix stainless screws to skull |
| Dental burr | Storz Instruments, Bausch and Lomb | E0824A | Miniature drill head of ~0.7mm diameter for making a small hole in the skull over each hemisphere to implant VEP screws |
| Drill | Bosch | Dremel 300 series | Automatic drill for trepanning |
| Enrofloxin | Troy Laboratories | Prophylactic antibiotic post surgey | |
| Ganzfeld integrating sphere | Photometric Solutions International | Custom designed light stimulator: 36 mm diameter, 13 cm aperture size | |
| Gauze swabs | Multigate Medical Products Pty Ltd | 57-100B | Dries surgical incision and exposed skull surface during surgery |
| Isoflurane 99.9% | Abbott Australasia Pty Ltd | CAS 26675-46-7 | Proprietory Name: Isoflo(TM) Inhalation anaaesthetic. Pharmaceutical-grade inhalation anesthetic mixed with oxygen gas for VEP electrode implant surgery |
| Kenacomb ointment | Aspen Pharma Pty Ltd | To reduce skin irritation and itching after surgery | |
| Luxeon LEDs | Phillips Lighting Co. | For light stimulation, twenty 5 watt and one 1 watt LEDs, controlled by Scope software | |
| Needle (macrosurgery) | World Precision Instruments | 501959 | for suturing abdominal and head surgery, used with 3-0 suture, eye needle, cutting edge 5/16 circle Size 1, 15mm |
| Needle holder (macrosurgery) | World Precision Instruments | 500224 | To hold needle during abdominal and head surgery |
| Needle holder (microsurgery) | World Precision Instruments | 555419NT | To hold needle during ocular surgery |
| Optiva catheter | Smiths Medical International LTD | 16 or 21 G | Guide corneal active electrodes from skull to conjunctiva |
| Povidone iodine 10% | Sanofi-Aventis | CAS 25655-41-8 | Proprietory name: Betadine, Antiseptic to prepare the shaved skin for surgery 10%, 500 mL |
| Powerlab data acquisition system | ADInstruments | ML 785 | Acquire signal from telemetry transmitter, paired to telemetry data converter |
| Proxymetacaine 0.5% | Alcon Laboratories | CAS 5875-06-9 | Topical ocular analgesia |
| Restrainer | cutom made | Front of the restrainer is tapered to minimize head movement, length can be adjusted to accommodate different rat length, overall diameter is 60 mm. | |
| Scapel blade | R.G. Medical Supplies | SNSM0206 | For surgical incision |
| Scissors (macrosurgery) | World Precision Instruments | 501225 | for cutting tissue on the abodmen and forhead |
| Scissors (microsurgery) | World Precision Instruments | 501232 | To dissect the conjunctiva for electrode attachment |
| Scope Software | ADInstruments | version 3.7.6 | Simultaneously triggers the stimulus via the ADI Powerlab system and collects data |
| Shaver | Oster | Golden A5 | Shave fur from surgical areas |
| Stainless streel screws | MicroFasteners | L001.003CS304 | 0.7 mm shaft diameter, 3 mm in length |
| Stereotaxic frame | David Kopf | Model 900 | A small animal stereotaxic instrument for locating the implantation landmarks on the skull |
| Surgical drape | Vital Medical Supplies | GM29-612EE | Ensure sterile enviornment during surgery |
| Suture (macrosurgery) | Ninbo medical needles | 3-0 | for suturing abdominal and head surgery, sterile silk braided, 60cm |
| Suture needle (microsurgery) | Ninbo medical needles | 8-0 or 9-0 | for ocular surgery including, suturing electrode to sclera and closing conjunctival wound, nylon suture, 3/8 circle 1×5, 30cm |
| Telemetry data converter | DataSciences International | R08 | allows telemetry signal to interface with data collection software |
| Telemetry Data Exchange Matrix | DataSciences International | Gathers data from transmitters, pair with receiver | |
| Telemetry data receiver | DataSciences International | RPC-1 | Receives telemetry data from transmitter |
| Telemetry transmitter | DataSciences International | F50-EEE | 3 channel telemetry transmitter |
| Tropicamide 0.5% | Alcon Laboratories | Iris dilation | |
| Tweezers (macrosurgery) | World Precision Instruments | 500092 | Manipulate tissues during abdominal and head surgery |
| Tweezers (microsurgery) | World Precision Instruments | 500342 | Manipulate tissues during ocular surgery |
Referenzen
- Frishman, L. J. . Origins of the Electroretinogram. , (2006).
- Granit, R. The components of the retinal action potential in mammals and their relation to the discharge in the optic nerve. J Physiol. 77, 207-239 (1933).
- Brown, K. T. The eclectroretinogram: its components and their origins. Vision Res. 8, 633-677 (1968).
- Brown, K. T., Murakami, M. Biphasic Form of the Early Receptor Potential of the Monkey Retina. Nature. 204, 739-740 (1964).
- Kline, R. P., Ripps, H., Dowling, J. E. Generation of b-wave currents in the skate retina. Proc Natl Acad Sci U S A. 75, 5727-5731 (1978).
- Krasowski, M. D., et al. Propofol and other intravenous anesthetics have sites of action on the gamma-aminobutyric acid type A receptor distinct from that for isoflurane. Mol Pharmacol. 53, 530-538 (1998).
- Stockton, R. A., Slaughter, M. M. B-wave of the electroretinogram. A reflection of ON bipolar cell activity. J Gen Physiol. 93, 101-122 (1989).
- Nixon, P. J., Bui, B. V., Armitage, J. A., Vingrys, A. J. The contribution of cone responses to rat electroretinograms. Clin Experiment Ophthalmol. 29, 193-196 (2001).
- Weinstein, G. W., Odom, J. V., Cavender, S. Visually evoked potentials and electroretinography in neurologic evaluation. Neurol Clin. 9, 225-242 (1991).
- Sand, T., Kvaloy, M. B., Wader, T., Hovdal, H. Evoked potential tests in clinical diagnosis. Tidsskr Nor Laegeforen. 133, 960-965 (2013).
- Brankack, J., Schober, W., Klingberg, F. Different laminar distribution of flash evoked potentials in cortical areas 17 and 18 b of freely moving rats. J Hirnforsch. 31, 525-533 (1990).
- Creel, D., Dustman, R. E., Beck, E. C. Intensity of flash illumination and the visually evoked potential of rats, guinea pigs and cats. Vision Res. 14, 725-729 (1974).
- Herr, D. W., Boyes, W. K., Dyer, R. S. Rat flash-evoked potential peak N160 amplitude: modulation by relative flash intensity. Physiol Behav. 49, 355-365 (1991).
- Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies. Neural Plast. 11, 241-250 (2004).
- Szabo-Salfay, O., et al. The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats. Brain Res Bull. 56, 7-14 (2001).
- Valjakka, A. The reflection of retinal light response information onto the superior colliculus in the rat. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 245, 1199-1210 (2007).
- Lapray, D., Bergeler, J., Dupont, E., Thews, O., Luhmann, H. J. A novel miniature telemetric system for recording EEG activity in freely moving rats. J Neurosci Methods. 168, 119-126 (2008).
- Lim, K., Burke, S. L., Armitage, J. A., Head, G. A. Comparison of blood pressure and sympathetic activity of rabbits in their home cage and the laboratory environment. Exp Physiol. 97, 1263-1271 (2012).
- Nguyen, C. T., Brain, P., Ivarsson, M. Comparing activity analyses for improved accuracy and sensitivity of drug detection. J Neurosci Methods. 204, 374-378 (2012).
- Ivarsson, M., Paterson, L. M., Hutson, P. H. Antidepressants and REM sleep in Wistar-Kyoto and Sprague-Dawley rats. Eur J Pharmacol. 522, 63-71 (2005).
- He, Z., Bui, B. V., Vingrys, A. J. The rate of functional recovery from acute IOP elevation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47, 4872-4880 (2006).
- Lamb, T. D., Pugh, E. N. A quantitative account of the activation steps involved in phototransduction in amphibian photoreceptors. J Physiol. 449, 719-758 (1992).
- Hood, D. C., Birch, D. G. Rod phototransduction in retinitis pigmentosa: estimation and interpretation of parameters derived from the rod a-wave. Invest Ophthalmol Vis Sci. 35, 2948-2961 (1994).
- Charng, J., et al. Conscious wireless electroretinogram and visual evoked potentials in rats. PLoS Onez. 8, e74172 (2013).
- Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmari, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 2083-2088 (2001).
- Meeren, H. K., Van Luijtelaar, E. L., Coenen, A. M. Cortical and thalamic visual evoked potentials during sleep-wake states and spike-wave discharges in the rat. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 108, 306-319 (1998).
- Nair, G., et al. Effects of common anesthetics on eye movement and electroretinogram. Doc Ophthalmol. 122, 163-176 (2011).
- Amouzadeh, H. R., Sangiah, S., Qualls, C. W., Cowell, R. L., Mauromoustakos, A. Xylazine-induced pulmonary edema in rats. Toxicol Appl Pharmacol. 108, 417-427 (1991).
- Charng, J., et al. Retinal electrophysiology is a viable preclinical biomarker for drug penetrance into the central nervous system. J Ophthalmol. , (2016).
