Distinct dendritic cell subsets exist as rare populations in lymphoid organs, and therefore are challenging to isolate in sufficient numbers and purity for immunological experiments. Here we describe a high efficiency, high yield method for isolation of all of the currently known major subsets of mouse splenic dendritic cells.
Le cellule dendritiche (DC) sono cellule professionali presentanti l'antigene principalmente responsabili per l'acquisizione, l'elaborazione e la presentazione di antigeni sulla presentanti l'antigene molecole di avviare l'immunità T-cellulo-mediata. Le cellule dendritiche possono essere separati in diversi sottoinsiemi fenotipico e funzionalmente eterogenee. Tre sottogruppi importanti delle cellule dendritiche della milza sono plasmacitoidi, cellule CD8α Pos e CD8α Neg. Le cellule dendritiche plasmacitoidi sono produttori naturali di interferone di tipo I e sono importanti per l'anti-virale immunità cellulo T. Il sottoinsieme CD8α Neg DC è specializzata per MHC di classe II presentazione dell'antigene ed è coinvolto nel centro di adescamento cellule T CD4. Il CD8α Pos DC sono i principali responsabili per la cross-presentazione di antigeni esogeni e priming delle cellule T CD8. I CD8α Pos DC hanno dimostrato di essere più efficace in occasione della presentazione degli antigeni glicolipidici da molecole CD1d ad un cel T specializzataL popolazione noto come T (iNKT), le cellule natural killer invarianti. La somministrazione di Flt-3 ligando aumenta la frequenza della migrazione dei progenitori delle cellule dendritiche dal midollo osseo, in ultima analisi, con conseguente espansione delle cellule dendritiche in organi linfoidi periferici in modelli murini. Abbiamo adattato questo modello per purificare un gran numero di cellule dendritiche funzionali per l'utilizzo in esperimenti di trasferimento di cellule per confrontare competenza in vivo di diversi sottoinsiemi DC.
Le cellule dendritiche (DC) sono stati scoperti quasi quarant'anni fa come il "grande stellate (dendron greco) cella" trovata negli organi linfoidi 1. Molti studi hanno dimostrato che le cellule dendritiche sono le uniche cellule che presentano l'antigene in grado di stimolare efficacemente le cellule T naive 2. Una delle principali funzioni di queste cellule è l'assorbimento e la presentazione di antigeni e la loro elaborazione efficiente e carico di questi su molecole presentanti l'antigene. In milza del mouse, DC può essere separato in plasmacitoidi e sottoinsiemi convenzionali. Le cellule dendritiche plasmacitoidi sono caratterizzati da una bassa espressione di CD11c e alti livelli di B220 e Gr-1. Essi sono anche positivo per il marcatore mPDCA1 superficie ed interferone di tipo I in risposta a pedaggio like receptor 9 (TLR9) ligandi secernono. I DC convenzionali sono alti per CD11c e MHC di classe II espressione. Essi possono essere suddivisi in tre sottogruppi distinti in base alla superficie espressione di marcatori fenotipici quali CD4, CD8α, DEC205, CD11b e delle cellule dendritiche del recettore inibitorio 2 (DCIR2, riconosciuto dal anticorpo 33D1) proteine 3,4. I CD8α Pos DC sono noti anche come CDC1, sono positivi per DEC205, ma negativo per i marcatori mieloidi, come CD11b e 33D1. Il CD8α Neg DC, chiamato anche CDC2, sono positivi per 33D1, CD11b e CD4, ma mancano DEC205. Il sottoinsieme negativo doppio (vale a dire, negativo sia per CD4 e CD8α) è relativamente rara, ed è negativo per DEC205 e 33D1. È il sottoinsieme almeno caratterizzati e può essere una forma meno differenziata di CD8α Neg DC.
Differenze fenotipiche nei diversi sottoinsiemi DC estendono anche alle loro funzioni in vivo. Il CD8α Neg DC sono altamente fagocitosi e si pensa di presentare l'antigene esogeno principalmente attraverso MHC di classe II a cellule T CD4 3. Al contrario, i CD8α Pos DC sono specializzati per la presentazione dell'antigene proteina solubile in MHC di classe Iin un meccanismo chiamato cross-presentazione. Il risultato di cross-presentazione dipende dallo stato di attivazione di queste cellule dendritiche 5, e può sia portare alla espansione delle cellule T citotossiche (CTL) o lo sviluppo di cellule T regolatorie 6 2,7. Targeting di antigene di CD8α Pos DC utilizzando i risultati di consegna anti-DEC205-mediata da anticorpi in gran parte nella eliminazione delle cellule T 8, mentre la presentazione di antigeni derivati da cellule apoptotiche infettate induce una forte risposta CTL 9.
Oltre al riconoscimento di antigeni peptidici, il sistema immunitario dei mammiferi è evoluto per riconoscere lipidico e antigeni glicolipidi. Questi antigeni sono presentati da molecole CD1, che sono MHC di classe proteine di superficie cellulare i-like che esistono in molteplici forme legate in vari mammiferi. Nei topi, un unico tipo di molecola altamente conservata CD1 chiamato CD1d è responsabile per la presentazione di antigeni glicolipidi 10. Il sindaco popolazione di cellule T che riconoscono CD1d / complessi glicolipidici è chiamato cellule NKT invarianti (cellule iNKT). Queste cellule esprimono un recettore semi-invariante delle cellule T (TCR) composto da una catena TCRα invariante che è associato con catene TCRβ che hanno limitato la diversità 11. A differenza delle cellule T convenzionali che hanno bisogno di proliferare e differenziarsi per diventare cellule T effettrici attivate, le cellule iNKT esistono come una popolazione effettrici e iniziano a reagire rapidamente dopo la somministrazione glycolipid 12. L'identificazione di cellule che presentano l'antigene fisiologicamente rilevanti dei lipidi è un'area attiva di ricerca, e di diversi tipi di cellule distinte, come B cellule, i macrofagi e le cellule dendritiche sono state proposte per svolgere questa funzione. Tuttavia, è stato dimostrato che il sottoinsieme CD8α Pos delle DC è la cellula primaria mediazione captazione e presentazione di antigeni lipidici alle cellule del mouse iNKT 13 e glycolipid mediata cross-priming di cellule T CD8 14.
ove_content "> Per confrontare l'efficienza di presentazione dell'antigene da diverse cellule presentanti l'antigene, un approccio semplice è quello di trasferire diversi tipi di APC purificate pulsate con quantità equivalenti di antigene in host naive. esperimenti di trasferimento cellulare di questo tipo sono spesso eseguite per studi immunologici. Tuttavia, l'esecuzione di studi trasferimento con ex vivo antigene trattata DC è impegnativo, poiché queste cellule esistono popolazioni come rare in organi linfoidi in cui costituiscono meno del 2% delle cellule totali 15. è pertanto necessario migliorare lo sviluppo di queste cellule in animali donatori per aumentare l'efficienza di protocolli di isolamento.E 'noto che il linfoide comune e progenitori mieloidi comuni, che sono necessari per la generazione di PDC CD8 Pos e sottoinsiemi CD8 Neg DC, fms legati espresso recettore tirosin-chinasi 3 (Flt-3). Al momento in vivo Flt-3 ligando (Flt-3L) amministrazione, emigratione di Flt-3 che esprimono cellule progenitrici del midollo osseo è aumentato, con conseguente aumento della semina organi linfoidi periferici e l'espansione della loro progenie matura DC 16. L'espressione di Flt-3 è perso durante impegno per la B, i percorsi di differenziazione delle cellule T o NK. Pertanto, solo alterazioni minime sono osservati in queste cellule con la somministrazione Flt-3L. Espansione simile nelle popolazioni DC è osservata in topi portatori di tumori generati da impianto di una linea di cellule di melanoma B16-secernenti murino Flt-3L, che fornisce un metodo semplice ed economico per fornire livelli sistemici sostenuti di Flt-3L 17,18. Usando questo approccio, abbiamo sviluppato un protocollo basato su l'impianto di cellule B16-melanoma secernenti Flt-3L per stimolare l'espansione di tutte le normali sottoinsiemi DC nella milza del mouse, quindi aumentando notevolmente le rese di queste cellule che possono essere isolate per esperimenti successivi . Abbiamo costantemente troviamo che entro 10 – 14 giorni dopo im sottocutaneopiantagione del tumore secernente Flt-3, i topi sviluppano splenomegalia con marcata arricchimento delle DC per costituire 40 – 60% delle cellule totali milza. Da queste milza, diversi sottoinsiemi DC possono essere isolati con elevata purezza utilizzando standard di kit di purificazione delle cellule disponibili in commercio che utilizzano marcatori fenotipici specifici sottoinsieme.
Le cellule dendritiche sono accettati per essere il principale antigene professionale, presentando le cellule coinvolte nella adescamento di risposte delle cellule T. La loro funzione principale è quella di rilevare il microambiente del tessuto riprendendo e l'elaborazione di antigeni per la presentazione di cellule T. Al fine di studiare la funzione di specifiche sottopopolazioni DC, questi devono essere isolati in numero sufficiente usando un approccio che mantiene loro normale fenotipo e funzioni. La maggior par…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto da NIH / NIAID concessione AI45889 a SAP di citometria a flusso studi sono stati effettuati utilizzando FACS strutture di base supportati dal Einstein Cancer Center (NIH / NCI CA013330) e Centro per l'AIDS Research (NIH / NIAID AI51519).
0.05% Trypsin-EDTA | Life Technologies, Gibco | 25300-054 | |
Isoflurane | Sigma-Aldrich | CDS019936-250MG | |
Collagenase D | Roche Diagnostics | 11088858001 | |
DNase I (dry powder) | QIAGEN | 79254 | |
200 proof ethanol | Thermo Fisher Scientific | 9-6705-004-220 | Used to prepare 70% ethanol |
RBC lysis buffer | Sigma-Aldrich | R7757 | |
RPMI-1640 medium with L-glutamine | Life Technologies, Gibco | 11875-119 | |
DMEM medium with L-glutamine | Life Technologies, Gibco | 11995-073 | |
200 mM L-glutamine | Life Technologies | 25030081 | |
MEM non-essential amino acids | Life Technologies, Gibco | 11140-050 | |
MEM essential amino acids | Life Technologies | 11130-051 | |
β-mercaptoethanol | Life Technologies, Invitrogen | 21985-023 | |
Sodium pyruvate | Life Technologies | 11360-070 | |
HEPES | Life Technologies, Invitrogen | 15630 | |
Phosphate buffered saline (PBS Ca2+ and Mg2+ free pH 7.2) | Life Technologies, Invitrogen | 20012-050 | |
Dulbecco’s PBS (DPBS with Ca2+ and Mg2+) | Life Technologies, Gibco | 14040-182 | |
0.5 M Ethylenediaminetetraacetate (EDTA) solution | Life Technologies | 15575-020 | |
Bovine serum albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A2153 | |
Fetal calf serum | Atlanta Biologicals | S11050 | |
Penicillin/streptomycin | Life Technologies, Invitrogen | 15140-163 | |
Trypan blue (dry powder) | Sigma-Aldrich | T6146-5G | Prepare 0.08% with PBS |
Plasmacytoid Dendritic Cell Isolation Kit II, mouse | Miltenyi Biotech | 130-092-786 | |
Magnetic beads conjugated with anti-mouse CD11c | Miltenyi Biotech | 130-152-001 | |
CD8αPos mouse DC isolation kit | Miltenyi Biotech | 130-091-169 | |
Fc-gamma receptor blocking antibody (Clone 2.4G2) | BD Biosciences | 553141 | |
Anti-mouse CD11c-FITC | BD Biosciences | 553801 | |
Anti-mouse CD8α-PerCP | BD Biosciences | 553036 | |
Anti-mouse B220-PE | BD Biosciences | 553090 | |
1 ml syringes | BD | 26048 | |
23 G1 needle | BD | 305145 | |
100 mm Petri dishes | Thermo Fisher Scientific | 875712 | |
Surgical instruments | Kent Scientific | INSMOUSEKIT | |
Cell strainer (70 µm | BD | 352350 | |
Large Petri plates | Thermo Fisher Scientific | FB0875712 | |
Vacuum filtration system (500 ml(0.22 um | Corning | 431097 | |
LS columns | Miltenyi | 130-042-401 | |
Magnetic stand MACS separator | Miltenyi Biotec | 130-042-302 | |
Wide-bore 200 μl pipette tips | PerkinElmer | 111623 | |
Corning ultra-low attachment 96-well plates | Corning | CLS3474-24EA | |
6-8 week old female C57BL/6 mice | Jackson Research Laboratories, Jax | ||
Murine B16.Flt3L melanoma cell line | described by Mach et al. ,2000 | ||
Serum free DMEM and RPMI media | |||
500 ml DMEM with L-glutamine, or 500 ml RPMI-1640 with L-glutamine 5 ml MEM nonessential amino acids (100x, 10 mM) 5 ml HEPES Buffer (1 M) 5 ml L-glutamine (200 mM) 0.5 ml 2-mercaptoethanol (5.5 x 10-2 M) |
Mix all the ingredients in a biosafety cabinet with either DMEM or RPMI media depending on your need. Filter sterilize the media by passing through a 0.22 µm vacuum filtration system. | ||
Complete RPMI and DMEM media | Add 50 ml of heat inactivated fetal calf serum to serum free RPMI or DMEM media to obtain complete media. | ||
MACS buffer: | Add 2 ml of 0.5 M EDTA and 10 ml of heat inactivated fetal calf serum to 500 ml of Phosphate-buffered saline (PBS, Ca2+ and Mg2+ Free, pH 7.2) and 2 ug/ml 2.4G2 (Fc-Block antibody). | ||
FACS staining buffer | Dissolve sodium azide to 0.05% (0.25 g per 500 ml) in MACS buffer to obtain FACS staining buffer | ||
10x Collagenase D and DNase 1 stock solution Dissolve 1 g of collagenase D and 0.2 ml of DNase 1 stock (1 mg/ml, 100x) in 20 ml of PBS containing Ca++ and Mg++ to obtain a solution of approximately 1,000- |
2,000 Units of collagenase activity per ml This 10x stock solution can be prepared ahead of time and stored at -20 °C for several weeks. Dilute 1 ml of this with 9 ml of serum free RPMI immediately before use |