Summary

Feeder-fria Derivering av Melanocyter från Human pluripotenta stamceller

Published: March 03, 2016
doi:

Summary

Detta arbete beskriver ett in vitro differentiering protokoll för att producera pigmente, mogna melanocyter från humana pluripotenta stamceller via en neural crest och melanoblast mellansteg med hjälp av en matarfria, 25 dagars protokoll.

Abstract

Human pluripotent stem cells (hPSCs) represent a platform to study human development in vitro under both normal and disease conditions. Researchers can direct the differentiation of hPSCs into the cell type of interest by manipulating the culture conditions to recapitulate signals seen during development. One such cell type is the melanocyte, a pigment-producing cell of neural crest (NC) origin responsible for protecting the skin against UV irradiation. This protocol presents an extension of a currently available in vitro Neural Crest differentiation protocol from hPSCs to further differentiate NC into fully pigmented melanocytes. Melanocyte precursors can be enriched from the Neural Crest protocol via a timed exposure to activators of WNT, BMP, and EDN3 signaling under dual-SMAD-inhibition conditions. The resultant melanocyte precursors are then purified and matured into fully pigmented melanocytes by culture in a selective medium. The resultant melanocytes are fully pigmented and stain appropriately for proteins characteristic of mature melanocytes.

Introduction

Humana pluripotenta stamceller (hPSCs) tillhandahålla en plattform för att efterlikna normal differentiering i en skalbar mode för sjukdom modellering, drug screening och cellersättningsterapi 1-6. Av särskilt intresse, hPSCs öppnar vägar för att studera svåra att isolera eller sällsynta / gående celltyper där patientprover är knappa. Vidare inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) göra det möjligt för forskare att studera utveckling och sjukdom modellering i en patient specifikt sätt att riva unika mekanismer 1,2,7-11. Det tidigare publicerade protokoll för differentiering av melanocyter från hPSCs kräver upp till 6 veckor av differentieringar och involverar odling av celler med konditionerat medium från L-Wnt3a cellerna 12. Protokollet först presenterades av Mica et al. Och beskrivs här producerar pigmenterade celler i tre veckor och tar bort den tvetydighet och inkonsekvenser i samband med konditionerat medium.

melanocyter are härrör från neural crest, en vandrande population av celler som är unika för ryggradsdjur. Neurallisten definieras under gastrulation och representerar en population av celler vid kanten av det neurala plattan, som gränsar mellan neurala och icke-neurala ektoderm. Under neurulation, utvecklas nervvävnad från ett neuralt platta för att bilda neurala veck, som konvergerar vid ryggens mittlinje resulterar i neuralröret 13,14.

Neurallisten celler ta sig ur takplåten av neuralröret, mittemot notochord, och genomgår en epitelial till mesenkymala övergång innan den vandrar bort för att ge upphov till en mångskiftande population av differentierade celler. Öden de crest celler definieras delvis av den anatomiska lokaliseringen av takplåten längs kroppsaxeln hos embryot. Neurallisten cellderivat inkluderar härstamningar som är karakteristiska för både mesoderm (glatta muskelceller, osteoblaster, adipocyter, kondrocyter) och ektoderm celler (melanocyter, Schwann calnar, neuroner) 14. Neurallisten stamceller uppreglera transkriptionsfaktom SOX10 och kan isoleras genom fluorescensaktiverad cellsortering med antikroppar mot p75 och HNK1.

Neurallisten celler ödesbestämd att bli melanocyter passera genom en melanoblast scen och uppreglera KIT och MITF (mikroftalmi-associerad transkriptionsfaktor) 6,21 MITF är en mästare regulator av melanocyt utveckling och är en transkriptionsfaktor som ansvarar för att kontrollera en stor del av melanocyt utveckling 22- 24. Mänskliga melanoblasts migrera till basalskiktet av epidermis där de bor antingen i håret bula eller omgiven av keratinocyter i epidermis (som bildar pigmente enheter) för att tjäna som föregångare till den mogna, pigmenterade melanocyter. Differentieringen och mognad av melanoblasts i pigmenterade melanocyter sker samtidigt med koloniseringen av hårsäcken och uttryck av melanin produktionskedja (TYRP1, TYR, OCA2 ochPMEL) 25,26.

Isolera humana melanocyter och melanoblasts från patienter är dyrt, svårt och begränsande i kvantitet. Detta protokoll gör det möjligt för forskare att skilja hPSCs (inducerad eller embryonala) i melanocyter eller melanocytstimulerande prekursorer i en väl definierad, snabb, reproducerbar, skalbar och billig metod utan cellsortering. Protokollet användes tidigare för att identifiera sjukdomsspecifika brister när differentiera iPSCs från patienter med pigmentstörningar.

Protocol

OBS: melanocyt protokoll som beskrivs här visades först av Mica et al. 1. Beredning av odlingsmedium, Belagd Porslin och underhåll av hPSCs Medium Framställning Obs: Lagra alla medium vid 4 ° C i mörker i upp till två veckor. Filtrera all medium för sterilisering. Förbereda DMEM / 10% FBS. Blanda 885 ml DMEM, 100 ml FBS, 10 ml Pen / Strep och 5 ml L-glutamin. Filter för sterilisering. Förbered hESC-medium. Blanda 800 ml DMEM / F12, 200 ml KSR, …

Representative Results

Detta protokoll ger en metod för att härleda fullt pigmenterade, mogna melanocyter från hPSCs i en matare fritt, kostnadseffektivt och reproducerbart in vitro sätt. I motsats till den tidigare fastställda Fang et al. Protokoll för hPSC-härledda melanocyter, betyder den skisserade protokollet inte kräver konditionerat medium och minskar tidsåtgången. Protokollet Fang et al. Användes konditionerat medium från en WNT3A-producerande murin cellinje och t…

Discussion

För framgångsrik differentiering av melanocyter från hPSCs följande förslag bör beaktas. Först och främst är det viktigt att arbeta under sterila odlingsbetingelser vid alla tillfällen. Dessutom är det viktigt att börja med pluripotenta, fullt odifferentierade hPSCs; om utgångspopulationen innehåller differentierade celler utbytet kommer alltid sjunka eftersom föroreningarna inte kan riktas mot melanocyter och kan även ytterligare störa korrekt differentierande cellerna.

Fö…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av ett stipendium för melanom forskare från Joanna M. Nicolay Foundation och av National Institutes of Health enligt Ruth L. Kirschstein National Research Service Award F31. Detta arbete stöddes ytterligare genom bidrag från NYSTEM och Tri-institutionella stamcells initiativ (Starr Foundation).

Materials

Accutase Innovative Cell Technologies AT104
apo human transferrin Sigma T1147
Ascorbic Acid (L-AA) Sigma A4034 100 mM
B27 (B27 Supplement) Invitrogen 17504044
β-Mercaptoethanol Gibco-Life Technologies 21985-023 10 mg/ml
BMP4 R&D Systems 314-bp
CHIR99021 Tocris-R&D Systems 4423 6 mM
Cholera toxin Sigma C8052 50 mg/ml
cAMP (cyclicAMP) Sigma D0627 100 mM
Dexamethasone Sigma D2915-100MG 50 μM
DMEM – Dulbecco's Modified Eagle Medium Gibco-Life Technologies 11985-092
DMEM/F12 – Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12 Gibco-Life Technologies 1133–032
DMEM/F12 powder Invitrogen 12500-096
EDN3 (Endothelin-3, human) American Peptide Company 88-5-10B 100 μM
Fibronectin BD Biosciences 356008 200 μg/ml
gelatin (PBS without Mg/Ca) in house 0.1% in PBS
Glucose Sigma G7021
Human insulin Sigma I2643
ITS+ Universal Culture Supplement Premix  BD Biosciences 354352
KSR (Knockout Serum Replacement) Gibco-Life Technologies 10828-028
Knockout DMEM Gibco-Life Technologies 10829-018
L-Glutamine Gibco-Life Technologies 25030-081
LDN193189 Stemgent 04-0074 100 mM
Low glucose DMEM Invitrogen 11885-084
Matrigel matrix BD Biosciences 354234 Dissolve 1:20 in DMEM/F12
MCDB201 Medium Sigma M6770
MEM minimum essential amino acids solution Gibco-Life Technologies 11140-080
Mouse embryonic fibroblasts (7 million cells/vial) GlobalStem GSC-8105M
Mouse Laminin-I R&D Systems 3400-010-01 1 mg/ml
Neurobasal medium Invitrogen 21103049
Penicilin/Streptomycin Gibco-Life Technologies 15140-122 10,000 U/ml
Poly-L Omithin hydrobromide Sigma P3655 15 mg/ml 
Progesterone Sigma P8783 0.032g in 100ml 100% ethanol
Putrescine dihydrochloride Sigma P5780
FGF2 (Recombinant human FGF basic) R&D Systems 233-FB-001MG/CF 10 mg/ml
SB431542 Tocris-R&D Systems 1814 10 mM
Selenite Sigma S5261
Sodium Bicarbonate Sigma S5761
SCF (Stem Cell Factor, recombinant Human)  Peprotech Inc. 300-07 50 μg/ml
TYRP1 (G-17) Antibody Santa Cruz 10443 1:200
TYRP2 Antibody Abcam 74073 1:200
Trypsin-EDTA (0.05%) Gibco-Life Technologies 25300-054
Y-27632 dihydrochloride Tocris-R&D Systems 1254 10 mM

Referenzen

  1. Ebert, A. D., et al. Induced pluripotent stem cells from a spinal muscular atrophy patient. Nature. 457, 277-280 (2009).
  2. Lee, G., et al. Modelling pathogenesis and treatment of familial dysautonomia using patient-specific iPSCs. Nature. 461, 402-406 (2009).
  3. Lee, G., et al. Large-scale screening using familial dysautonomia induced pluripotent stem cells identifies compounds that rescue IKBKAP expression. Nat biotechnol. 30, 1244-1248 (2012).
  4. Lee, G., Studer, L. Induced pluripotent stem cell technology for the study of human disease. Nat methods. 7, 25-27 (2010).
  5. Zimmer, B., et al. Evaluation of developmental toxicants and signaling pathways in a functional test based on the migration of human neural crest cells. Environ health persp. 120, 1116-1122 (2012).
  6. Mica, Y., Lee, G., Chambers, S. M., Tomishima, M. J., Studer, L. Modeling neural crest induction, melanocyte specification, and disease-related pigmentation defects in hESCs and patient-specific iPSCs. Cell rep. 3, 1140-1152 (2013).
  7. Mariani, J., et al. FOXG1-Dependent Dysregulation of GABA/Glutamate Neuron Differentiation in Autism Spectrum Disorders. Cell. 162, 375-390 (2015).
  8. Doulatov, S., et al. Modeling Diamond Blackfan Anemia in Vivo Using Human Induced Pluripotent Stem Cells. Blood. 124, (2014).
  9. Cherry, A. B. C., Daley, G. Q. Reprogrammed Cells for Disease Modeling and Regenerative Medicine. Annu Rev Med. 64, 277-290 (2013).
  10. Inoue, H., Nagata, N., Kurokawa, H., Yamanaka, S. iPS cells: a game changer for future medicine. Embo J. 33, 409-417 (2014).
  11. Kim, C., et al. Studying arrhythmogenic right ventricular dysplasia with patient-specific iPSCs. Nature. 494, 105-110 (2013).
  12. Fang, D., et al. Defining the conditions for the generation of melanocytes from human embryonic stem cells. Stem cells. 24, 1668-1677 (2006).
  13. Huang, X., Saint-Jeannet, J. P. Induction of the neural crest and the opportunities of life on the edge. Dev biol. 275, 1-11 (2004).
  14. White, R. M., Zon, L. I. Melanocytes in development, regeneration, and cancer. Cell stem cell. 3, 242-252 (2008).
  15. Morrison, S. J., White, P. M., Zock, C., Anderson, D. J. Prospective identification, isolation by flow cytometry, and in vivo self-renewal of multipotent mammalian neural crest stem cells. Cell. 96, 737-749 (1999).
  16. Elworthy, S., Pinto, J. P., Pettifer, A., Cancela, M. L., Kelsh, R. N. Phox2b function in the enteric nervous system is conserved in zebrafish and is sox10-dependent. Mech develop. 122, 659-669 (2005).
  17. Harris, M. L., Baxter, L. L., Loftus, S. K., Pavan, W. J. Sox proteins in melanocyte development and melanoma. Pigm cell melanoma r. 23, 496-513 (2010).
  18. Herbarth, B., et al. Mutation of the Sry-related Sox10 gene in Dominant megacolon, a mouse model for human Hirschsprung disease. PNAS. 95, 5161-5165 (1998).
  19. Southard-Smith, E. M., Kos, L., Pavan, W. J. Sox10 mutation disrupts neural crest development in Dom Hirschsprung mouse model. Nat genetics. 18, 60-64 (1998).
  20. Dupin, E., Glavieux, C., Vaigot, P., Le Douarin, N. M. Endothelin 3 induces the reversion of melanocytes to glia through a neural crest-derived glial-melanocytic progenitor. PNAS. 97, 7882-7887 (2000).
  21. Lister, J. A., Robertson, C. P., Lepage, T., Johnson, S. L., Raible, D. W. nacre encodes a zebrafish microphthalmia-related protein that regulates neural-crest-derived pigment cell fate. Development. 126, 3757-3767 (1999).
  22. Hou, L., Panthier, J. J., Arnheiter, H. Signaling and transcriptional regulation in the neural crest-derived melanocyte lineage: interactions between KIT and MITF. Development. 127, 5379-5389 (2000).
  23. Levy, C., Khaled, M., Fisher, D. E. MITF: master regulator of melanocyte development and melanoma oncogene. Trends mol med. 12, 406-414 (2006).
  24. Phung, B., Sun, J., Schepsky, A., Steingrimsson, E., Ronnstrand, L. C-KIT signaling depends on microphthalmia-associated transcription factor for effects on cell proliferation. PloS one. 6, e24064 (2011).
  25. Grichnik, J. M., et al. KIT expression reveals a population of precursor melanocytes in human skin. J invest dermatol. 106, 967-971 (1996).
  26. Li, L., et al. Human dermal stem cells differentiate into functional epidermal melanocytes. J cell sci. 123, 853-860 (2010).
  27. Nishimura, E. K., et al. Dominant role of the niche in melanocyte stem-cell fate determination. Nature. 416, 854-860 (2002).
  28. Zur Nieden, N. I. . Embryonic stem cell therapy for osteo-degenerative diseases : methods and protocols. , (2011).
  29. Lee, J. H., et al. high-content screening for novel pigmentation regulators using a keratinocyte/melanocyte co-culture system. Exp dermatol. 23, 125-129 (2014).
check_url/de/53806?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Callahan, S. J., Mica, Y., Studer, L. Feeder-free Derivation of Melanocytes from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (109), e53806, doi:10.3791/53806 (2016).

View Video