Summary

Feeder-fri Utledning av Melanocytter fra Menneskelig Pluripotent stamceller

Published: March 03, 2016
doi:

Summary

Dette arbeidet beskriver en in vitro differensiering protokollen til å produsere pigmenterte, modne melanocytter fra menneskelige pluripotente stamceller via en neural crest og melanoblast mellomstadium ved hjelp av en mater-fri, 25 dagers protokollen.

Abstract

Human pluripotent stem cells (hPSCs) represent a platform to study human development in vitro under both normal and disease conditions. Researchers can direct the differentiation of hPSCs into the cell type of interest by manipulating the culture conditions to recapitulate signals seen during development. One such cell type is the melanocyte, a pigment-producing cell of neural crest (NC) origin responsible for protecting the skin against UV irradiation. This protocol presents an extension of a currently available in vitro Neural Crest differentiation protocol from hPSCs to further differentiate NC into fully pigmented melanocytes. Melanocyte precursors can be enriched from the Neural Crest protocol via a timed exposure to activators of WNT, BMP, and EDN3 signaling under dual-SMAD-inhibition conditions. The resultant melanocyte precursors are then purified and matured into fully pigmented melanocytes by culture in a selective medium. The resultant melanocytes are fully pigmented and stain appropriately for proteins characteristic of mature melanocytes.

Introduction

Menneskelige pluripotente stamceller (hPSCs) gi en plattform for å etterligne normal differensiering i en skalerbar mote for sykdom modellering, narkotika screening, og celle erstatning terapi 1-6. Av spesiell interesse, hPSCs åpne opp muligheter for å studere vanskelig å isolere eller sjeldne / forbigående celletyper hvor pasientprøver er knappe. Videre induserte pluripotente stamceller (iPSCs) gjør forskerne å studere utvikling og sykdom modellering i en pasient bestemt måte å løse unike mekanismer 1,2,7-11. Den tidligere utgitt protokoll for differensiering av melanocytter fra hPSCs krever opp til 6 uker med differensiering og innebærer dyrking celler med kondisjonert medium fra L-Wnt3a celler 12. Protokollen først presentert av Mica et al. Og beskrevet her produserer pigmenterte celler i tre uker, og fjerner tvetydighet og uoverensstemmelser i forbindelse med kondisjonert medium.

melanocytter are avledet fra neural crest, en vandrende populasjon av celler som er unike for virveldyr. Neural crest er definert under gastrulation og representerer en populasjon av celler ved kanten av det nevrale plate, som grenser mellom det neurale og ikke-nevrale ektoderm. Under neurulation, utvikler den nervevev fra et neural-plate for å danne nevrale folder, som konvergerer ved dorsal midtlinjen som resulterer i det nevrale rør 13,14.

Neural crest cellene skilles ut fra taket plate av nevralrøret, på motsatt side av ryggstreng, og gjennomgår en epitelial til mesenchymale overgang før den vandrer bort for å gi opphav til en mangfoldig befolkning av differensierte celler. Skjebnen av toppen celler er definert delvis av den anatomiske plassering av taket platen langs kroppens akse for embryoet. Neural crest celle derivater omfatter linjer karakteristisk for både mesoderm (glatte muskelceller, osteoblaster, adipocytter, chondrocytes) og ektoderm celler (melanocytter, Schwann calen, nevroner) 14. Nevrale kløft stamceller oppregulere transkripsjonsfaktor SOX10 og kan isoleres ved fluorescens-aktivert cellesortering med antistoffer mot p75 og HNK1.

Neural crest cellene skjebnebestemt til å bli melanocytter passere gjennom en melanoblast scenen og oppregulere KIT og MITF (mikroftalmi-assosiert transkripsjonsfaktor) 6,21 MITF er en mester regulator av melanocyte utvikling og er en transkripsjonsfaktor ansvarlig for å kontrollere mye av melanocytter utvikling 22- 24. Menneske melanoblasts migrere til basal laget av epidermis hvor de bor enten i håret kul eller omgitt av keratinocytter i epidermis (forming pigmentering enheter) å tjene som forløpere for de modne, pigmenterte melanocytter. Differensiering og modning av melanoblasts inn i pigmenterte melanocytter opptrer samtidig med kolonisering av hår pære og ekspresjon av melaninproduksjonen pathway (TYRP1, TYR, og OCA2PMEL) 25,26.

Isolere menneskelige melanocytter og melanoblasts fra pasienter er dyrt, vanskelig og begrensende i kvantitet. Denne protokollen gjør det mulig for forskere å skille hPSCs (indusert eller embryonale) i melanocytter eller melanocyte forløpere i en veldefinert, rask, reproduserbar, skalerbar og billig metode uten cellesortering. Protokollen ble brukt tidligere for å identifisere sykdomsspesifikke feil når differensiere iPSCs fra pasienter med pigmentforstyrrelser.

Protocol

MERK: melanocyte protokollen skissert her ble først demonstrert av Mica et al. 1. Utarbeidelse av dyrkingsmedium, Belagt Retter og vedlikehold av hPSCs medium Forberedelse Merk: Oppbevar alle medium ved 4 ° C i mørke i opptil to uker. Filter alle medium for sterilisering. Forbered DMEM / 10% FBS. Bland 885 ml DMEM, 100 ml FBS, 10 ml Pen / Strep og 5 ml L-Glutamine. Filter for sterilisering. Forbered hESC-medium. Bland 800 ml DMEM / F12, 200 ml KSR, 5 m…

Representative Results

Denne protokollen tilveiebringer en fremgangsmåte for å utlede fullt pigmenterte, modne melanocytter fra hPSCs i en in vitro-mater-fri, kostnadseffektive, og reproduserbar måte. I motsetning til det som tidligere er etablert Fang et al., Protokoll for hPSC-avledede melanocytter, ikke beskrevet protokollen ikke krever kondisjonert medium og reduserer tidskrav. Fang et al. Protokollen benyttes kondisjonert medium fra en WNT3A produserende murine cellelinje og …

Discussion

For vellykket differensiering av melanocytter fra hPSCs bør tas i betraktning følgende forslag. Først og fremst er det viktig å arbeide under sterile dyrkningsbetingelser til enhver tid. I tillegg er det viktig å starte med pluripotent, fullt udifferensiert hPSCs; hvis utgangspopulasjon inneholder differensierte celler utbyttet vil alltid falle som forurensningene ikke kan rettes mot melanocytter, og kan til og med ytterligere forstyrre skikkelig differensierende celler.

For å sikre ce…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av et fellesskap for melanom forskere fra Joanna M. Nicolay Foundation og av National Institutes of Health i henhold til Ruth L. Kirschstein National Research Service Award F31. Dette arbeidet ble også støttet gjennom tilskudd fra NYSTEM og Tri-institusjonelle stamcelle initiativ (Starr Foundation).

Materials

Accutase Innovative Cell Technologies AT104
apo human transferrin Sigma T1147
Ascorbic Acid (L-AA) Sigma A4034 100 mM
B27 (B27 Supplement) Invitrogen 17504044
β-Mercaptoethanol Gibco-Life Technologies 21985-023 10 mg/ml
BMP4 R&D Systems 314-bp
CHIR99021 Tocris-R&D Systems 4423 6 mM
Cholera toxin Sigma C8052 50 mg/ml
cAMP (cyclicAMP) Sigma D0627 100 mM
Dexamethasone Sigma D2915-100MG 50 μM
DMEM – Dulbecco's Modified Eagle Medium Gibco-Life Technologies 11985-092
DMEM/F12 – Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12 Gibco-Life Technologies 1133–032
DMEM/F12 powder Invitrogen 12500-096
EDN3 (Endothelin-3, human) American Peptide Company 88-5-10B 100 μM
Fibronectin BD Biosciences 356008 200 μg/ml
gelatin (PBS without Mg/Ca) in house 0.1% in PBS
Glucose Sigma G7021
Human insulin Sigma I2643
ITS+ Universal Culture Supplement Premix  BD Biosciences 354352
KSR (Knockout Serum Replacement) Gibco-Life Technologies 10828-028
Knockout DMEM Gibco-Life Technologies 10829-018
L-Glutamine Gibco-Life Technologies 25030-081
LDN193189 Stemgent 04-0074 100 mM
Low glucose DMEM Invitrogen 11885-084
Matrigel matrix BD Biosciences 354234 Dissolve 1:20 in DMEM/F12
MCDB201 Medium Sigma M6770
MEM minimum essential amino acids solution Gibco-Life Technologies 11140-080
Mouse embryonic fibroblasts (7 million cells/vial) GlobalStem GSC-8105M
Mouse Laminin-I R&D Systems 3400-010-01 1 mg/ml
Neurobasal medium Invitrogen 21103049
Penicilin/Streptomycin Gibco-Life Technologies 15140-122 10,000 U/ml
Poly-L Omithin hydrobromide Sigma P3655 15 mg/ml 
Progesterone Sigma P8783 0.032g in 100ml 100% ethanol
Putrescine dihydrochloride Sigma P5780
FGF2 (Recombinant human FGF basic) R&D Systems 233-FB-001MG/CF 10 mg/ml
SB431542 Tocris-R&D Systems 1814 10 mM
Selenite Sigma S5261
Sodium Bicarbonate Sigma S5761
SCF (Stem Cell Factor, recombinant Human)  Peprotech Inc. 300-07 50 μg/ml
TYRP1 (G-17) Antibody Santa Cruz 10443 1:200
TYRP2 Antibody Abcam 74073 1:200
Trypsin-EDTA (0.05%) Gibco-Life Technologies 25300-054
Y-27632 dihydrochloride Tocris-R&D Systems 1254 10 mM

Referenzen

  1. Ebert, A. D., et al. Induced pluripotent stem cells from a spinal muscular atrophy patient. Nature. 457, 277-280 (2009).
  2. Lee, G., et al. Modelling pathogenesis and treatment of familial dysautonomia using patient-specific iPSCs. Nature. 461, 402-406 (2009).
  3. Lee, G., et al. Large-scale screening using familial dysautonomia induced pluripotent stem cells identifies compounds that rescue IKBKAP expression. Nat biotechnol. 30, 1244-1248 (2012).
  4. Lee, G., Studer, L. Induced pluripotent stem cell technology for the study of human disease. Nat methods. 7, 25-27 (2010).
  5. Zimmer, B., et al. Evaluation of developmental toxicants and signaling pathways in a functional test based on the migration of human neural crest cells. Environ health persp. 120, 1116-1122 (2012).
  6. Mica, Y., Lee, G., Chambers, S. M., Tomishima, M. J., Studer, L. Modeling neural crest induction, melanocyte specification, and disease-related pigmentation defects in hESCs and patient-specific iPSCs. Cell rep. 3, 1140-1152 (2013).
  7. Mariani, J., et al. FOXG1-Dependent Dysregulation of GABA/Glutamate Neuron Differentiation in Autism Spectrum Disorders. Cell. 162, 375-390 (2015).
  8. Doulatov, S., et al. Modeling Diamond Blackfan Anemia in Vivo Using Human Induced Pluripotent Stem Cells. Blood. 124, (2014).
  9. Cherry, A. B. C., Daley, G. Q. Reprogrammed Cells for Disease Modeling and Regenerative Medicine. Annu Rev Med. 64, 277-290 (2013).
  10. Inoue, H., Nagata, N., Kurokawa, H., Yamanaka, S. iPS cells: a game changer for future medicine. Embo J. 33, 409-417 (2014).
  11. Kim, C., et al. Studying arrhythmogenic right ventricular dysplasia with patient-specific iPSCs. Nature. 494, 105-110 (2013).
  12. Fang, D., et al. Defining the conditions for the generation of melanocytes from human embryonic stem cells. Stem cells. 24, 1668-1677 (2006).
  13. Huang, X., Saint-Jeannet, J. P. Induction of the neural crest and the opportunities of life on the edge. Dev biol. 275, 1-11 (2004).
  14. White, R. M., Zon, L. I. Melanocytes in development, regeneration, and cancer. Cell stem cell. 3, 242-252 (2008).
  15. Morrison, S. J., White, P. M., Zock, C., Anderson, D. J. Prospective identification, isolation by flow cytometry, and in vivo self-renewal of multipotent mammalian neural crest stem cells. Cell. 96, 737-749 (1999).
  16. Elworthy, S., Pinto, J. P., Pettifer, A., Cancela, M. L., Kelsh, R. N. Phox2b function in the enteric nervous system is conserved in zebrafish and is sox10-dependent. Mech develop. 122, 659-669 (2005).
  17. Harris, M. L., Baxter, L. L., Loftus, S. K., Pavan, W. J. Sox proteins in melanocyte development and melanoma. Pigm cell melanoma r. 23, 496-513 (2010).
  18. Herbarth, B., et al. Mutation of the Sry-related Sox10 gene in Dominant megacolon, a mouse model for human Hirschsprung disease. PNAS. 95, 5161-5165 (1998).
  19. Southard-Smith, E. M., Kos, L., Pavan, W. J. Sox10 mutation disrupts neural crest development in Dom Hirschsprung mouse model. Nat genetics. 18, 60-64 (1998).
  20. Dupin, E., Glavieux, C., Vaigot, P., Le Douarin, N. M. Endothelin 3 induces the reversion of melanocytes to glia through a neural crest-derived glial-melanocytic progenitor. PNAS. 97, 7882-7887 (2000).
  21. Lister, J. A., Robertson, C. P., Lepage, T., Johnson, S. L., Raible, D. W. nacre encodes a zebrafish microphthalmia-related protein that regulates neural-crest-derived pigment cell fate. Development. 126, 3757-3767 (1999).
  22. Hou, L., Panthier, J. J., Arnheiter, H. Signaling and transcriptional regulation in the neural crest-derived melanocyte lineage: interactions between KIT and MITF. Development. 127, 5379-5389 (2000).
  23. Levy, C., Khaled, M., Fisher, D. E. MITF: master regulator of melanocyte development and melanoma oncogene. Trends mol med. 12, 406-414 (2006).
  24. Phung, B., Sun, J., Schepsky, A., Steingrimsson, E., Ronnstrand, L. C-KIT signaling depends on microphthalmia-associated transcription factor for effects on cell proliferation. PloS one. 6, e24064 (2011).
  25. Grichnik, J. M., et al. KIT expression reveals a population of precursor melanocytes in human skin. J invest dermatol. 106, 967-971 (1996).
  26. Li, L., et al. Human dermal stem cells differentiate into functional epidermal melanocytes. J cell sci. 123, 853-860 (2010).
  27. Nishimura, E. K., et al. Dominant role of the niche in melanocyte stem-cell fate determination. Nature. 416, 854-860 (2002).
  28. Zur Nieden, N. I. . Embryonic stem cell therapy for osteo-degenerative diseases : methods and protocols. , (2011).
  29. Lee, J. H., et al. high-content screening for novel pigmentation regulators using a keratinocyte/melanocyte co-culture system. Exp dermatol. 23, 125-129 (2014).
check_url/de/53806?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Callahan, S. J., Mica, Y., Studer, L. Feeder-free Derivation of Melanocytes from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (109), e53806, doi:10.3791/53806 (2016).

View Video