Summary

Un método rápido y eficiente para la purificación de células del endodermo generada a partir de células madre embrionarias humanas

Published: March 03, 2016
doi:

Summary

A continuación, se describe un método para la purificación de células madre embrionarias humanas diferenciadas que están comprometidas hacia el endodermo definitivo para la mejora de las aplicaciones posteriores y otras diferenciaciones.

Abstract

Las capacidades de diferenciación de las células madre pluripotentes tales como células madre embrionarias (CES) permiten que una aplicación terapéutica potencial para las terapias de reemplazo celular. Terminal tipos de células diferenciadas se podrían utilizar para el tratamiento de diversas enfermedades degenerativas. Diferenciación in vitro de estas células hacia los tejidos del pulmón, hígado y páncreas requiere como primera etapa de la generación de células endodérmicas definitivas. Este paso es limitante de la velocidad para su posterior diferenciación hacia tipos de células maduras terminal tales como las células beta productoras de insulina, hepatocitos u otros tipos celulares derivados del endodermo. Las células que se han comprometido hacia el linaje endodermo altamente expresan una multitud de factores de transcripción como FOXA2, SOX17, HNF1B, los miembros de la familia GATA, y el receptor CXCR4 superficie. Sin embargo, rara vez son protocolos de diferenciación 100% de eficiencia. A continuación, describimos un método para la purificación de una población de células CXCR4 + después de la diferenciaciónen la DE mediante el uso de microperlas magnéticas. Esta purificación elimina, además, las células de los linajes no deseados. El método de purificación suave es rápido y fiable, y puede ser utilizado para mejorar las aplicaciones posteriores y diferenciaciones.

Introduction

Las células madre pluripotentes tales como células madre embrionarias (CES) tienen la capacidad de diferenciarse en casi cualquier tipo de célula del cuerpo humano. Por lo tanto, los protocolos de diferenciación in vitro se pueden utilizar para generar numerosos tipos de células de adultos, tales como cardiomiocitos, hepatocitos 1 2, las células beta 3, epitelial de pulmón 4 o células neuronales 5. Esto hace que los CES una herramienta valiosa para el tratamiento potencial de diversas enfermedades degenerativas 3.

La diferenciación in vitro de los CES hacia tejidos adultos del pulmón, hígado y páncreas requiere un pseudo-gastrulación en células que recuerdan el endodermo definitivo (DE) 6. Puesto que la diferenciación de aguas abajo hacia los tipos de células somáticas antes mencionados es significativamente menos eficiente, una diferenciación endodermo óptima se considera como limitante de la velocidad 7. Las células que se han comprometido hacia el linaje endodermo se someten chacaracterísti- cambios en su perfil de expresión génica. Regulador de los genes maestros pluripotencia están regulados hacia abajo, mientras que la expresión de otros factores de transcripción como FOXA2, SOX17, HNF1B, los miembros de la familia GATA y el receptor de la superficie CXCR4 está altamente regulada positivamente 6, 8, 9. CXCR4 es conocido por estar transactivated por SMAD2 / 3, aguas abajo de la señalización nodal / TGF-β y SOX17 debido a los sitios de unión específicos en su región promotora 10. Por lo tanto es un marcador muy adecuado usado en una serie de informes 6, 8, 11-13. Estos cambios en la expresión refleja un evento pseudo-gastrulación, en el que los CES primera adquieren características de una población de células racha similar primitiva y, posteriormente, se comprometen en la capa de germen de endodermo 6.

Sin embargo, los protocolos de diferenciación rara vez son 100% de eficiencia como algunas células pueden resistir el proceso de diferenciación o diferenciar hacia otros linajes no deseados 14. Estas células pueden INFLUE negativamentena vez mayor diferenciación. Además, las células indiferenciadas residuales albergan grandes riesgos para posteriores experimentos de trasplante y pueden dar lugar a teratomas 15-17.

Para eliminar estas células no deseadas se pueden utilizar para la purificación de las células que se han comprometido hacia la DE 18 temprano en el CXCR4 marcador de superficie. A continuación, describimos un método para la selección positiva de células CXCR4 + a partir de cultivos de diferenciación DE. Para ello, el CXCR4 marcador de superficie se une por un anticuerpo que luego a su vez se une a las microperlas magnéticas. A diferencia de las duras condiciones durante FACS clasificación, las células marcadas magnéticamente DE-como pueden ser fácilmente purificados en un formato de sobremesa usando un método de purificación suave. Este protocolo proporciona un método sencillo para la eliminación de poblaciones de células que resistió el proceso de diferenciación DE.

Protocol

1. La diferenciación de ESC humana hacia el endodermo definitivo Cultivar células madre embrionarias humanas (CES) en una incubadora a 37 ° C y 5% de CO2. Escudo una nueva placa de cultivo celular de 6 pocillos con 1 ml de una matriz de membrana basal e incubar la cultura-ware durante al menos 30 minutos a temperatura ambiente. Para obtener detalles específicos, por favor dirigirse a las instrucciones del fabricante respectivo. Confirman que las CME humanas cultivadas han al…

Representative Results

la diferenciación CES se someten a cambios drásticos en la expresión de genes y proteínas. La Figura 1 representa los genes marcadores típicos que se pueden utilizar para verificar el éxito de la diferenciación del endodermo. Los principales objetivos de un análisis de la expresión génica son GSC, FOXA2, y SOX17. En un análisis de la expresión génica relativa en especial FOXA2 y SOX17 se increme…

Discussion

protocolos de diferenciación Actualmente se utilizan rara vez resultan en células diferenciadas 100%. Por razones que aún no se han abordado algunas células resisten el proceso de diferenciación. Dependiendo de la eficiencia del protocolo de diferenciación usado y de la propensión de la ESC línea A cierto número de células pluripotentes residuales se observa con frecuencia, incluso después de la diferenciación en el endodermo definitivo. Estas células residuales pueden poner en peligro diferenciaciones agua…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

La habilidad de asistencia técnica de Jasmin Kresse se agradece.

Materials

Hues8 human embryonic stem cell line Harvard Department of stem cell & regenerative biology NA Suitable cell line for endoderm generation
Hes3 human embryonic stem cell line ES Cell International NA Suitable and robust cell line for endoderm generation
mTeSR1 Stemcell Technologies 5850 ESC culture medium
FCS Biowest S1860
Advanced RPMI 1640 Life Technologies 12633012
CD184 (CXCR4)-APC, human Miltenyi Biotec 130-098-357
anti-APC MicroBeads Miltenyi Biotec 130-090-855 
OctoMACS Separator Miltenyi Biotec 130-042-109 magnetic field
Y-27632 Selleck Chemicals S1049 ROCK inhibitor
CHIR-99021 Tocris Bioscience 4423
Activin A Peprotech 120-14
Gentle Cell Dissociation Reagent Stemcell Technologies 7174 Enzyme-free passaging solution, alternative: Trypsin/EDTA
Matrigel* Corning 354277 basement membrane matrix
* solve and store in aliquots at -80 °C as outlined in the suppliers manual. Upon use, thaw on ice, dilute in 25 ml ice-cold knockout DMEM/F-12.
Add 1 ml to each well of a 6-well plate and incubate for 45 min at room temperature.
Remove the matrigel and use immediately.
MS Columns Miltenyi Biotec 30-042-201
MACS Separator Miltenyi Biotec 130-042-302
Human FOXA2 FW
gggagcggtgaagatgga
Life Technologies NA
Human FOXA2 REV
tcatgttgctcacggaggagta
Life Technologies NA
Human GSC FW
gaggagaaagtggaggtctggtt
Life Technologies NA
Human GSC REV
ctctgatgaggaccgcttctg
Life Technologies NA
SOX17 TaqMan assay Applied Biosystems Hs00751752_s1
Human SOX7 FW
gatgctgggaaagtcgtggaagg
Life Technologies NA
Human SOX7 REV
tgcgcggccggtacttgtag
Life Technologies NA
Human POU5F1 FW
cttgctgcagaagtgggtggagg
Life Technologies NA
Human POU5F1 REV
ctgcagtgtgggtttcgggca
Life Technologies NA
Human Nanog FW
ccgagggcagacatcatcc
Life Technologies NA
Human Nanog REV
ccatccactgccacatcttct
Life Technologies NA
Human TBP FW
caa cag cct gcc acc tta cgc tc
Life Technologies NA
Human TBP REV
agg ctg tgg ggt cag tcc agt g
Life Technologies NA
Human TUBA1A FW
ggc agt gtt tgt aga ctt gga acc c
Life Technologies NA
Human TUBA1A REV
tgt gat aag ttg ctc agg gtg gaa g
Life Technologies NA
Human G6PD FW
agg ccg tca cca aga aca ttc a
Life Technologies NA
Human G6PD REV
cga tga tgc ggt tcc agc cta t
Life Technologies NA
Anti-SOX2 Santa Cruz Biotechnology sc-17320
Anti-FOXA2 MerckMillipore 07-633
Anti-SOX17 R&D Systems AF1924
NA = not applicable

Referenzen

  1. Sharma, A., Li, G., Rajarajan, K., Hamaguchi, R., Burridge, P. W., Wu, S. M. Derivation of Highly Purified Cardiomyocytes from Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Small Molecule-modulated Differentiation and Subsequent Glucose Starvation. J Vis Exp. (97), (2015).
  2. Sgodda, M., et al. Improved hepatic differentiation strategies for human induced pluripotent stem cells. Curr Mol Med. 13 (5), 842-855 (2013).
  3. Naujok, O., Burns, C., Jones, P. M., Lenzen, S. Insulin-producing surrogate beta-cells from embryonic stem cells: are we there yet. Mol Ther. 19 (10), 1759-1768 (2011).
  4. Katsirntaki, K., et al. Bronchoalveolar sublineage specification of pluripotent stem cells: effect of dexamethasone plus cAMP-elevating agents and keratinocyte growth factor. Tissue Eng Part A. 21 (3-4), 669-682 (2015).
  5. Abranches, E., et al. Neural differentiation of embryonic stem cells in vitro: a road map to neurogenesis in the embryo. PLoS One. 4 (7), e6286 (2009).
  6. Naujok, O., Diekmann, U., Lenzen, S. The generation of definitive endoderm from human embryonic stem cells is initially independent from activin A but requires canonical Wnt-signaling. Stem Cell Rev. 10 (4), 480-493 (2014).
  7. D’Amour, K. A., et al. Production of pancreatic hormone-expressing endocrine cells from human embryonic stem cells. Nat Biotechnol. 24 (11), 1392-1401 (2006).
  8. Diekmann, U., Lenzen, S., Naujok, O. A reliable and efficient protocol for human pluripotent stem cell differentiation into the definitive endoderm based on dispersed single cells. Stem Cells Dev. 24 (2), 190-204 (2015).
  9. Kim, P. T., Ong, C. J. Differentiation of definitive endoderm from mouse embryonic stem cells. Results Probl Cell Differ. 55, 303-319 (2012).
  10. Katoh, M., Katoh, M. Integrative genomic analyses of CXCR4: transcriptional regulation of CXCR4 based on TGFbeta, Nodal, Activin signaling and POU5F1, FOXA2, FOXC2, FOXH1, SOX17, and GFI1 transcription factors. Int J Oncol. 36 (2), 415-420 (2010).
  11. Nostro, M. C., et al. Stage-specific signaling through TGFbeta family members and WNT regulates patterning and pancreatic specification of human pluripotent stem cells. Development. 138 (5), 861-871 (2011).
  12. Rezania, A., et al. Maturation of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors into functional islets capable of treating pre-existing diabetes in mice. Diabetes. 61 (8), 2016-2029 (2012).
  13. Bruin, J. E., et al. Maturation and function of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors in macroencapsulation devices following transplant into mice. Diabetologia. 56 (9), 1987-1998 (2013).
  14. Fu, W., Wang, S. J., Zhou, G. D., Liu, W., Cao, Y., Zhang, W. J. Residual undifferentiated cells during differentiation of induced pluripotent stem cells in vitro and in vivo. Stem Cells Dev. 21 (4), 521-529 (2012).
  15. Hentze, H., Soong, P. L., Wang, S. T., Phillips, B. W., Putti, T. C., Dunn, N. R. Teratoma formation by human embryonic stem cells: evaluation of essential parameters for future safety studies. Stem Cell Res. 2 (3), 198-210 (2009).
  16. Herberts, C. A., Kwa, M. S., Hermsen, H. P. Risk factors in the development of stem cell therapy. J Transl Med. 9, 29 (2011).
  17. Naujok, O., Kaldrack, J., Taivankhuu, T., Jörns, A., Lenzen, S. Selective removal of undifferentiated embryonic stem cells from differentiation cultures through HSV1 thymidine kinase and ganciclovir treatment. Stem Cell Rev. 6 (3), 450-461 (2010).
  18. Pan, Y., Ouyang, Z., Wong, W. H., Baker, J. C. A new FACS approach isolates hESC derived endoderm using transcription factors. PLoS One. 6 (3), 17536 (2011).

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Diesen Artikel zitieren
Davenport, C., Diekmann, U., Naujok, O. A Quick and Efficient Method for the Purification of Endoderm Cells Generated from Human Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (109), e53655, doi:10.3791/53655 (2016).

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