Summary

Tre-dimensionel Kvantificering af dendritiske Spines fra pyramideneuroner Afledt af menneskeskabte pluripotente stamceller

Published: October 10, 2015
doi:

Summary

Dendritiske spines af pyramideformede neuroner er de steder, hvor de fleste excitatoriske synapser i pattedyrs hjerne cortex. Denne metode beskriver en 3D-kvantitativ analyse af rygsøjlen morfologier i humane kortikale pyramideformet glutamaterge neuroner afledt af inducerede pluripotente stamceller.

Abstract

Dendritiske spidser er små fremspring, der svarer til de post-synaptiske rum af excitatoriske synapser i centralnervesystemet. De er fordelt langs dendritter. Deres morfologi afhænger i høj grad neuronal aktivitet, og de er dynamiske. Dendritiske spines udtrykker glutamaterge receptorer (AMPA og NMDA-receptorer) på deres overflade, og på niveauet af postsynaptiske tætheder. Hver rygsøjlen tillader neuron til at styre sin tilstand og lokal aktivitet uafhængigt af hinanden. Spine morfologier er blevet grundigt undersøgt i glutamaterge pyramidale celler i hjernen cortex, ved hjælp af både in vivo fremgangsmåder og neuronale kulturer opnået fra gnaver væv. Neuropatologiske tilstande kan tilknyttes ændret rygsøjlen induktion og modning, som vist i gnavere dyrkede neuroner og endimensional kvantitativ analyse 1. Den foreliggende undersøgelse beskriver en protokol for 3D-kvantitativ analyse af rygsøjlen morfologier hjælp menneskelige corticAL neuroner afledt fra neurale stamceller (sene kortikale progenitorer). Disse celler blev oprindeligt fremstillet fra inducerede pluripotente stamceller. Denne protokol muliggør analysen af ​​rygsøjlen morfologier ved forskellige kultur perioder, og med mulighed for sammenligning mellem inducerede pluripotente stamceller opnået fra kontrolpersoner med dem, der opnås fra patienter med psykiatriske lidelser.

Introduction

Dendritiske spidser af corticale pyramideneuroner er små og tynde fremspring, som er fordelt langs basale og apikale dendritter af disse neuronale undertyper i gnavere, primat, og den menneskelige hjerne. De er de steder, hvor de fleste excitatoriske synapser og vise nøglefunktioner i læring og kognitive processer. De detaljerede strukturer af humane dendritiske spines er teknisk studeret ved elektronmikroskopi 2. Men sådan tilgang er tidskrævende og repræsenterer tung arbejdsbyrde. For nylig er en tredimensional (3D) rekonstruktion af morfologien af dendritiske spidser er rapporteret i human hjernebark via bestemte software kombineret til store manuel rygsøjlen analyse 3.

Grøn fluorescens protein (GFP) teknologi koblet til immunfluorescens repræsenterer et præcist værktøj til identifikation ryg og måling form ved fluorescensmikroskopi. Denne fremgangsmåde kan let anvendes til dyrkede neuroner. However, har ingen data er indberettet på analysen af ​​rygsøjlen modning og morfologi på humane neuroner afledt af inducerede pluripotente stamceller (IPSC).

Formålet med denne undersøgelse var at beskrive en protokol, som gør det muligt dendritisk rygsøjlen billeddannelse fra dyrkede humane neuroner in vitro. GFP mærkning, konfokal mikroskopi og 3D-analyse med Filament Tracer modul Imaris software blev anvendt i den foreliggende protokol. Kultur trin, der er nødvendige for at opnå corticale neuroner glutamaterge af lag II til IV fra neurale stamceller (NSC) er også kort beskrevet her. Hele protokol for menneskelige NSC produktion er allerede blevet offentliggjort andre steder 4.

Protocol

1. Neuronal Kultur Bemærk: Fibroblast omprogrammering i pluripotente stamceller, engagement i dorsale telencephalon afstamning, afledning, forstærkning, og bankvæsen af sene kortikale stamceller (LCP), blev beskrevet i Boissart et al 4. Neuronal differentiering af LCP-lignende celler blev også udført ifølge Boissart et al 4 med mindre ændringer. Der er udviklet andre procedurer til direkte omprogrammering af fibroblaster i inducerede pluripotente …

Representative Results

Den foreliggende undersøgelse beskriver en standardiseret protokol for rygsøjlen kvantificering af dyrkede dendritter af pyramideformede neuroner afledt af iPSC. Denne protokol muliggør analysen af rygsøjlen modning på menneskelige neuroner og dens mulige sammenligning med modning af pigge i standard gnaver neuronkulturer samt i in vivo-dyremodeller. Figur 1A viser et skema over de forskellige trin i kultur, der tillader produktion af corticale pyramidene…

Discussion

Den kvantificering af de morfologiske træk af pyramideformede neuroner påberåbt softwaren. Glødetråden Tracer grænsefladen blev anvendt til segmentering af neuroner og pigge, og XT modulet blev anvendt til analysen.

For at analysere nøjagtigheden af vores teknik, vi først sammenlignet de målte morfologiske parametre (længde, areal, og total rygsøjlen volumen, når det er relevant), med dem, der offentliggøres ved hjælp af rotte modne pyramideformede neuroner i kultur 6, 7</…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by the Institut Pasteur, the Bettencourt-Schueller foundation, Centre National de la Recherche Scientifique, University Paris Diderot, Agence Nationale de la Recherche (ANR-13-SAMA-0006; SynDivAutism), the Conny-Maeva Charitable Foundation, the Cognacq Jay Foundation, the Orange Foundation, and the Fondamental Foundation. L.G. is supported by an undergraduate fellowship from the Health Ministry. We acknowledge the help of BitPlane in particular Georgia Golfis, in the early stage of this work.

Materials

PD-PBS (1X), sans Calcium, Magnesium et Phenol Red Gibco/ Life Technologies 14190169
Poly-L-Ornithine Solution Bioreagent Sigma Aldrich P4957
Mouse laminin Dutscher Dominique 354232
N2 Supplement Gibco/ Life Technologies 17502048
B-27 Supplement w/o vit A (50X) Gibco/ Life Technologies 12587010
DMEM/NUT.MIX F-12 W/GLUT-I Gibco/ Life Technologies 31331028
Neurobasal Med SFM Gibco/ Life Technologies 21103049
2-mercaptoethanol Gibco/ Life Technologies 31350-010
Pen-Steptomycin Gibco/ Life Technologies 15140-122
GFP Rabbit Serum Polyclonal Antibody Gibco/ Life Technologies A-6455
Horse serum Gibco/ Life Technologies 16050130
Alexa Fluor 488 Goat Anti-Rabbit  Gibco/ Life Technologies A11034
Polyclonal Anti-betaIII tubulin antibody Millipore AB9354
Coverglass 13 mm VWR 631-0150
Prolong Gold Antifade Reagent avec DAPI Gibco/ Life Technologies P36931
Tween(R) 20 Bioextra, Viscous Liquid Sigma Aldrich Chimie P7949
Triton X-100 Sigma Aldrich Chimie X100-100ML
Human Fibroblasts Coriell Cell Line Biorepository GM 4603 and GM 1869 Coriell Institute for Medical Research, Camden, NJ, USA
Confocal laser scanning microscope Zeiss (Germany) LSM 700
Imaris Software Bitplane AG, Zurich 6.4.0 version Filament Tracer and Imaris XT modules are necessary
Huygens Software Huygens software, SVI, Netherlands Pro version Optional (for deconvolution testing)

Referenzen

  1. Durand, C., et al. SHANK3 mutations identified in autism led to modification of dendritic spine morphology via an actin-dependent mechanism. Molecular Psychiatry. 17 (1), 71-84 (2013).
  2. Arenallo, J. I., Espinosa, A., Fairen, A., Yuste, R., Defelipe, J. Non-synaptic dendritic spines in neocortex. Neurowissenschaften. 145, 464-469 (2007).
  3. Benavides-Piccione, R., Fernaud-Espinosa, I., Robles, V., Yuste, R., DeFelipe, J. Age-based comparison of human dendritic spine structure using complete three-dimensional reconstructions. Cerebral Cortex. 23 (8), 1798-1810 (2013).
  4. Boissart, C., et al. Differentiation from human pluripotent stem cells of cortical neurons of the superficial layers amenable to psychiatric disease modeling and high-throughput drug screening. Translational Psychiatry. 3, 1-11 (2013).
  5. Avale, M. E., et al. Interplay of beta 2* nicotinic receptors and dopamine pathways in the control of spontaneous locomotion. Proceedings of National Academy of Science USA. 105 (41), 15991-15996 (2008).
  6. Xie, Z., et al. Coordination of synaptic adhesion with dendritic spine remodeling by AF6 and kalirin-7. Journal of Neuroscience. 28 (24), 6079-6091 (2008).
  7. Srivastava, D. P., et al. Afadin is required for maintenance of dendritic structure and excitatory tone. Journal of Biological Chemistry. 287 (43), 35964-35974 (2012).
  8. Srivastava, D. P., Woolfrey, K. M., Penzes, P. Analysis of dendritic spine morphology in cultured CNS neurons. Journal of Visualized Experiments. (53), e2794 (2011).
  9. Brennand, K. J., Gage, F. H. Modeling psychiatric disorders through reprogramming. Disease Models and Mechanisms. 5 (1), 26-32 (2012).
  10. Kim, S. S., Ross, P. J., Zaslavsky, K., Ellis, J. Optimizing neuronal differentiation from induced pluripotent stem cells to model ASD. Frontiers in Cellular Neuroscience. 8, 1-16 (2014).
  11. Inoue, H., Nagata, N., Kurokawa, H., Yamanaka, S. iPS cells: a game changer for future medicine. EMBO Journal. 33 (5), 409-417 (2014).
  12. Stein, J. L., et al. Aquantitative framework to evaluate modeling of cortical development by neural stem cells. Neuron. 83, 69-86 (2014).
  13. Sivapatham, R., Zheng, X. Generation and characterization of patient-specific induced pluripotent stem cell for disease modeling. Methods in Molecular Biology. , (2014).
  14. Xu, X., Miller, E. C., Pozzo-Miller, L. Dendritic spine dysgenesis in Rett Syndrome. Frontiers in Neuroanatomy. 8, 1-8 (2014).
  15. Rodriguez, A., Ehlenberger, D. B., Dickstein, D. L., Hof, P. R., Wearne, S. L. Automated Three Dimensional Detection and Shape Classification of Dendritic spines from Fluorescence Microscopy Images. PLoS ONE. 3 (4), e1997 (2008).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Gouder, L., Tinevez, J., Goubran-Botros, H., Benchoua, A., Bourgeron, T., Cloëz-Tayarani, I. Three-dimensional Quantification of Dendritic Spines from Pyramidal Neurons Derived from Human Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (104), e53197, doi:10.3791/53197 (2015).

View Video