Mutations that lead to congenital heart defects benefit from in vivo investigation of cardiac structure during development, but high-resolution structural studies in the mouse embryonic heart are technically challenging. Here we present a robust immunofluorescence and image analysis method to assess cardiomyocyte-specific structures in the developing mouse heart.
Durante o desenvolvimento do coração, da geração de unidades estruturais e funcionais específicas do miocárdio incluindo sarcolema, miofibrilas contrácteis, discos intercalados, e exige a montagem costâmeros coordenada de múltiplos componentes em tempo e espaço. Perturbação na montagem desses componentes leva a defeitos cardíacos de desenvolvimento. Técnicas de coloração de imunofluorescência são usados comumente em cardiomiócitos cultivados para sondar maturação miofibrila, mas esta abordagem ex vivo é limitada pelo grau em que os miócitos vai diferenciar totalmente na cultura, a falta de in vivo entradas mecânicas normais, e ausência de pistas do endocárdio. Aplicação de técnicas de imunofluorescência para o estudo do desenvolvimento do coração do rato é desejável, mas tecnicamente mais desafiadora, e métodos muitas vezes a falta de sensibilidade e resolução suficiente para visualizar sarcômeros em estágios iniciais de desenvolvimento do coração. Aqui, descrevemos um método robusto e reprodutível para co-imunocoloração muproteínas ltiple ou a co-visualizar uma proteína fluorescente com coloração de imunofluorescência no coração embrionário mouse e usar esse método para analisar myofibrils desenvolvimento, discos intercalares e costâmeros. Este método pode ser aplicado mais para avaliar as alterações estruturais dos cardiomiócitos causadas por mutações que levam a malformações cardíacas desenvolvimento.
Durante o desenvolvimento, contrações do coração começar logo após cardiomiócitos migrar para a linha média e formar o tubo de 1,2 coração linear. O sarcômero é a unidade contrátil básica dentro dos cardiomiócitos; esta estrutura citoesquelética altamente organizada contém filamentos de actina ancorados ao Z-disco por sarcomérica α-actinina (s-α-actinina) e fibras de miosina ancorada na linha M (Figura 1). Como o cardiomyocyte amadurece, sarcômeros montar em série para formar myofibrils que se estendem pelo celular. Miofibrilas são ancoradas às extremidades do cardiomiócitos pelo disco intercalado, a estrutura de junção célula-célula que contém uma junção de transição com um subconjunto de elementos de Z-disco, tais como s-α-actinina 3, proteínas de junções aderentes, tais como N-caderina e β catenina, proteínas de junções de hiato, e desmossomas (Figura 1) 4. Ao longo da membrana longitudinal, os Z-discos de miofibrilas periféricas tambémanexar à membrana celular através de costâmeros; essas adesões focais especializados proporcionar uma âncora entre o miofibrilar, membrana de plasma, e matriz extracelular para proporcionar apoio estrutural adicional ao cardiomiócito (Figura 1) 4. No início do desenvolvimento do coração, os cardiomiócitos são dispostos em projeções semelhantes a dedos, conhecidas como trabeculae que se projetam no espaço ventricular e contêm myofibrils relativamente maduros 5. Como o desenvolvimento do coração prossegue, os cardiomiócitos na região do sub-epicardial proliferam para formar o miocárdio compacto que compreende as paredes do ventrículo, mas sarcomere e montagem miofibrila estão atrasadas em comparação com miocárdio trabecular 5,6.
Todos os modelos de sarcômero e montagem miofibrila vêm em grande parte a partir de estudos de imunofluorescência em cardiomiócitos cultivados 7-10, que são simples, mas não têm um ambiente tridimensional, o fluxo de sangue, e contatos com outras células cardíacass presente in vivo. estudos estruturais de alta resolução usando imunofluorescência no coração embrionário do mouse são tecnicamente desafiador, e poucos estudos exploraram o surgimento de discos intercalares e costâmeros durante rato desenvolvimento cardíaco. A proteína adherens junção β catenina parece localizar a discos intercalados por dia embrionário (E) 17,5 11, N-caderina localiza a estruturas lineares que podem representar discos intercalados por E18.5 12 versus pós-natal dia 0 13, e costâmeros tenham sido detectadas na E18.5 14, mas estas proteínas exibir distribuição membrana difusa e mais contínua em anteriores momentos de desenvolvimento 11-13.
Aqui, descrevemos um método simples e reprodutível para immunostaining e microscopia de fluorescência de rato seccionado corações embrionárias que permite a análise detalhada da miofibrila e desenvolvimento de cardiomiócitos, incluindo o surgimento de intercalated discos como cedo como E12.5 e costâmeros nascentes na E16.5. Este protocolo pode ser útil para sondar os efeitos das mutações na formação sarcomere bem como miofibrilar e cardiomiócitos maturação.
A técnica de fixação do tecido ideal e diluição deve ser determinada empiricamente para cada anticorpo. Nas nossas mãos, snap-congelamento é superior ao PFA fixação para vários antigénios de cardiomiócitos, incluindo s-α-actinina, β-catenina, β1-integrina, tropomiosina, a talina (não mostrado) e N-caderina; em contraste, a PFA fixação produz resultados superiores para a quinase de adesão focal (não mostrado). As ligações cruzadas de proteínas formadas pela PFA pode mascarar epitopos e anticorpos limite vinculativo; recuperação de antigénios pode ser necessário, em tais casos, e métodos para a recuperação de antigénios pode ser encontrada em outras posições 20. Concentração PFA ou o comprimento de fixação pode ser reduzida para reduzir epitopo de mascaramento, com condições óptimas determinadas empiricamente para cada anticorpo e em cada fase de desenvolvimento. Controlos negativos apropriados devem ser utilizados na caracterização de um novo anticorpo ou mutante cardíaca, incluindo o soro pré-imune como controlo anticorpo primário e um "sem anticorpo primário" control. A utilização de ratinhos knockout é um controle negativo ideal, mas a letalidade precoce impede a sua utilização para muitos dos produtos de genes aqui estudadas.
O uso de volumes suficientes para submergir completamente lâminas experimental e controle no mesmo bloqueio de imunofluorescência, anticorpo, e soluções de lavagem foi importante como era suave balanço de slides durante a incubação para garantir a exposição uniforme das seções para as soluções. Esta abordagem minimizado variabilidade técnica na coloração entre as seções e slides dentro de um experimento. Quando custo limita o volume da solução de anticorpo, usar uma caneta para limitar o fluxo de Papanicolaou de soluções para além das secções de tecido e manter as lâminas numa câmara humidificada durante incubações longas. Se um anticorpo monoclonal primário – e, portanto, um anticorpo secundário anti-mouse – está sendo usado, uma segunda etapa de bloqueio para cobrir imunoglobulinas endógenas do mouse será necessário (passo 3.4) para diminuir sinal de fundo inespecífica.
Técnicas de microscopia e de processamento de imagem adequados são fundamentais para a obtenção de informações biologicamente precisas 21. O histograma intensidade indica a distribuição de pixels em cada nível de intensidade (0-65535 níveis de uma imagem de 16 bits para) para cada cor. Background, brilho e contraste pode ser ajustado através da criação de uma faixa de exibição intensidade que ladeia o pico do histograma; para fazer comparações válidas entre as condições, as mesmas configurações entre o controle e as condições experimentais devem ser usados.
Este protocolo fornece um método confiável para analisar a maturação e desenvolvimento de cardiomiócitos no coração nativo rato embrionário. Enquanto imunofluorescência de proteínas específicas do cardiomiócitos é muitas vezes usado para marcar cardiomiócitos durante o desenvolvimento, alguns estudos empregam técnicas que permitem a análise de alta resolução da estrutura miofibrilar e o surgimento de discos intercalares e costâmeros 12-14,22,23. Esta técnica pode ser utilizado para em vavaliação ivo de mutações que causam defeitos cardíacos de desenvolvimento, como um meio de identificar alterações na maturação dos cardiomiócitos que possam lançar luz sobre os mecanismos de anormalidades estruturais.
The authors have nothing to disclose.
The authors would like to thank Drs. Hilary Clay, Stephen Wilson, Anna Payne-Tobin, and James Smyth for helpful discussions. Microscopy was done at the Cardiovascular Research Institute Imaging Core at the University of California, San Francisco. This work was supported by NIH K08 HL105657 (LDW) and NIH HL65590 (SRC).
Name of Reagent/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Cryomold, Disposable Base Mold, 7×7 mm | Richard-Allen Scientific | 58949 | This size not available from Fisher Scientific |
Cryomold, Disposable Base Mold, 15×15 mm | Fisher Scientific | 22-050-159 | Also available from Richard-Allen Scientific, catalog number 58950 |
Tissue-Tek Optimal Cutting Temperature (OCT) medium 4583 | VWR | 25608-930 | |
2-methyl butane | Sigma | M32631 | |
Paraformaldehyde | Fisher Scientific | T353-500 | Use fresh 4% solution in 1X PBS, pH 7.2-7.4. |
Sucrose | Sigma | S0389 | Use 15% and 30% solutions in 1X PBS. |
Disposable transfer pipette | Fisher Scientific | S30467-1 | |
Superfrost Plus slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | "Plus" indicates positively-charged coating and is critical for maintaining tissue adherence to the slide. |
Acetone | Sigma | 179124 | |
Triton X-100 | Sigma | X100 | |
Western Blocking Agent | Roche | 11921673001 | Blocking buffer for immunofluorescence, when secondary antibodies are from different species. Dilute to 1X in PBS. |
Tween 20 | Sigma | P9416 | |
Donkey Anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment | Jackson ImmunoResearch | 715-007-003 | Goat Anti-mouse IgG (H+L) also available. For blocking endogenous immunoglobulins. |
Anti-s-a-actinin antibody | Sigma | A7811 | Mouse monoclonal, clone EA53. Dilute 1:400 for snap-frozen/acetone-fixed sections, dilute 1:300 for PFA-fixed sections. Before incubation on mouse tissue, block endogenous mouse immunoglobulins with anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment. |
Anti-bcatenin antibody | Cell Signaling | 9587s | Rabbit polyclonal. Requires snap-freezing/acetone fixation. Dilute 1:400. |
Anti-b1 integrin antibody | R&D | AF2405 | Goat polyclonal. Dilute 1:200. Snap-frozen/acetone-fixed tissue staining is superior to PFA-fixed tissue. |
Anti-tropomyosin antibody | Developmental Studies Hybridoma Bank, University of Iowa | CH1 | Mouse monoclonal. Requires snap-freezing/acetone fixation. Dilute 1:200. Before incubation on mouse tissue, block endogenous mouse immunoglobulins with anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment. |
Anti-N-cadherin antibody | Santa Cruz | sc-7939 | Rabbit polyclonal. Dilute 1:200. Snap-frozen/acetone-fixed tissue staining is superior to PFA-fixed tissue. |
Anti-talin antibody | Sigma | T3287 | Mouse monoclonal, clone 8d4. Requires snap-freezing/acetone fixation. Dilute 1:200. Before incubation on mouse tissue, block endogenous mouse immunoglobulins with anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment. |
Anti-phosphotyrosine 397 focal adhesion kinase antibody | Invitrogen | 700255 | Rabbit monoclonal antibody. Requires PFA fixation. Dilute 1:500. |
Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Mouse IgG (H+L) Antibody | Life Technologies | A-21202 | |
Alexa Fluor 568 Donkey Anti-Rabbit IgG Antibody | Life Technologies | A10042 | |
Alexa Fluor 488 Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Antibody | Life Technologies | A-11001 | |
Alexa Fluor 568 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)Antibody | Life Technologies | A-11011 | |
Hoechst 33342 dye | Life Technologies | H3570 | Nuclear stain |
Vectashield | Vector labs | H-1000 | |
Coverslips | Fisher Scientific | 12-548-5M | |
MLC 400B Monolithic Laser Combiner Laser box | Keysight (formerly Agilent) | ||
Clara Interline CCD camera | Andor | ||
Eclipse Ti inverted microscope | Nikon | ||
CSU-X1 Spinning disk confocal scanner unit | Yokogawa | ||
CFI Plan Apochromat 4X air objective | Nikon | Numerical aperture (NA) 0.2, Working distance (WD) 15.7 mm | |
CFI Plan Apochromat VC 60x oil immesion objective (MRD01602) | Nikon | NA 1.4, WD 0.13 mm | |
NIS Elements Imaging Software | Nikon | http://nikon.com/products/instruments/lineup/bioscience/img_soft/index.htm | |
Image analysis software | Fiji | http://fiji.sc/Fiji |