Differential scanning fluorimetry is a widely used method for screening libraries of small molecules for interactions with proteins. Here, we present a straightforward method to extend these analyses to provide an estimate of the dissociation constant between a small molecule and its protein partner.
방법의 넓은 범위는 현재 단백질 사이의 해리 상수를 결정하고 작은 분자 상호 작용에 사용할 수 있습니다. 그러나, 이들의 대부분은 전문 장비에 대한 액세스를 필요로하며, 종종 효과적으로 신뢰성 실험을 구축하고 데이터를 분석하는 지식의 정도를 필요로한다. 시차 주사 fluorimetry은 (DSF) 증가, 중 생리 파트너를 식별하기위한 또는 히트 검색에 작은 분자를 상호 작용하는 단백질의 초기 검사에 대한 강력한 방법으로 사용되고있다. 이 기술은 정량적 PCR에 적합하고, 대부분의 기관 계측 가능하므로 적합한 만 PCR 기계를 필요로하는 이점이있다; 프로토콜의 훌륭한 범위는 이미 사용할 수 있습니다; 상기 방법의 여러 용도에 대한 문헌에서 강한 전례가있다. 과거 작업 DSF 데이터로부터 해리 상수를 산출 여러 수단을 제안하고 있지만, 이러한 수학적 요구하고있다. 여기서 우리는 민주onstrate DSF 실험 데이터로부터 적당한 양의 해리 상수를 추정하기위한 방법. 이러한 데이터는 통상적으로 수거하고, 하루 내에서 분석 될 수있다. 우리는 단순한 결합 이벤트에서 수집 된 데이터에 맞추기 위해 사용될 수있는 방법을 보여 다른 모델과 협력 결합 또는 바인딩 사이트는 독립적 본 곳이다. 마지막으로, 우리는 표준 모델이 적용되지 않는 경우 데이터 분석의 예를 제시한다. 이러한 방법은 상업적으로 이용 가능한 제어 단백질에 수집 된 데이터, 그리고 우리의 연구 프로그램에서이 단백질과 도시되어있다. 전반적으로, 우리의 방법은 연구자가 빠르게 DSF를 사용하여 단백질 – 리간드 상호 작용에 더 통찰력을 확보 할 수있는 간단한 방법을 제공합니다.
모든 단백질은 다른 큰 거대 분자에 대한 간단한 이온에서 다른 분자의 다양한 범위로, 다양한 친화력으로 결합됩니다. 많은 경우에, 단백질 (예를 들면, 키나아제 ATP에 대한 결합) 정상 기능의 일부로서 작은 분자에 결합 파트너. 다른 상호 작용에 관련되지 않은 기능 일 수 있지만, 공구 (결정화 성공을 개선, 또는 용액 중의 단백질을 유지하는데 도움이 단백질을 안정화 예, 소분자)로서 실험적으로 유용있다; 억제제로서 작용 등의 효소 활성을 조절할 수있는 활성 부위 단백질의 알로 스테 릭 사이트에 결합하는 작은 분자 동안.
파트너 분자 단백질의 친화도를 결정하는데 이용 될 수있는 기술의 다양한 종류가있다. 등온 적정 열량계 하나는 반응에 풍부한 정보를 제공 널리 라벨 무료이며, "금 표준"으로 간주하고, 기회를 제한했다실험 rtifacts. 그러나, 계측 및 실험 장치의 자동화 감도 최근의 개선에도 불구하고, 그것은 여전히 단백질 요건의 관점에서 비교적 고가 기껏 중저 처리량을 갖고, 및 중등도의 상호 작용에 가장 적합 높은 친화도 (100 μM의 K d를 10 nm의) 2. 이러한 표면 플라즈몬 공명 또는 이중층 간섭계 3 제안 높은 처리량 및 감도를 얻을 수있는 등의 다른 라벨없는 방법 (100)의 낮은 다 작은 분자를 검출한다. 그러나, 이러한 방법에 대한 높은 처리량 악기가 비교적 비싸다, 관련 프로젝트의 연속적인 처리가있을 것입니다 경우에만 정당화하고, 많은 대학 실험실에 접근 할 수 없을 가능성이 있습니다.
시차 주사 fluorimetry (DSF 또는 thermofluor) 먼저 약물 발견을위한 방법으로 2001 4에서 설명되었다. 이 방식 운전 방식에서D는, 단백질은 형광 염료와 함께 배양된다 (초기 나프탈렌 술폰산 염료가 사용되었다), 단백질의 소수성 영역에 결합시 그 형광을 변경한다. 단백질 – 염료 샘플은 가열하고, 열 상승으로 형광 모니터링. 단백질의 전개 및 단백질의 소수성 부분의 노출은, 온도 (도 1a)의 함수로서 형광 특성 패턴을 발생시킨다. 실험은 상업적 정량 PCR 장비에서 소량으로 수행 될 수 있고, 그래서 하나의 실험에서, 샘플의 다수의 동시 (인스트루먼트 모델에 따라 일반적으로 48, 96 또는 384 샘플) 시험 할 수있다. 실험은 일반적으로 시료 (5)의 높은 처리량 분석의 가능성을 제공하고, 시간의 주위에서 수행 될 수있다.
방법론에 대한 추가 개선은 더 나은 분광 특성 6,7와 염료의 채택을 보았다 </SUP>, 일반 데이터 분석 툴, 초기 스크리닝 8,9위한 프로토콜을 제안 하였다. 방법의 적용 범위는 제제 및 단백질 (10)의 저장을위한 최적의 조건을 설정하고 결정화에 11을 돕기 위해 잠재적 결합 파트너를 식별하는 특정의 중심으로 확장되었다. 이 방법의 상대적으로 높은 처리량, 단백질이 상대적으로 낮은 비용 (~ 2 반응 당 μg), 약한 결합 분자를 연구에 적용 특히 학문적 맥락 12-14에서 DSF에게 조각 기반 약물 설계를위한 유용한 도구를 만들었습니다.
단백질 – 리간드 상호 작용을 공부에 DSF의 넓은 응용 프로그램에도 불구하고, 몇몇 연구는 이러한 연구에서 해리 상수의 결정을 설명했다. 그러나 이러한 스파 스 데이터 또는 일부의 경우 전자에 장착해야 많은 매개 변수로, 단백질의 전개를 설명하는 자세한 방정식을 생산하는 경향이있다7,15-17을 stimated. 이러한 방법은 특이한 전환을 표시 긴밀하게 결합 화합물 또는 단백질로, 도전적인 경우에 특히 관련이 있습니다. 그러나 많은 실험실에 대한 이러한 자세한 분석은 일상적인 사용하기에 너무 복잡하다. 그러므로 우리는 서로 다른 시나리오에 대해 대체 치료법을 제시하고, 이러한 서로 다른 단백질 – 리간드 상호 작용의 결과 데이터에 맞추기 위해 사용될 수있는 방법을 보여준다. 우리의 방법은 맞춤형 데이터 분석 소프트웨어를 사용할 수있는 StepOne qPCR의 악기를 사용; 이 데이터 분석을 가속화하는 동안, 다른 기기로부터의 결과는 이전에 발행 된 방법 9를 사용하여 처리 될 수 있고, 동일한 하류 분석이 수행 될 수있다.
시차 주사 fluorimetry 단백질을 특성화하고, 잠재적 인 단백질 리간드를 식별하기위한 강력하고 다양한 방법으로 그 능력을 보여 주었다. (특히 덜 자금 실험실에서) 단백질의 안정화, 신약 개발을 촉진 결정화 10,23-25에서 잘 문서화 성공은 화합물의 초기 선별 매력적인 방법을 만들었습니다. 단백질에 추가 화합물은 명백 융점 7,9 분명 농도 의존적 증가를 보여준다. 그러나, 그들의 선호도 화합물 순위에 도움 겉보기 결합 상수를 결정하기 위해 이들 실험 결과를 사용하는 몇 가지 시도가있어왔다. 여기서는 체계적 리간드의 존재하에 단백질 겉보기 해리 상수를 결정하기위한 방법을 제시한다.
여기에 제시된 결과는 DSF 신속하고 견고 대한 해리 상수의 추정치를 제공 할 수 있음을 입증단백질 – 리간드 결합. 관측 데이터는 파라미터의 가능한 값에 관한 가정을 할 필요없이, K (D)의 신속한 결정을 제공하는 상업적으로 이용 가능한 도구를 조작 할 수있다. 이 방법은 필요한 단백질과 시간 모두에서 간략한되는 일부 유사한 방법에 비해 상당한 이점을 갖는다. 여기서 설명하는 실험은 실험 당 (중으로 반복 실험 약 0.4 ㎎)의 0.13 mg의 단백질을 소비한다. 이것은 평균 40 kDa의 단백질을 가진 단일 실험이 유사한 양을 소비 할 등온 적정 열량 측정 (ITC), 필적하는. 이 프로토콜에 필요한 실험 풀세트 실험의 단일 세트에 대해, 제제를 포함하여 약 4 시간을 소비 할 것이다. 다시, 이것은 예컨대 강력한 동안 가장 자주 데이터를 얻기 위해 상당한 최적화를 필요 ITC 또는 표면 플라즈몬 공명 등의 방법보다 상당히 빠를 것으로 예상된다.
우리의 결과는 심하게 원시 데이터를 검사 할 필요가 남아 있음을 입증, 이들 데이터의 착용감 용융 온도를 결정하고, 용융 온도 데이터의 착용감 해리 상수를 결정하기 위해. 첫 번째 과제는 단백질 용해 제조 원시 데이터의 형태이다. 일부 경우에, 형상은도 1a에서 관찰 된 것과 대략 수 없다. 일반적인 문제는 리간드 결합에 낮은 온도 변화, 높은 배경 형광 및 온도에서 특이한 여러 변이를 포함한다. 저온 시프트는 리간드의 결합 수에 보인다. 이 방법의 경우, 가장 중요한 매개 변수는 온도 변화에 비해, T m의 측정에서의 오차이다. 삼중 측정의 표준 편차가 충분히 결합되지 않은 결합 단백질 사이의 용융 온도 변화의 10 %를 초과하지 않을 때, 데이터는 일반적으로 합리적으로 장착 할 수있다. 우리의 경험은 그 곳과 같은 온도입니다erature 이동은 개별 데이터 포인트가 매우 정확 경우에만 2 ° C, 이것은 데이터를 피팅에 충분 될 수 있습니다. 두 번째 문제는 비정상적으로 커브를 형성한다. 바인딩 리간드 단백질의 모드에 영향을 주므로 이러한 전개는 종종 자유 단백질과 리간드 바인딩 형태간에 다르다. 이러한 경우, 사용자는 데이터가 용융 온도와 해리 상수를 결정하기 위해 사용되도록 적절한 모델을 고려하여 사용될 수 있는지 여부를 고려해야한다. 또 다른 일반적인 문제는 단백질 공동 인자의 첨가 (예를 들면, 헥소 키나제와의 예를 MgCl 2) 가장 신뢰성있는 데이터를 얻기 위해 필요하다는 것이다. 우리의 경험은 초기 판독을 복용하는 것이 가장 좋은 결과를 얻기에 필수적인의 단계에서 실험에 모든 가능성 요인의주의 깊은 고려하고있다. 또한, 대안 이론 치료는 이러한 데이터 15,17의 기능을 표시 할 수 있습니다. 마지막으로, 그 일부 C 단백질 드물지 않다ontain 기본적으로 높은 배경 형광을 보여 소수성 영역을 노출. 광범위하게 다른 6,9 검토 한 이러한 문제에 대한 솔루션은 여러 가지가있다.
특히, 사용자는 (예를 들어,도 4), 및 그 유도체를 사용하는 경우에, 복수의 용융물 모델링되어야하는지 여부 또는 유도체 볼츠만 모델을 사용할지 여부를 고려해야한다. 전개 열 모델링 두 가지 방법 볼츠만 방법 전개 곡선에 정규 S 자형 형상을 가정하면, 볼츠만 방정식에 실험적 데이터 맞는지 다르다. 대조적으로, 유도체 방법은 각 점 (도 1a의 하부 패널)에서 실험 데이터의 1 차 도함수를 취하고, 가장 높은 제 유도체의 포인트로 용융 온도를 고려한다. 3 °의 C – 파생 방법은 일반적으로 약 2에 의해 더 높은 용융 온도를 반환합니다. 대부분의 단백질은 일관성을 반환합니다두 가지 방법 중 하나의 결과 (즉, 삼중 실험에 대한 용융 온도의 표준 오차가 낮다). 이것은 보통 속속들이 곡선 펼쳐진 단백질의 정확한 형상과 관련된이며 경험적으로 각각의 경우에 가장 좋은 방법을 결정하는 것이 필요하다. 유도체 모델이 사용되는 경우, 이는 다수의 용융 사건을 고려하는 것도 중요하다. 일부 데이터는 분명히 여러 변이 증거를 보여주고, 이러한 경우에 이러한 결과는 여러 용융 이벤트가 모델링되는 경우 쉽게 해석 될 가능성이있다. 이 프로토콜의 문맥에서, 리간드의 첨가는 단백질이 반대 (가장 열적으로 깨지기 서브 도메인을 안정화하여, 예를 들어) 하나의 트랜지션에 복수의 용융 전이를 갖는으로부터 전환하거나, 발생할 수있는 경우가 종종있다. 따라서 우리는 원시 데이터가 사용하기 가장 좋은되는 방법 고려하기 전에 함께 조사하는 것을 옹호한다.
m 다음개별 융점의 odelling, 상기 문제는 프로토콜 섹션에 제시된 모델이 피팅에서 발생할 수있다. 그것은 이러한 분석은 종종 관측 데이터와 모델 사이의 차이를 강조 신중, 대수 스케일을 사용하여 해리 상수 방정식 착용감을 조사하는 것이 필수적이다 (예를 .g.,도 3). 수득 된 결과는 일반적으로 견고 반면, 해석에주의 데이터에서 더 나은 결과를 추출 할 수있는 기회 및 가장 의미를 제공한다.
이러한 데이터에 의해 제기 된 특정 문제가 DSF에, 협동성을 보여 단백질, 또는 여러 이벤트 바인딩에 배치해야 해석이다. 우리는 지금까지, 오직 다중 특이 적 결합 이벤트 (예 WcbM, 크기 배제 크로마토 그래피에 다량 체의 역할을 가장 상동 26 다량 체이며 단백질, 및 [데이터를하지 않은 것으로 예상된다 단백질이 현상을 관찰참조]). 그것은 전혀 분명 DSF 변성에서 관찰 된 음의 협동성이 효소가 궁극적으로 부정적인 협동성을 보여 나타냅니다 것이 아니다 : 오히려,이 방법의 넓은 범위를 사용하여보다 철저하게 탐구해야합니다 복잡한 결합의 표시 일 수있다. 이 단백질의 더 광범위한 연구가 흥미로운 효과를 식별 할 가능성이 있다는 점은 우리에게 시사 않습니다.
이 방법을 사용하여 해리 상수에 대해 주어진 값은 일반적으로 등온 적정 열량계, 표면 플라즈몬 공명 등의 다른 방법에 의해 제공되는 것과 동일한 순서로한다. 그러나, 관찰 된 절대 값이 이러한 방법을 사용하여 관측보다 높은 경우이다. 이것은 적어도 부분적으로 해리 상수가 리간드와 단백질의 용융 온도에서 관찰된다는 사실의 결과이다. 이 K d를 생리적 온도에서보다 일반적으로 높다. dissociation은 정수 방정식에 의한 반응의 온도와 관련이 :
[1]
[2]
(c의 θ가 표준 기준 농도이고, Δ는 G 반응의 깁스 자유 에너지 변화이다 R, R은 몰 기체 상수이고, Δ H는 반응 엔탈피 변화이고, Δ S는 반응 엔트로피 변화 .)
이 방법의 측정 범위의 해리 상수와 반응은 일반적으로 부정적인 Δ r에 G를 가질 것이고, 그래서 식에 온도 상승의 효과는 [1] 해리 상수를 증가시키는 것이다. 모두 깁스 자유 에너지를 구성하는 Δ H와 Δ S 기간은 (식 [2]) 그리고 온도 아르즉 종속 27 및 해리 상수에 영향이 온도 의존성의 크기 및 부호에 의존 할 것이며, 반드시 상호 작용에 의존한다. 따라서,이 방법에 의해 결정 해리 상수가 RT에서 작동 방법에 의해 결정된 것보다 종종 더 큰 것을 예상하지 못한 것이다. 온도 의존성은 또한, 물론, 생리 온도보다 낮은 온도에서 해리 상수를 제공하는 경향이 많은 다른 방법의주의이다.
이 ITC 달리 표시 방법임을 DSF 방법의 또 다른주의 할 것이다. (SYPRO 오렌지) 이용 형광 라벨은 소수성이며, 따라서 일부 경우에 단백질 소수성 리간드의 결합과 경쟁 할 수있다. 따라서, 어떤 경우에는, 수득 해리 상수 인위적으로 인해 라벨 경쟁 발생 될 가능성이있다. 그러나, 다양한 리간드의 비교 (중 주 사용DSF)는, 친 화성 차이에 의해 화합물의 순위에 영향을 미칠 정도로 충분히 크지 않을 수있다.
이러한 방법의 잠재적 인 단점은 달성 될 수있는 검출 한계이다. 원칙적으로, 정확하게 단백질의 농도가 50 % 이하이며,이 범위 내의 값이 모호한 경우에도 정밀도가 될 가능성이 K의 D의 값을 측정 할 수이어야한다. 이 범위의 끝의 검출 한계는 단백질 및 염료의 농도를 감소시킴으로써 약간 연장 할 수있는 동안, 기기의 감도는 단백질 농도에서 추가 감소를 방지한다. 마찬가지로, 감도의 상단부는 리간드의 용해도에 의해 결정된다. K d를위한 수학적 강력한 추정치를 획득하기 위해서는 대략 것으로 리간드 농도를 필요 리간드 – 결합 형태로 존재하는 단백질의 90 %의 데이터를 얻기 위해 가장 중요한LY 열 번 K d를 (더 협동성 없다고 가정). 검출 한계는 따라서 반드시 중요한 버퍼 리간드의 용해도가 10 분의 1이 될 것이다. 이 방법의 검출 한계는 일반적으로 단백질과 리간드에 따라, 1 ㎜ 내지 1 μM 내지 100 범위 일 것이라는 것을 의미한다.
결론적으로, 시차 주사 fluorimetry 단백질의 넓은 범위에 적용 가능한 다용도 기술이다. 여기에 제시된 방법을 사용하여, 신속하고 저렴하게 다른 리간드에 대한 단백질의 친화도를 결정하는 것이 가능하다. 특히 작은 실험실에서, 단백질 정제 및 안정화 응용 프로그램 metagenomes에서 효소의 기능 또는 특이성을 해명하기위한 큰 잠재력을 가지고 있으며, 신약 개발에서.
The authors have nothing to disclose.
This work was funded by grant from the BBSRC (grant number BB/H019685/1 and BB/E527663/1) to the University of Exeter.
StepOne real time PCR instrument | Life Technologies | 4376357 | DSF can be performed with many other instruments. The StepOne instrument has very convenient software for data analysis. |
Protein thermal shift software v1.0 | Life Technologies | 4466037 | |
MicroAmp Fast optical 48-well plates | Life Technologies | 4375816 | |
Optical sealing tape | Life Technologies | 4375323 | Bio-rad part no. 223-9444 is an alternative supplier |
U-bottomed 96-well plates | Fisher | 11521943 | |
SYPRO Orange | Life Technologies | S6650 | For a smaller volume supplier, use Sigma part no. S5692 |
SPSS statistics version 20 | IBM | N/A | Other statistics packages will provide similar functionality |
GraphPad Prism 6.02 | GraphPad | N/A | Other statistics packages will provide similar functionality |
Hand applicator (PA1) | 3M | 75-3454-4264-6 | |
Hexokinase from Saccharomyces cerevisiae | Sigma-Aldrich | H5000 | |
Glucose | Fisher scientific | 10141520 |