Summary

無傷アダルトゼブラフィッシュの脳における電気生理学的記録

Published: November 19, 2013
doi:

Summary

本論文では、成人のゼブラフィッシュは、固定化された挿管、無傷の動物における記録と神経活動の操作を可能にするためのin vivo電気生理学的実験のために使用する方法について説明します。

Abstract

以前は、大人のゼブラフィッシュにおける電気生理学的研究では、準備をスライスまたはアイカップ製剤およびelectrorentinogramの録音をするために限られていた。本論文では、神経活動の記録を可能と大人のゼブラフィッシュは、固定化された挿管、およびin vivoでの電気生理学的実験のために使用する方法について説明します。大人の固定化は、頬やふたの運動の代わりにエラに溶存酸素を届けるためのメカニズムが必要です。我々の手法では、動物を固定し、この要件を満たすために生息地の水で灌流した。脳へのアクセスを提供するために、麻酔、開頭術を、トリカインメタンスルホネート(トリカインMS-222)の下で行われる。次電極は、次いで、細胞外脳活動を記録するために開頭ウィンドウ内に配置される。多管灌流システムを使用することにより、薬理学的化合物の種々の成魚に投与することができ、神経活性の任意の変化観察することができる。方法論は、神経学的活性の変化について説明するための観察を可能にするだけでなく、比較は幼虫および成体ゼブラフィッシュの間でなされることがまた可能にする。これは研究者により異なるライフステージでの様々な化合物の導入に神経学的活性の変化を識別することが可能になります。

Introduction

この記事では、プロトコルは、成人のゼブラフィッシュにおける神経活動のin vivoでの録音得るために記載されている。細胞外記録方法は、神経組織の小領域内の電気的活動の電圧測定を提供するために使用される。調査のこの方法は、動物の挙動1に多数のセルを監視することを含む。以前は、スライス記録はアイカップ製剤および電図記録を持っているとして、大人と幼虫の両方で行われている。これらの実験は、主に様々な感覚系2-5の生理学的反応が詳細に行われている。最近まで、完全な脳標本は、呼吸と酸素の拡散が皮膚を通って発生する可能性がゼブラフィッシュの幼虫3,6,7、と電気生理学を実行するために利用されてきた。動物が完全に意識してOを意識したまま私たちの準備は大人のゼブラフィッシュのネイティブ神経学的活性を測定することができますFその周辺。

ゼブラフィッシュ( ゼブラフィッシュは、現在、遺伝毒性学、薬理および生理病理学的研究3のモデルとして基本的な役割を果たしている。彼らは遺伝、神経および内分泌レベル8での哺乳類との広範な相同性を共有しているため、ゼブラフィッシュは、神経科学の分野内での可視性を得ています。過去10年間で、標準的な神経解剖学的、および免疫組織化学的技法は、ゼブラフィッシュ神経系9-12の異なる神経伝達物質3,8,13の分布の詳細な特徴構成を決定するために使用されている。さらに最近では、研究者は行動のプロセス16〜19と感覚系2,13,20の電気生理学的特性を中心にその多くは機能的研究14,15、に焦点をシフトしている。これらの研究の少数ADULの特定領域の電気的活動に集中しているゼブラフィッシュ脳21-23トンが、in vivoでのアプローチを使用して実施されなかった。

このプロトコルは、特定の脳領域における活動のパターンを説明するためのゼブラフィッシュ神経系内で自発および誘発の両方の活性の電気生理学的研究のために適合させることができる。この技術の使用は、比較は若い幼虫期と成人の神経学的活性との間に行​​うことを可能にする。さらに、我々のプロトコルは、遺伝的または薬理学的変化との比較を可能にします。一緒にこのような遺伝子工学や薬理試験などの他のアプローチと、この方法は完全な成体動物においてだけでなく、このような遅発性てんかんや神経変性プロセスを研究などの潜在的なアプリケーションのために、神経細胞のコミュニケーションと可塑性の機能解析のための新たな可能性を提供しています。

Protocol

全ての実験手順は、実験動物の管理と使用に関する健康ガイドの国立研究所に厳密に従って実施し、検討、承認、およびジョージア施設内動物管理及び利用大学によって監督されたプロトコル番号のA2011 09から003を、追跡した委員会。 1。機器のセットアップ 開頭のための灌流システム 大人の固定化は、魚類への溶存酸素を届けるために挿管シ?…

Representative Results

このプロトコルは、 インビボで 、成体ゼブラフィッシュの神経活動を測定するために使用されてきた。これらの電気生理学的記録は、一貫して再現性が得られる。ペンチレンテトラゾール(PTZ)、共通chemoconvulsant 6,7,25,26は 、挿管に導入すると、図5は、大人のゼブラフィッシュの神経活動の本来の誘導変化の代表例を示すセットアップ。 成?…

Discussion

このプロトコルは、 インビボで 、成体ゼブラフィッシュの神経活動を測定するために使用されてきた。記録された活動の特性(振幅やイベントの形状が)個々の魚の間で変化させることができるものの実際に、神経活動は、一貫して観察することができます。細胞外記録技術の利用は、この観察を説明することができます。この方法は、地域1内の細胞が多数の同時モニタリ?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、(TMD、JDLとATに)、NIH / NINDS助成R01NS070159によってサポートされていました。

Materials

70% Ethanol Decon Laboratories 2750HC Dilute 100% to 70% with DI water
2 M Potassium Chloride J.T. Baker
2 M Sodium Chloride J.T. Baker 3624-05
0.4% Tris-Buffered Tricaine Sigma-Aldrich E10521 pH 7.2-7.4; stored at -20 oC
Pancuronium Bromide Sigma-Aldrich P1918 Diluted to 1 μg/μl in 1x phosphate buffered saline
Habitat water pH 7.0-7.4, conductivity of 400-450 μS; maintained by Instant Ocean and Sodium Bicarbonate
Pentylenetetrazol Sigma-Aldrich P6500 Diluted to 300 mM in 1x phosphate buffered saline
Nanofil syringe World Precision Instruments, Inc. 06A
34 G Beveled needle World Precision Instruments, Inc. NF34BV
Sponge Small pore and chemical-free
Foam-backed fine sand paper 5 x 5 cm2 is large enough
9 V Battery
Wires with alligator clips Need 2
37 cm x 42 cm Kimwipe Kimberly-Clark Professional TW31KEM
11 cm x 21 cm Kimwipe Kimberly-Clark Professional TW31KWP
1/8 in diameter tube
1 cm diameter tube
1 mm diameter tube
Reducing valve with female Luer lock cap and silicone ferrule Qosina 51505
Microscope (Leica MZ APO) Another microscope can be used
Vanna scissors Roboz Surgical Instruments Co., Inc. 15018-10
60 ml Luer lock syringe tubes Becton, Dickinson and Company 309653
3-way Stopcocks with Luer connections
1-way Stopcock with Luer connection
Fisherbrand 100 mm x 15 mm Petri dish Fisher Scientific NC9299146
Fisherbrand 60 mm x 15 mm Petri dish Fisher Scientific S67961
4 in Borosilicate capillary tube World Precision Instruments TW100F-4 Can contain a filament to aid in filling with solution
P-97 Flaming/Brown Micropipette Puller Sutter Instrument Co.
Digidata 1440 Molecular Devices
Axon Aloclamp 900A Molecular Devices
Axoclamp software Molecular Devices
HS-9Ax 1U headstage Molecular Devices
0.010 in Silver wire A-M Systems, Inc.
Q-series electrode holder Warner Instruments QSW-A10P
10 ml Luer lock syringe
1 mm x 15 in Tubing Connect Luer lock syringe to Q-series electrode holder
Micromanipulator Warner Instruments Need 2
Microsoft-based PC Dell
Faraday Cage
Air Table
Dissecting Microscope

Referenzen

  1. Henze, D. A., et al. Intracellular features predicted by extracellular recordings in the hippocampus in vivo. J. Neurophysiol. 84, 390-400 (2000).
  2. Gabriel, J. P., et al. Locomotor pattern in the adult zebrafish spinal cord in vitro. J.Neurophysiol. 99, 37-48 (2008).
  3. Vargas, R., Johannesdottir, I. T., Sigurgeirsson, B., Thornorsteinsson, H., Karlsson, K. A. The zebrafish brain in research and teaching: a simple in vivo and in vitro model for the study of spontaneous neural activity. Adv Physiol Educ. 35, 188-196 (2011).
  4. Makhankov, Y. V., Rinner, O., Neuhauss, S. C. An inexpensive device for non-invasive electroretinography in small aquatic vertebrates. J. Neurosci. Methods. 135, 205-210 (2004).
  5. Brockerhoff, S. E., et al. A behavioral screen for isolating zebrafish mutants with visual system defects. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.. 92, 10545-10549 (1995).
  6. Baraban, S. C., Taylor, M. R., Castro, P. A., Baier, H. Pentylenetetrazole induced changes in zebrafish behavior, neural activity and c-fos expression. Neurowissenschaften. 131, 759-768 (2005).
  7. Baraban, S. C., et al. A large-scale mutagenesis screen to identify seizure-resistant zebrafish. Epilepsia. 48, 1151-1157 (2007).
  8. Maximino, C. . Serotonin and anxiety: Neuroanatomical, pharmacological and functional aspects. , (2012).
  9. Bally-Cuif, L., Vernier, P., Perry, S. F., Ekker, M., Farrell, A. P., Brauner, C. J. . Fish Physiology: Zebrafish. 29, (2010).
  10. Kaslin, J., Nystedt, J. M., Ostergard, M., Peitsaro, N., Panula, P. The orexin/hypocretin system in zebrafish is connected to the aminergic and cholinergic systems. J. Neurosci. 24, 2678-2689 (2004).
  11. McLean, D. L., Fetcho, J. R. Ontogeny and innervation patterns of dopaminergic, noradrenergic, and serotonergic neurons in larval zebrafish. J. Comp. Neurol. 480, 38-56 (2004).
  12. Mueller, T., Vernier, P., Wullimann, M. F. The adult central nervous cholinergic system of a neurogenetic model animal, the zebrafish Danio rerio. Brain Res. 1011, 156-169 (2004).
  13. Higashijima, S., Schaefer, M., Fetcho, J. R. Neurotransmitter properties of spinal interneurons in embryonic and larval zebrafish. J. Comp. Neurol. 480, 19-37 (1002).
  14. Tao, L., Lauderdale, J. D., Sornborger, A. T. Mapping Functional Connectivity between Neuronal Ensembles with Larval Zebrafish Transgenic for a Ratiometric Calcium Indicator. Front Neural Circuits. 5, 2 (2011).
  15. Fan, X., et al. New statistical methods enhance imaging of cameleon fluorescence resonance energy transfer in cultured zebrafish spinal neurons. J Biomed Opt. 12, 034017 (2007).
  16. Burgess, H. A., Granato, M. Sensorimotor gating in larval zebrafish. J. Neurosci. 27, 4984-4994 (2007).
  17. Burgess, H. A., Schoch, H., Granato, M. Distinct retinal pathways drive spatial orientation behaviors in zebrafish navigation. Curr. Biol. 20, 381-386 (2010).
  18. Mueller, K. P., Neuhauss, S. C. Behavioral neurobiology: how larval fish orient towards the light. Curr. Biol. 20, 159-161 (2010).
  19. Haug, M. F., Biehlmaier, O., Mueller, K. P., Neuhauss, S. C. Visual acuity in larval zebrafish: behavior and histology. Front. Zool. 7, 8 (2010).
  20. Fetcho, J. R., Higashijima, S., McLean, D. L. Zebrafish and motor control over the last decade. Brain Res.Rev. 57, 86-93 (2008).
  21. Connaughton, V. P., Nelson, R., Bender, A. M. Electrophysiological evidence of GABAA and GABAC receptors on zebrafish retinal bipolar cells. Vis. Neurosci. 25, 139-153 (2008).
  22. Kim, Y. J., Nam, R. H., Yoo, Y. M., Lee, C. J. Identification and functional evidence of GABAergic neurons in parts of the brain of adult zebrafish (Danio rerio). Neurosci. Lett. 355, 29-32 (2004).
  23. Sato, Y., Miyasaka, N., Yoshihara, Y. Hierarchical regulation of odorant receptor gene choice and subsequent axonal projection of olfactory sensory neurons in zebrafish. J. Neurosci. 27, 1606-1615 (2007).
  24. Westerfield, M. . The zebrafish book: a guide for the laboratory use of zebrafish (Brachydanio rerio). , (1993).
  25. Lazarova, M., Samanin, R. Potentiation by yohimbine of pentylenetetrazol-induced seizures in rats: role of alpha 2 adrenergic receptors. Pharmacol. Res. Commun. 15, 419-425 (1983).
  26. Loscher, W., Honack, D., Fassbender, C. P., Nolting, B. The role of technical, biological and pharmacological factors in the laboratory evaluation of anticonvulsant drugs. III. Pentylenetetrazole seizure models. Epilepsy res. 8, 171-189 (1991).
  27. DeMicco, A., Cooper, K. R., Richardson, J. R., White, L. A. Developmental neurotoxicity of pyrethroid insecticides in zebrafish embryos. Toxicol Sci. 113, 177-186 (2010).
  28. Arnolds, D. E., et al. Physiological effects of tricaine on the supramedullary/dorsal neurons of the cunner, Tautogolabrus adspersus. Biol. Bull. 203, 188-189 (2002).
check_url/de/51065?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Johnston, L., Ball, R. E., Acuff, S., Gaudet, J., Sornborger, A., Lauderdale, J. D. Electrophysiological Recording in the Brain of Intact Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (81), e51065, doi:10.3791/51065 (2013).

View Video